La procedura descrive l'isolamento dei villi dall'epitelio intestinale del topo sottoposto a dedifferenziazione per determinare il loro potenziale di formazione organoide.
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Articolo metodologico
La procedura descrive l'isolamento dei villi dall'epitelio intestinale del topo sottoposto a dedifferenziazione per determinare il loro potenziale di formazione organoide.
La clonogenicità degli organoidi dell'epitelio intestinale è attribuita alla presenza di cellule staminali in esso. L'epitelio intestinale di topo è compartimentato in cripte e villi: le cellule staminali e proliferanti sono confinate nelle cripte, mentre l'epitelio villi contiene solo cellule differenziate. Quindi, le normali cripte intestinali, ma non i villi, possono dare origine a organoidi nelle colture 3D. La procedura qui descritta è applicabile solo all'epitelio villus sottoposto a dedifferenziazione che porta allo staminale. Il metodo descritto utilizza il topo mutante condizionale Smad4-loss-of-function:β-catenina gain-of-function (Smad4 KO:β-cateninaGOF). La mutazione fa sì che i villi intestinali dedifferenziati e generino cellule staminali nei villi. I villi intestinali sottoposti a dedifferenziazione vengono raschiati via dall'intestino usando vetrini, posti in un colino da 70 μm e lavati più volte per filtrare eventuali cellule sciolte o cripte prima della placcatura nella matrice BME-R1 per determinare il loro potenziale organoide-formante. Due criteri principali sono stati utilizzati per garantire che gli organoidi risultanti fossero sviluppati dal compartimento dei villi dedifferenzianti e non dalle cripte: 1) valutare microscopicamente i villi isolati per garantire l'assenza di cripte tethered, sia prima che dopo la placcatura nella matrice 3D, e 2) monitorare il corso temporale dello sviluppo organoide dai villi. L'iniziazione organoide dai villi avviene solo da due a cinque giorni dopo la placcatura e appare di forma irregolare, mentre gli organoidi derivati dalla cripta dello stesso epitelio intestinale sono evidenti entro sedici ore dalla placcatura e appaiono sferici. Il limite del metodo, tuttavia, è che il numero di organoidi formati e il tempo necessario per l'iniziazione organoide dai villi variano a seconda del grado di dedifferenziazione. Quindi, a seconda della specificità della mutazione o dell'insulto che causa la dedifferenziazione, lo stadio ottimale in cui i villi possono essere raccolti per saggiare il loro potenziale organoide-formante, deve essere determinato empiricamente.
Le cripte intestinali ma non i villi, formano organoidi quando coltivate in matrice Matrigel o BME-R1. Questi organoidi sono strutture auto-organizzanti, spesso indicate come il "mini-intestino" a causa della presenza dei vari lignaggi differenziati, progenitori e cellule staminali presenti nell'epitelio intestinale in vivo. Il potenziale di formare organoidi dalle cripte è attribuito alla presenza di cellule staminali1. I villi intestinali d'altra parte sono costituiti solo da cellule differenziate e quindi non possono formare organoidi. Tuttavia, mutazioni2 o condizioni che consentono la dedifferenziazione del....
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Tutti gli esperimenti sui topi condotti, incluso l'uso di Tamoxifene e l'eutanasia per lussazione cervicale, hanno avuto l'approvazione del Comitato istituzionale per la cura e l'uso degli animali presso l'Istituto Stevens di echnologia.
1. Topi
NOTA: La generazione di Smad4f/f; Catnblox(ex3)/+; I topi Villin-CreERT2 sono stati precedentemente descritti3. Sono stati utilizzati topi femmina adulti di età compresa tra le otto e le dodici settimane.
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Il fattore determinante per il successo della procedura è prevenire la contaminazione della cripta. Lo sviluppo organoide dai villi (e non da cripte contaminanti) è assicurato confermando quattro criteri principali: 1) garantire la purezza dei villi raccolti mediante esame microscopico prima e dopo la placcatura dei villi in BME-R1, 2) placcare un numero limitato di villi per pozzo per consentire la visualizzazione di tutti i villi placcati singolarmente, 3) onitoring lo sviluppo degli organoidi quotidianamente; le immag.......
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Questo metodo può confermare la capacità di auto-rinnovamento dell'epitelio villi dedifferenziante che acquisisce marcatori di cellule staminali in vivo. Il normale epitelio intestinale può dare origine ad organoidi dalla cripta ma non dal compartimento dei villi, se coltivati in 3D a causa della presenza di cellule staminali nelle cripte1. Pertanto, la formazione di organoidi dall'epitelio villi dedifferenziato coltivato in colture 3D conferma la formazione di cellule staminali dall'inve.......
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Gli autori non dichiarano conflitti di interesse.
Questa pubblicazione è stata supportata dal numero di premio K22 CA218462-03 del NIH National Cancer Institute. Le cellule HEK293-T che esprimono R-Spondin1 sono state un dono generoso del Dr. Michael P. Verzi.
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| Nome | Azienda | Numero di catalogo | Commenti |
|---|---|---|---|
| Avanzato DMEM F-12 media | Gibco | 12634010 | |
| 3,3-diaminobenzidina | Vector Labs | SK-4105 | |
| 96 pozzetti U-bottom | Fisher Scientific | FB012932 | |
| Kit ABC | Vector Labs | PK4001 | |
| Forbice angolata | Fisher Scientific | 11-999 | |
| EGF umano ricombinante senza animali | Peprotech | AF-100-15 | |
| Integratore di B-27 (50X), meno vitamina A | Gibco | 12587010 | |
| Siero bovino Albumina (BSA) Polvere priva di proteasi | Fisher Scientific | BP9703100 | |
| Anticorpo CD44 | BioLegend | ||
| Cdx2 anticorpo | Segnalazione cellulare | 12306 | |
| Olio di mais | Sigma-Aldrich | C8267-500ML | |
| Corning Filtro cellulare da 70 micron | Scienze della vita | 431751 | |
| Cultrex Estratto di membrana basale a fattore di crescita ridotto, tipo R1 | R& D | 3433-005-R1 | |
| Forbici da dissezione | Fisher Scientific | 22-079-747 | |
| Pinze | Fisher Scientific | 17-456-209 | |
| Glutamax (100X) | Gibco | 35050-061 | |
| Cellule HEK 293-T che esprimono RSPO-1 | Dono del Dr. Michael Verzi | ||
| HEPES (1M) | Gibco | 15630-080 | |
| Histogel | Thermoscientific | HG-4000-012 | |
| Filtro a rete | Fisher Scientific | 07-201-431 | |
| Vetrino per micrscope | VWR | 89218-844 | |
| N-2 Supplemento (100X) | Gibco | 17502048 | |
| N-acetil cisteina | Sigma-Aldrich | A9165 | |
| p200 Punte smussate | VWR | 46620-642 | |
| Penicillina-Streptomicina (10.000 U/mL) | Gibco | 15140-122 | |
| Primocin (50mg/mL) | Invivogen | ant-pm-1 | |
| Quality Biological Inc PBS (10X) | Fisher Scientific | 50-146-770 | |
| Noggin murino ricombinante | Peprotech | 250-38 | |
| Diluente del segnale | Segnalazione cellulare | 8112L | |
| Tamoxifene | Sigma-Aldrich | T5648-1G | |
| piastra per coltura tissutale a 6 pozzetti | Fisher Scientific | 50-146-770 |
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