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Articolo metodologico

Visualizzazione cinetica delle interazioni batteriche interspecie a uni cell

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DOI:

10.3791/61376

5 agosto 2020

* These authors contributed equally

In questo articolo

Sommario

Questo protocollo di imaging cellulare vivo-batterico consente di vedere le interazioni tra più specie batteriche a livello di singola cellula nel tempo. L'imaging time-lapse consente l'osservazione di ogni specie batterica in monocultura o cocoltura per interrogare le interazioni interspecie in comunità batteriche multispecie, tra cui la motilità e la vitalità delle singole cellule.

Abstract

Le comunità polimicrobiche sono onnipresenti in natura, ma studiare le loro interazioni a livello di una singola cellula è difficile. Pertanto, è stato sviluppato un metodo basato sulla microscopia per osservare le interazioni tra le specie tra due patogeni batterici. L'uso di questo metodo per interrogare le interazioni tra un patogeno motile Gram-negativo, Pseudomonas aeruginosa e un patogeno Gram-positivo non motile, Staphylococcus aureus è dimostrato qui. Questo protocollo consiste nel co-inoculare ogni specie tra un coverslip e un pad di agarose, che mantiene le cellule in un unico piano e consente la visualizzazione dei comportamenti batterici sia nello spazio che nel tempo.

Inoltre, la microscopia time-lapse qui dimostrata è ideale per visualizzare le prime interazioni che si svolgono tra due o più specie batteriche, compresi i cambiamenti nella motilità delle specie batteriche nella monocultura e nella coculazione con altre specie. A causa della natura dello spazio campione limitato nella configurazione della microscopia, questo protocollo è meno applicabile per studiare le interazioni successive tra le specie batteriche una volta che le popolazioni cellulari sono troppo alte. Tuttavia, ci sono diverse applicazioni del protocollo che includono l'uso della colorazione per l'imaging di cellule batteriche vive e morte, la quantificazione dell'espressione genica o proteica attraverso giornalisti fluorescenti e il monitoraggio del movimento delle cellule batteriche sia nelle singole specie che negli esperimenti multispecie.

Introduzione

Le comunità polimicrobiche sono comuni in natura, che abbracciano una varietà dinicchie ambientali 1,2,3 e umane4,5. Alcune delle infezioni polimicrobiche più note nella malattia umana includono biofilm dentali6, ferite croniche7,8e infezioni respiratorie in individui con malattia polmonare ostruttivacronica 9, polmonite associata al ventilatore10e la fibrosi cistica della malattia genetic....

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Protocollo

NOTA: una descrizione completa e i numeri di catalogo per tutti i materiali in questo protocollo sono disponibili nella Tabella dei Materiali.

1. Preparazione del supporto minimo M8T

  1. Preparare 1 L di M8 minima sali base (5x) sciogliendo 64 g di Na2HPO47H2O, 15 g di KH2PO4e 2,5 g NaCl in 800 mL di acqua ultrapura (UPW, resistenza 18 MΩ/cm) in una bottiglia da 2 L. pH a 7,6. Volume completo a 1 L con UPW. Autoclave per 45 min.
  2. Preparare 500 mL di una soluzione di glucosio (20% w/v) sciogliendo 100 g di glucosio in 400 mL di UPW in una bottiglia da 1 L. Soluzione comple....

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Risultati

Un uso corretto del metodo descritto comporterà una serie di fotogrammi che generano un video in cui le interazioni traspecie possono essere osservate nel tempo. Lo schema in Figura 1 fornisce un oggetto visivo per evidenziare i passaggi chiave coinvolti nella preparazione dei materiali per l'imaging. L'uso di questo metodo ha permesso la dimostrazione di cellule P. aeruginosa che presentano comportamenti diversi in monocultura rispetto alla cocultura con S. aureus. Rispett.......

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Discussione

I metodi qui presentati descrivono un protocollo per l'imaging a cellule vive delle interazioni delle specie batteriche a livello di singola cellula con modifiche per altre applicazioni, tra cui il monitoraggio delle cellule e il monitoraggio della vitalità cellulare. Questo metodo apre nuove strade per studiare i comportamenti unicelle dei microrganismi in cocoltura con altre specie nel tempo. In particolare, il protocollo dimostra l'utilità di questo metodo di cocultura nell'osservare i comportamenti della superficie b.......

