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Articolo metodologico

Imaging e analisi del trasporto neurofilamento nel nervo tibiale del topo escresato

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DOI:

10.3791/61264

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31 agosto 2020

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In questo articolo

Sommario

Descriviamo i metodi di fotoattivazione della fluorescenza per analizzare il trasporto assonale dei neurofilamenti in assoni singoli mielinati di nervi periferici da topi transgenici che esprimono una proteina neurofilabile fotoattivabile.

Abstract

I polimeri proteici neurofilamenti si muovono lungo gli assoni nella componente lenta del trasporto assonale a velocità medie di 0,35-3,5 mm al giorno. Fino a poco tempo fa lo studio di questo movimento in situ era possibile solo utilizzando l'etichettatura a impulsi radioisotopica, che permette l'analisi del trasporto assonale in nervi interi con una risoluzione temporale di giorni e una risoluzione spaziale di millimetri. Per studiare il trasporto di neurofilamenti in situ con una risoluzione temporale e spaziale più elevata, abbiamo sviluppato un topo transgenico hThy1-paGFP-NFM che esprime la proteina neurofilamento M etichettata con GFP fotoattivabile nei neuroni. Qui descriviamo i metodi di fluorescenza fotoattivazione impulso-fuga e pulsazione-spread per analizzare il trasporto neurofilamento in assoni mielinati singoli di nervi tibiali da questi topi ex vivo. I segmenti nervosi isolati vengono mantenuti sullo stadio del microscopio per perfusione con salina ossigenata e immagini di microscopia a fluorescenza confocale del disco rotante. La luce viola viene utilizzata per attivare la fluorescenza in una breve finestra assonale. La fluorescenza nelle regioni attivate e fiancheggiate viene analizzata nel tempo, permettendo lo studio del trasporto neurofilamento con risoluzione temporale e spaziale rispettivamente nell'ordine dei minuti e dei micron. La modellazione matematica può essere utilizzata per estrarre i parametri cinetici del trasporto neurofilamento, tra cui la velocità, la distorsione direzionale e il comportamento di pausa dai dati risultanti. I metodi di fuga di impulsi e di diffusione del polso possono anche essere adattati per visualizzare il trasporto di neurofilamenti in altri nervi. Con lo sviluppo di topi transgenici aggiuntivi, questi metodi potrebbero anche essere utilizzati per immagini e analisi del trasporto assonale di altre proteine citoscheschescheschesche e citosoliche negli assoni.

Introduzione

Il trasporto assonale dei neurofilamenti è stato dimostrato per la prima volta negli anni '70 mediante l'etichettatura radioisotopica a impulsi1. Questo approccio ha prodotto una ricchezza di informazioni sul trasporto neurofilamento in vivo, ma ha una risoluzione spaziale e temporale relativamente bassa, in genere nell'ordine di millimetri e giorni al meglio2. Inoltre, l'etichettatura radioisotopica degli impulsi è un approccio indiretto che richiede l'iniezione e il sacrificio di più animali per generare un singolo corso di tempo. Con la scoperta delle proteine fluorescenti e i progressi nella microscopia a fl....

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Protocollo

Tutti i metodi qui descritti sono stati approvati dall'Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC) della Ohio State University.

1. Preparazione della soluzione salina nervosa

  1. Fare 100 mL di salina di Breuer10: 98 mM NaCl, 1 mM KCl, 2 mM KH2PO4, 1 mM MgSO4, 1,5 mM CaCl2, 5.6% D-glucosio, 23,8 mM NaHCO3 in acqua a doppia distillazione.
  2. Bolla 95% ossigeno/5% di anidride carbonica (carbogen) attraverso la soluzione salina per almeno 30 minuti prima dell'uso. La salina rimasta può essere riutilizzata entro una settimana; tuttavia, deve esse....

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Risultati

La Figura 3 mostra immagini rappresentative da esperimenti di fuga di impulsi e di diffusione del polso. Abbiamo pubblicato diversi studi che descrivono i dati ottenuti utilizzando il metodo pulse-escape e i nostri metodi per l'analisi di quei dati5,6,7,8,17. Di seguito, mostriamo come i dati di diffusione dell'impulso possono pro.......

