Qui presentiamo un protocollo per la Hopping Probe Ion Conductance Microscopy (HPICM), una tecnica di scansione senza contatto che consente l'imaging su scala nanometrica di fasci di stereocilia in cellule ciliate uditive vive.
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Articolo metodologico
Qui presentiamo un protocollo per la Hopping Probe Ion Conductance Microscopy (HPICM), una tecnica di scansione senza contatto che consente l'imaging su scala nanometrica di fasci di stereocilia in cellule ciliate uditive vive.
Le cellule ciliate dell'orecchio interno rilevano gli spostamenti indotti dal suono e trasducono questi stimoli in segnali elettrici in un fascio di capelli costituito da stereociglia disposte in file di altezza crescente. Quando gli stereocili vengono deviati, tirano su minuscoli (~ 5 nm di diametro) collegamenti di punta extracellulari che interconnettono stereociglia, che trasmettono forze ai canali di trasduzione meccanosensibili. Sebbene la meccanotrasduzione sia stata studiata nelle cellule ciliate vive per decenni, i dettagli ultrastrutturali funzionalmente importanti del meccanismo di meccanotrasduzione alle punte degli stereocilia (come la dinamica del collegamento della punta o il rimodellamento degli stereociglia dipendenti dalla trasduzione) possono ancora essere studiati solo nelle cellule morte con microscopia elettronica. Teoricamente, le tecniche di scansione della sonda, come la microscopia a forza atomica, hanno una risoluzione sufficiente per visualizzare la superficie degli stereociglia. Tuttavia, indipendentemente dalla modalità di imaging, anche il minimo contatto della sonda al microscopio a forza atomica con il fascio di stereociglia di solito danneggia il fascio. Qui presentiamo un protocollo dettagliato per l'imaging al microscopio a conduttanza ionica della sonda saltellante (HPICM) di cellule ciliate uditive di roditori vivi. Questa tecnica di scansione senza contatto consente l'imaging time lapse della superficie di cellule vive con una topografia complessa, come le cellule ciliate, con risoluzione di singoli nanometri e senza entrare in contatto fisico con il campione. L'HPICM utilizza una corrente elettrica che passa attraverso la nanopipetta di vetro per rilevare la superficie della cella nelle immediate vicinanze della pipetta, mentre un sistema piezoelettrico di posizionamento 3D scansiona la superficie e genera la sua immagine. Con HPICM, siamo stati in grado di visualizzare fasci di stereocilia e collegamenti che interconnettono stereociglia nelle cellule ciliate uditive vive per diverse ore senza danni evidenti. Prevediamo che l'uso di HPICM consentirà l'esplorazione diretta dei cambiamenti ultrastrutturali nelle stereociglia delle cellule ciliate vive per una migliore comprensione della loro funzione.
Nonostante il fatto che i fasci di stereocilia nelle cellule ciliate uditive siano abbastanza grandi da essere visualizzati al microscopio ottico e deviati nelle cellule vive in un esperimento di patch clamp, i componenti strutturali essenziali del meccanismo di trasduzione come i collegamenti di punta potrebbero essere ripresi solo con la microscopia elettronica nelle cellule morte. Nelle cellule ciliate uditive dei mammiferi, il meccanismo di trasduzione si trova alle estremità inferiori dei collegamenti della punta, cioè alle punte delle stereociglia della fila più corta1 e regolato localmente attraverso la segnalazione alle punte degli ster....
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Lo studio è stato condotto in conformità con le raccomandazioni contenute nella Guida per la cura e l'uso degli animali da laboratorio del National Institutes of Health. Tutte le procedure per gli animali sono state approvate dall'Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC) dell'Università del Kentucky (protocollo 00903M2005).
1. Produzione e test delle nanopipette
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Il protocollo presentato in questo documento può essere utilizzato per visualizzare qualsiasi cellula viva con topografia complessa. Seguendo questi passaggi, otteniamo regolarmente immagini di fasci di cellule ciliate uditive di ratto vivo (Figura 6B, D). Nonostante abbiano una risoluzione X-Y inferiore rispetto alle immagini SEM, le nostre immagini HPICM possono risolvere con successo le diverse file di stereociglia, la forma delle punte stereociglia e persino i piccoli co.......
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Per ottenere immagini HPICM di successo, gli utenti devono stabilire un sistema a basso rumore e basse vibrazioni e produrre pipette appropriate. Raccomandiamo vivamente l'uso di standard di calibrazione AFM per testare la stabilità del sistema prima di tentare di eseguire qualsiasi imaging di cellule vive. Una volta testata la risoluzione del sistema, gli utenti possono prendere in considerazione l'imaging di organi fissi di campioni Corti per familiarizzare con le impostazioni di imaging prima di tentare qualsiasi imag.......
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Gli autori non hanno interessi in competizione.
Ringraziamo il Prof. Yuri Korchev (Imperial College, Regno Unito) per il supporto e la consulenza a lungo termine in tutte le fasi del progetto. Ringraziamo anche i dottori Pavel Novak e Andrew Shevchuk (Imperial College, Regno Unito) e Oleg Belov (Centro nazionale di ricerca per l'audiologia, Russia) per il loro aiuto nello sviluppo del software. Lo studio è stato supportato da NIDCD/NIH (R01 DC008861 e R01 DC014658 to G.I.F.).