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Dichiarazioni

Gli autori dichiarano di non avere nulla da rivelare.

Ringraziamenti

Questo lavoro è stato sostenuto dal finanziamento del Cystic Fibrosis Foundation Postdoc-to-Faculty Transition Award LIMOLI18F5 (DHL), Cystic Fibrosis Foundation Junior Faculty Recruitment Award LIMOLI19R3 (DHL) e NIH T32 Training Grant 5T32HL007638-34 (ASP). Ringraziamo Jeffrey Meisner, Minsu Kim ed Ethan Garner per aver condiviso protocolli e consigli iniziali per l'imaging e la realizzazione di pastiglie.

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Tamponi di agarosio
35 mm Piatto con fondo in vetro da 20 mm Micro-pozzetto #1.5 Cellvisdi copertura D35-20-1.5-NUno per stampi per tamponi di agarosio, uno per esperimenti
KimWipes Kimberly-ClarkProfessional06-666A
Setaccio Nu per agarosio a basso punto di fusioneGTG/Lonza50081Per la produzione di tamponi
di agarosioSpatole a fondo tondoVWR82027-492
Spatole coniche tondeVWR82027-530
Isolatori in silicone, a pressione per sigillare, 1 pozzetto, diametro D 2,0 mm 20 mm, silicone/adesivoSigma-AldrichS6685-25EAPer stampi per tamponi di agarosio
Piastre di Petri sterili, 85 mmKord-Valmark /venduto da RPI2900
PinzetteVWR89259-944
M8T Minimo Media
D (+) GlucosioRPIG32045
KH2PO4RPIP250500
MgSO4Sigma-Aldrich208094
NaClRPIS23025
Na2HPO4.7H2OSigma-Aldrich230391
TryptoneBD BiosciencesDF0123173
Microscopio
Andor Sona 4.2B-11Andor77026135Fotocamera. 4.2 Megapixel Retroilluminato sCMOS, 11 &; m pixel, 95% QE, 48 fps, USB 3.0, attacco F.
Cubo filtrante GFPNikon96372Cubo filtrante
Cubo filtrante TxRedNikon96375Cubo filtrante
H201-NIKON-TI-S-EROkolab77057447Incubatore da palco
Nikon NIS-Elements AR con GA3 e tracciamento 2D e 3DNikon 77010609, MQS43110, 77010603, MQS42950Software per l'analisi dei dati
Nikon Ti2 EclipseNikonMicroscopio modello Ti2-E
CFI Plan Apo ƛ Obiettivo 20x (0,75NA)NikonMRD00205Obiettivo
CFI Piano Apo ƛ 100x olio Ph3 DM obiettivo (1.45NA)NikonMRD31905Objective
ThermoBox con termoventilatori integratiTokai HitTI2TB-E-BKEnclosure
Bacterial Strains
Pseudomonas aeruginosa PA14 (WT)PMID: 7604262Prototrofio
non mucoidePseudomonas aeruginosa PA14 (WT) pSMC21 (Ptac-GFP)PMID: 9361441
Pseudomonas aeruginosa PAO1 (WT) pPrpoD-mKate2PMID: 26041805
Staphylococcus aureus USA300 LAC (WT)PMID: 23404398USA300 CA-Ceppo LAC resistente alla meticillina senza plasmidi
Staphylococcus aureus USA300 LAC (WT) pCM29 (sarAP1-sGFP)PMID: 20829608
Staphylococcus aureus USA300 LAC Δ agrBDCAPMID: 31713513
Viability Stain
Propidium IodureInvitrogenL7012LIVE/DEAD™ BacLight&commercio; Kit di vitalità batterica

Riferimenti

  1. Lamichhane, J. R., Venturi, V. Synergisms between microbial pathogens in plant disease complexes: a growing trend. Frontiers in Plant Science. 6, 385(2015).
  2. Cursino, L., et al.

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Ristampe e permessi

Tag

Tracciamento di singole cellulemicroscopia time-lapsePseudomonas aeruginosaStaphylococcus aureuspreparazione di pad di agarosioimaging a fluorescenzacolorazione della vitalità cellulareanalisi dell'espressione genicaquantificazione della motilità