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Discussione

L'analisi degli esperimenti di fuga e di diffusione dell'impulso deve essere presa in considerazione perché esiste un potenziale significativo per l'introduzione dell'errore durante la post-elaborazione, principalmente durante la correzione del campo piatto, l'allineamento dell'immagine e la correzione della candeggina. La correzione a campo piatto è necessaria per correggere la non uniformità nell'illuminazione, che si traduce in una caduta di intensità attraverso il campo di vista dal centro alla periferia. L'entità de.......

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Dichiarazioni

Gli autori non hanno nulla da rivelare.

Ringraziamenti

Gli autori ringraziano Paula Monsma per l'istruzione e l'assistenza con la microscopia confocale e la dissezione dei nervi tibiali e la dottoressa Atsuko Uchida, Chloe Duger e Sana Chahande per l'assistenza con l'allevamento dei topi. Questo lavoro è stato sostenuto in parte dalla collaborazione National Science Foundation Grants IOS1656784 ad A.B. e IOS1656765 a P.J., e National Institutes of Health Grants R01 NS038526, P30 NS104177 e S10 OD010383 ad A.B. N.P.B. è stato sostenuto da una borsa di studio del programma Postdoctoral Scholars del Presidente della Ohio State University.

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Guarnizione rettangolare 14 x 22 0,1 mmBioptechs1907-1422-100guarnizione interna
2-deossi-D-glucosioSigmaD6134
Guarnizione rotonda da 30 mm con foriBioptechs1907-08-750guarnizione esterna
35 x 10 mmThermo Fisher153066piastre di dissezione
vetrini coprioggetti rotondi da 40 mmBioptechs40-1313-0319
Siringa da 60 ml - Punta Luer-lockBD309653
Sistema confocale a disco rotante Andor Revolution WDAndordotato di sistemi Perfect Focus e FRAPPA
Cloruro di calcioFisherC79
Vetrini coprioggettiFisher12-541-Bper vetrino di fluoresceina
Soluzione D-(+)-glucosioSigmaG8769
Perni di dissezioneFine Science Tools26001-70
Pinze di dissezioneFine Science Tools11251-30pinze a punta fine
Microscopio di dissezioneZeiss47 50 03
Vaschetta di dissezione con ceraGinsberg Scientific568859
Forbici di dissezioneFine Science Tools14061-09iniziale forbici da dissezione
FCS2 camera di perfusioneBioptechs060319-2-03
Fluoresceina sodicaFluka46960
Riscaldatore di soluzione in lineaWarner InstrumentsSH27-B
Pinze per laminectomiaFine Science Tools11223-20pinze per dissezione iniziale
Solfato di magnesioSigma-AldrichM7506
Vetrino per microacquedottoBioptechs130119-5
Vetrini per microscopioFisher12-544-3per vetrino di fluoresceina
Inserto per tavolino per microscopioStrumentazione scientifica applicataI-3017
Sistema di riscaldamento dell'obiettivoOkolabOko Touch con collare dell'obiettivo
Olio dell'obiettivo - tipoA Nikonfuori produzione
Plan Apo VC 100x 1.40 NA obiettivoNikonMRD01901
Cloruro di potassioFisherP217
Fosfato di potassioSigma-AldrichP0662
Bicarbonato di sodioSigma-AldrichS6297
Cloruro di sodioSigma-AldrichS7653
Sodio iodoacetatoSigma-AldrichI2512
Pompa a siringaSage InstrumentsModello 355
Adattatore per tubi - femminaSmall Parts Inc.
Adattatore per tubi - maschioSmall Parts Inc.
Tygon tubiBioptechs1/16" ID, 1/32" spessore della parete
Vannas forbici a mollaFine Science Tools15018-10forbici fini
piatto 10051091005012

Riferimenti

  1. Hoffman, P. N., Lasek, R. J. The slow component of axonal transport. Identification of major structural polypeptides of the axon and their generality among mammalian neurons. Journal of Cell Biology. 66 (2), 351-366 (1975).
  2. Brown, A. Slow Axonal Transport.

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Ristampe e permessi

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