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Articolo metodologico

Quantificazione assoluta del metabolismo della sintesi proteica senza cellule da demografia-cromometria di massa a fase reverse

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DOI:

10.3791/60329

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25 ottobre 2019

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* These authors contributed equally

In questo articolo

Sommario

Qui, presentiamo un protocollo robusto per quantificare 40 composti coinvolti nel metabolismo centrale del carbonio e dell'energia nelle reazioni di sintesi proteica priva di cellule. La miscela di sintesi senza cellule viene derivata con un'anilina per una separazione efficace utilizzando la cromatografia liquida a fase invertita e quindi quantificata dalla spettrometria di massa utilizzando standard interni etichettati isotopicamente.

Abstract

La sintesi delle proteine prive di cellule (CFPS) è una tecnologia emergente nei sistemi e nella biologia sintetica per la produzione in vitro di proteine. Tuttavia, se CFPS sta per andare oltre il laboratorio e diventare una tecnologia di produzione diffusa e standard just in time, dobbiamo capire i limiti di prestazioni di questi sistemi. A questa domanda, abbiamo sviluppato un protocollo robusto per quantificare 40 composti coinvolti nella glicolisi, la via del fosfato della pentosi, il ciclo dell'acido tricarboxillico, il metabolismo energetico e la rigenerazione del cofattore nelle reazioni CFPS. Il metodo utilizza standard interni contrassegnati con 13C-anilina, mentre i composti nel campione vengono derivati con 12C-anilina. Gli standard e il campione interni sono stati miscelati e analizzati mediante spettrometria cromatografia-massa liquida in fase invertita (LC/MS). La co-eluzione dei composti ha eliminato la soppressione degli ioni, consentendo la quantificazione accurata delle concentrazioni di metaboliti su 2-3 ordini di grandezza dove il coefficiente di correlazione medio era 0,988. Cinque dei quaranta composti sono stati senza tag con anilina, tuttavia, sono stati ancora rilevati nel campione CFPS e quantificati con un metodo di curva standard. La corsa cromatica richiede circa 10 minuti per essere completata. Nel loro insieme, abbiamo sviluppato un metodo veloce e robusto per separare e quantificare con precisione 40 composti coinvolti nella CFPS in un'unica corsa LC/MS. Il metodo è un approccio completo e preciso per caratterizzare il metabolismo privo di cellule, in modo che in ultima analisi, possiamo comprendere e migliorare la resa, la produttività e l'efficienza energetica dei sistemi senza cellule.

Introduzione

La sintesi delle proteine prive di cellule (CFPS) è una piattaforma promettente per la produzione di proteine e sostanze chimiche, un'applicazione tradizionalmente riservata alle cellule viventi. I sistemi senza cellule sono derivati da estratti di cellule grezze ed eliminano le complicazioni associate alla crescita cellulare1. Inoltre, CFPS consente l'accesso diretto ai metaboliti e ai macchinari biosintetici senza l'interferenza di una parete cellulare. Tuttavia, è stata carente una comprensione fondamentale dei limiti di prestazioni dei processi senza cellule. I metodi ad alta produttività per la quantificazione dei metaboliti sono preziosi ....

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Protocollo

1. Preparazione dei reagenti per l'etichettatura di anilina

  1. Preparare una soluzione di anilina da 6 M a pH 4.5. Lavorando in una cappa, unire 550 l di anilina con 337,5 l di acqua di grado LCMS e 112,5 -L di acido cloridrico 12 M (HCl) in un tubo centrifuga. Vortice bene e conservare a 4 gradi centigradi.
    NOTA: Aniline può essere conservato a 4 gradi centigradi per 2 mesi.
    AVVISO: L'anilina è altamente tossica e deve essere lavorata in un cofano di fumi. L'acido cloridrico è altamente corrosivo
  2. Preparare una soluzione di anilina 6 M 13C a pH 4.5. Unire 250 mg di 13C6-anilina con 132 gradi centigradi d'acqua e ....

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Risultati

Come prova di concetto, abbiamo usato il protocollo per quantificare i metaboliti in un sistema CFPS basato su E. coli che esprimeva proteine fluorescenti verdi (GFP).  La reazione della CFPS (14) è stata spenta e deproteinizzata con etanolo. Il campione CFPS è stato quindi contrassegnato con 12C-anilina, mentre gli standard sono stati contrassegnati con 13C-anilina. Il campione e gli standard contrassegnati sono stati quindi combinati e iniettati in LC/MS (Figura 1

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Discussione

I sistemi privi di cellule non hanno una parete cellulare, quindi c'è accesso diretto ai metaboliti e ai macchinari biosintetici senza la necessità di una complessa preparazione del campione. Tuttavia, è stato fatto molto poco lavoro per sviluppare protocolli approfonditi e robusti per interrogare quantitativamente sistemi di reazione privi di cellule. In questo studio, abbiamo sviluppato un metodo veloce e robusto per quantificare i metaboliti nelle miscele di reazione prive di cellule e potenzialmente in estratti inter.......

