Descriviamo i metodi di fotoattivazione della fluorescenza per analizzare il trasporto assonale dei neurofilamenti in assoni singoli mielinati di nervi periferici da topi transgenici che esprimono una proteina neurofilabile fotoattivabile.
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Articolo metodologico
Descriviamo i metodi di fotoattivazione della fluorescenza per analizzare il trasporto assonale dei neurofilamenti in assoni singoli mielinati di nervi periferici da topi transgenici che esprimono una proteina neurofilabile fotoattivabile.
I polimeri proteici neurofilamenti si muovono lungo gli assoni nella componente lenta del trasporto assonale a velocità medie di 0,35-3,5 mm al giorno. Fino a poco tempo fa lo studio di questo movimento in situ era possibile solo utilizzando l'etichettatura a impulsi radioisotopica, che permette l'analisi del trasporto assonale in nervi interi con una risoluzione temporale di giorni e una risoluzione spaziale di millimetri. Per studiare il trasporto di neurofilamenti in situ con una risoluzione temporale e spaziale più elevata, abbiamo sviluppato un topo transgenico hThy1-paGFP-NFM che esprime la proteina neurofilamento M etichettata con GFP fotoattivabile nei neuroni. Qui descriviamo i metodi di fluorescenza fotoattivazione impulso-fuga e pulsazione-spread per analizzare il trasporto neurofilamento in assoni mielinati singoli di nervi tibiali da questi topi ex vivo. I segmenti nervosi isolati vengono mantenuti sullo stadio del microscopio per perfusione con salina ossigenata e immagini di microscopia a fluorescenza confocale del disco rotante. La luce viola viene utilizzata per attivare la fluorescenza in una breve finestra assonale. La fluorescenza nelle regioni attivate e fiancheggiate viene analizzata nel tempo, permettendo lo studio del trasporto neurofilamento con risoluzione temporale e spaziale rispettivamente nell'ordine dei minuti e dei micron. La modellazione matematica può essere utilizzata per estrarre i parametri cinetici del trasporto neurofilamento, tra cui la velocità, la distorsione direzionale e il comportamento di pausa dai dati risultanti. I metodi di fuga di impulsi e di diffusione del polso possono anche essere adattati per visualizzare il trasporto di neurofilamenti in altri nervi. Con lo sviluppo di topi transgenici aggiuntivi, questi metodi potrebbero anche essere utilizzati per immagini e analisi del trasporto assonale di altre proteine citoscheschescheschesche e citosoliche negli assoni.
Il trasporto assonale dei neurofilamenti è stato dimostrato per la prima volta negli anni '70 mediante l'etichettatura radioisotopica a impulsi1. Questo approccio ha prodotto una ricchezza di informazioni sul trasporto neurofilamento in vivo, ma ha una risoluzione spaziale e temporale relativamente bassa, in genere nell'ordine di millimetri e giorni al meglio2. Inoltre, l'etichettatura radioisotopica degli impulsi è un approccio indiretto che richiede l'iniezione e il sacrificio di più animali per generare un singolo corso di tempo. Con la scoperta delle proteine fluorescenti e i progressi nella microscopia a fl....
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Tutti i metodi qui descritti sono stati approvati dall'Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC) della Ohio State University.
1. Preparazione della soluzione salina nervosa
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La Figura 3 mostra immagini rappresentative da esperimenti di fuga di impulsi e di diffusione del polso. Abbiamo pubblicato diversi studi che descrivono i dati ottenuti utilizzando il metodo pulse-escape e i nostri metodi per l'analisi di quei dati5,6,7,8,17. Di seguito, mostriamo come i dati di diffusione dell'impulso possono pro.......
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L'analisi degli esperimenti di fuga e di diffusione dell'impulso deve essere presa in considerazione perché esiste un potenziale significativo per l'introduzione dell'errore durante la post-elaborazione, principalmente durante la correzione del campo piatto, l'allineamento dell'immagine e la correzione della candeggina. La correzione a campo piatto è necessaria per correggere la non uniformità nell'illuminazione, che si traduce in una caduta di intensità attraverso il campo di vista dal centro alla periferia. L'entità de.......