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| Nome | Azienda | Numero di catalogo | Commenti |
|---|---|---|---|
| Oscilloscopio analogico | B& K Precision | 2160C | Oscilloscopio analogico per il monitoraggio in tempo reale della corrente delle nanopipette e dell'approccio all'asse Z |
| STANDARD DI CALIBRAZIONE AFM | TED PELLA Inc | HS-100MG; HS-20MG | Questi standard di calibrazione da 100 e 20 nm vengono utilizzati per testare le prestazioni del sistema HPICM |
| Isolatore di vibrazioni | da banco AMETEK/TMC | Everstill K-400 | Isolamento attivo dalle vibrazioni |
| Capillari in vetro borosilicato | World Precision Instruments (WPI) | 1B100F-4 | Capillari in vetro borosilicato per le nanopipette |
| D-(+)-Glucosio | Sigma-Aldrich | G8270 | Da aggiungere alla soluzione da bagno per regolare l'osmolarità |
| Digitalizzatore | National Instruments Corporation | PCI-6221 | Digitalizzatore multicanale di ingresso/uscita |
| Controllo analogico veloce proporzionale-integrale-derivativo (PID) per il movimento Z | Standford Research Systems | SIM900, SIM960, SIM980 | Moduli di strumentazione integrati in un controller PID esterno per il movimento Z. Richiede una risposta rapida che di solito non è implementata negli amplificatori piezoelettrici commerciali. |
| Gabbia di Faraday | AMETEK/TMC | Tipo II | Necessario per schermare le interferenze elettromagnetiche |
| Piatto con fondo in vetro | World Precision Instruments (WPI) | FD5040-100 | Utilizzato come piatto per la camera per il tessuto |
| salina bilanciata di Hanks (HBSS) | Gibco, Thermo Fisher Scientific | 14025092 | Soluzione extracellulare (bagno) |
| Amplificatore per strumentazione | Brownlee L'amplificatore | Model 440 | fornisce gli offset, il filtraggio e l'ingrandimento o l'attenuazione secondari necessari |
| Estrattore per micropipette basato su laser Estrattore per micropipette | Sutter Instrument | P-2000/G | per fabbricare le nanopipette. Il laser è necessario per le pipette al quarzo affilate. |
| L-15 di Lebovitz, senza rosso fenolo | Gibco, Thermo Fisher Scientific | 21083027 | Soluzione extracellulare (bagno) |
| Micromanipolatore | Scientifica | PatchStar | Utilizzato per il posizionamento "di percorso" dell'attuatore piezoelettrico |
| Z Microscopio | Nikon | Eclipse TS100 | Microscopio ottico invertito |
| Amplificatore di patch | Molecular Devices | Axopatch 200B | L'amplificatore patch clamp misura la corrente attraverso l'amplificatore piezoelettrico a nanopipetta |
| (assi XY) | Physik Instrumente (PI) | E-500.00, E-505.00, E-509. Amplificazione C2A | e controllo PID per stadio di traslazione piezoelettrica XY |
| Amplificatore piezoelettrico (asse Z) | Piezosystem jena | ENT 400 & 800 | Amplificatore personalizzato composto da alimentatore ENT 400 e due amplificatori ENT 800 in parallelo per raggiungere una corrente massima di 1,6 nA |
| Vetrini coprioggetti in plastica | TED PELLA Inc | 26028 | Utilizzato nella fabbricazione delle camere per il tessuto |
| Controller e software SICM | *Ionscope, Regno Unito (ionscope.com) | N/A | Controller personalizzato basato su SBC6711 scheda di elaborazione del segnale digitale di Innovative Integration Ltd |
| Elastomero siliconico (Sylgard) | World Precision Instruments (WPI) | SYLG184 | Utilizzato per fissare le fibre di vetro flessibili alla camera per il tessuto |
| Colla siliconica | The Dow Chemical Company | 734 | Utilizzato per incollare le diverse parti della camera per il tessuto |
| Asta di tungsteno | A-M Systems | 717500 | Utilizzato per tenere i fili del filo interdentale nella camera per il tessuto |
| Nanoposizionatore piezoelettrico XY | Physik Instrumente (PI) | P-733.2DD | Stadio di traslazione XY con sensori capacitivi |
| Nanoposizionatore piezoelettrico Piezosystem | RA 12/24 SG | Piezoattuatore ad anello con sensore estensimetrico | |
| *Ionscope non vende più controller SICM separati. Ci sono pochi altri sistemi commerciali: NX12-Bio e NX10 SICM, | |||
| Park Systems, Corea e moduli SICM di ICAPPIC Limited, Regno Unito (icappic.com). Tutti questi sistemi si basano sull'originale. | |||
| Principi HPICM. Tuttavia, l'imaging dei fasci di stereociglia nelle cellule ciliate richiede diverse modifiche personalizzate che sono tecnicamente | |||
| impegnativo (o addirittura impossibile) in ambito chiuso" pronto all'uso" sistemi come Ionscope o NX12-Bio/NX10. Attualmente, ce n'è solo uno | |||
| sistema modulare (ICAPPIC) che ha la flessibilità necessaria per adattarsi a qualsiasi esperimento SICM/HPICM, ma richiede l'integrazione di alcuni componenti. |
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