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Dichiarazioni

Gli autori non hanno nulla da rivelare.

Ringraziamenti

Il lavoro descritto è stato supportato dal Centro sulla Fisica del Metabolismo del Cancro attraverso il premio numero 1U54CA210184-01 del National Cancer Institute (https://www.cancer.gov/ ). Il contenuto è di esclusiva responsabilità degli autori e non rappresenta necessariamente le opinioni ufficiali del National Cancer Institute o dei National Institutes of Health. I finanziatori non hanno avuto alcun ruolo nella progettazione dello studio, nella raccolta e nell'analisi dei dati, nella decisione di pubblicazione o nella preparazione del manoscritto.

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
12C AnilinaSigma-Aldrich242284Anilina 12C
13C marcato con anilinaSigma-Aldrich485797Anilina 13C6
3-Acido fosfoglicericoSigma-AldrichP88773PG
Acido aceticoFisherScientificAC222140010
ACE Acetonitrile, LCMSJT BAKER9829-03ACN
Acetil coenzima ASigma-AldrichA2056ACA
Acquity UPLC BEH C18 1.7 μ M, 2,1 x 150 mm ColonnaAcque186002353Colonna
Adenosina difosfatoSigma-AldrichA2754ADP
Adenosina monofosfatoSigma-AldrichA1752AMP
Adenosina trifosfatoSigma-AldrichA2383ATP
Alfa-chetoglutaratoSigma-AldrichK1128aKG
CitratoSigma-Aldrich251275CIT
Citidina difosfatoSigma-AldrichC9755CDP
Citidina monofosfatoSigma-AldrichC1006CMP
Citidina trifosfatoSigma-AldrichC9274CTP
D-gliceraldeide 3-fosfatoSigma-Aldrich39705GAP
Eritrosio-4-fosfatoSigma-AldrichE0377E4P
EtanoloSigma-AldrichEX0276EtOH
Fisher Scientific accuSpin Micro 17 CentrifugaFisherScientificFlavina
adenina dinucleotideSigma-AldrichF6625FAD
Fruttosio 1,6-bisfosfatoSigma-AldrichF6803F16P
Fruttosio 6-fosfatoSigma-AldrichF3627F6P
fumaratoSigma-AldrichF8509
FUM gluconato 6-fosfatoSigma-AldrichP78776PG
glucosioSigma-AldrichG8270GLC
glucosio 6-fosfatoSigma-AldrichG7879G6P
glicerolo 3-fosfatoSigma-AldrichG7886Gly3P
Guanosina difosfatoSigma-AldrichG7127GDP
Guanosina monofosfatoSigma-AldrichG8377GMP
Guanosina trifosfatoSigma-AldrichG8877GTP
Acido cloridricoSigma-Aldrich258148HCl
IsocitratoSigma-AldrichI1252ICIT
LattatoSigma-AldrichL1750LAC
malatoSigma-Aldrich02288MAL
myTXTL - Sigma 70 Master Mix KitArborBiosciences507024Sintesi proteica priva di cellule
N-(3-dimetilamminopropil)-N′-etilcarbodiimmide cloridratoSigma-Aldrich03449EDC
Nicotinamide adenina dinucleotideSigma-Aldrich43410NAD
Nicotinammide adenina dinucleotide fosfatoSigma-AldrichN5755NADP
Nicotinammide adenina dinucleotide fosfato ridottoSigma-Aldrich481973NADPH
Nicotinamide adenina dinucleotide ridottoSigma-AldrichN8129NADH
OssalacetatoSigma-AldrichO4126OAA
FosfoenolpiruvatoSigma-AldrichP0564PEP
PiruvatoSigma-AldrichP5280PYR
Ribosio 5-fosfatoSigma-AldrichR7750R5P
Ribulosio 5-fosfatoCarboSynthMR45852RL5P
Sedoeptulosio 7-fosfatoCarboSynthMS07457S7P
SuccinatoSigma-AldrichS3674SUCC
TributilamminaSigma-Aldrich90780TBA
TrietilamminaFisherScientificO4884TEA
acquaultrapura FisherScientific10977-015acqua
Uridina difosfatoSigma-AldrichU4125UDP
Uridina monofosfatoSigma-AldrichU6375UMP
Uridina trifosfatoSigma-AldrichU6625UTP
VWR Heavy Duty VortexVWRVortex
Water, LCMSJT BAKER9831-03WATER
Waters Acquity H UPLC Class Quaternary Solvent ManagerWatersLCMS
Waters Acquity H UPLC Class Sample Manager FTNWatersLCMS
Waters Acquity Rivelatore QdaWatersLCMS
Waters Empower 3Waters
Waters LCMS Fiala di recupero totaleWaters186000384cFiala LCMS
Software

Riferimenti

  1. Hodgman, C. E., Jewett, M. C. Cell-free synthetic biology: thinking outside the cell. Metabolic Engineering. 14, 261-269 (2012).
  2. Vilkhovoy, M., et al. Sequence specific modeling of E. coli cell-free protein synthesis. ACS Synthetic Biology. 7

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Ristampe e permessi

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