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Gli autori non hanno nulla da rivelare.
Gli autori ringraziano Paula Monsma per l'istruzione e l'assistenza con la microscopia confocale e la dissezione dei nervi tibiali e la dottoressa Atsuko Uchida, Chloe Duger e Sana Chahande per l'assistenza con l'allevamento dei topi. Questo lavoro è stato sostenuto in parte dalla collaborazione National Science Foundation Grants IOS1656784 ad A.B. e IOS1656765 a P.J., e National Institutes of Health Grants R01 NS038526, P30 NS104177 e S10 OD010383 ad A.B. N.P.B. è stato sostenuto da una borsa di studio del programma Postdoctoral Scholars del Presidente della Ohio State University.
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| Nome | Azienda | Numero di catalogo | Commenti |
|---|---|---|---|
| Guarnizione rettangolare 14 x 22 0,1 mm | Bioptechs | 1907-1422-100 | guarnizione interna |
| 2-deossi-D-glucosio | Sigma | D6134 | |
| Guarnizione rotonda da 30 mm con fori | Bioptechs | 1907-08-750 | guarnizione esterna |
| 35 x 10 mm | Thermo Fisher | 153066 | piastre di dissezione |
| vetrini coprioggetti rotondi da 40 mm | Bioptechs | 40-1313-0319 | |
| Siringa da 60 ml - Punta Luer-lock | BD | 309653 | |
| Sistema confocale a disco rotante Andor Revolution WD | Andor | dotato di sistemi Perfect Focus e FRAPPA | |
| Cloruro di calcio | Fisher | C79 | |
| Vetrini coprioggetti | Fisher | 12-541-B | per vetrino di fluoresceina |
| Soluzione D-(+)-glucosio | Sigma | G8769 | |
| Perni di dissezione | Fine Science Tools | 26001-70 | |
| Pinze di dissezione | Fine Science Tools | 11251-30 | pinze a punta fine |
| Microscopio di dissezione | Zeiss | 47 50 03 | |
| Vaschetta di dissezione con cera | Ginsberg Scientific | 568859 | |
| Forbici di dissezione | Fine Science Tools | 14061-09 | iniziale forbici da dissezione |
| FCS2 camera di perfusione | Bioptechs | 060319-2-03 | |
| Fluoresceina sodica | Fluka | 46960 | |
| Riscaldatore di soluzione in linea | Warner Instruments | SH27-B | |
| Pinze per laminectomia | Fine Science Tools | 11223-20 | pinze per dissezione iniziale |
| Solfato di magnesio | Sigma-Aldrich | M7506 | |
| Vetrino per microacquedotto | Bioptechs | 130119-5 | |
| Vetrini per microscopio | Fisher | 12-544-3 | per vetrino di fluoresceina |
| Inserto per tavolino per microscopio | Strumentazione scientifica applicata | I-3017 | |
| Sistema di riscaldamento dell'obiettivo | Okolab | Oko Touch con collare dell'obiettivo | |
| Olio dell'obiettivo - tipo | A Nikon | fuori produzione | |
| Plan Apo VC 100x 1.40 NA obiettivo | Nikon | MRD01901 | |
| Cloruro di potassio | Fisher | P217 | |
| Fosfato di potassio | Sigma-Aldrich | P0662 | |
| Bicarbonato di sodio | Sigma-Aldrich | S6297 | |
| Cloruro di sodio | Sigma-Aldrich | S7653 | |
| Sodio iodoacetato | Sigma-Aldrich | I2512 | |
| Pompa a siringa | Sage Instruments | Modello 355 | |
| Adattatore per tubi - femmina | Small Parts Inc. | ||
| Adattatore per tubi - maschio | Small Parts Inc. | ||
| Tygon tubi | Bioptechs | 1/16" ID, 1/32" spessore della parete | |
| Vannas forbici a molla | Fine Science Tools | 15018-10 | forbici fini |
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