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Articolo metodologico

Domini replicativi di imaging in cromatina conservata ultrastrutturalmente mediante tomografia elettronica

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DOI:

10.3791/62803

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20 maggio 2022

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* These authors contributed equally

In questo articolo

Sommario

Questo protocollo presenta una tecnica per la mappatura ad alta risoluzione dei siti di replicazione in cromatina strutturalmente conservata in situ che impiega una combinazione di marcatura EdU-streptavidin-Nanogold pre-incorporante e ChromEMT.

Abstract

I principi del ripiegamento del DNA nel nucleo cellulare e le sue trasformazioni dinamiche che avvengono durante l'adempimento delle funzioni genetiche di base (trascrizione, replicazione, segregazione, ecc.) rimangono poco compresi, in parte a causa della mancanza di approcci sperimentali alla visualizzazione ad alta risoluzione di specifici loci di cromatina in nuclei strutturalmente conservati. Qui presentiamo un protocollo per la visualizzazione di domini replicativi in colture cellulari monostrato in situ, combinando l'etichettatura EdU del DNA appena sintetizzato con la successiva rilevazione dell'etichetta con Ag-amplificazione delle particelle Nanogold e colorazione ChromEM della cromatina. Questo protocollo consente l'etichettatura pre-incorporamento ad alto contrasto e ad alta efficienza, compatibile con la tradizionale fissazione della glutaraldeide che fornisce la migliore conservazione strutturale della cromatina per l'elaborazione dei campioni a temperatura ambiente. Un altro vantaggio dell'etichettatura pre-incorporante è la possibilità di preselezionare le celle di interesse per il sezionamento. Ciò è particolarmente importante per l'analisi di popolazioni cellulari eterogenee, nonché per la compatibilità con gli approcci di tomografia elettronica all'analisi 3D ad alta risoluzione dell'organizzazione della cromatina nei siti di replicazione e all'analisi del riarrangiamento della cromatina post-replicativa e della segregazione cromatidica sorella nell'interfase.

Introduzione

La replicazione del DNA è un processo biologico di base necessario per la copia fedele e la trasmissione delle informazioni genetiche durante la divisione cellulare. Negli eucarioti superiori, la replicazione del DNA è soggetta a una stretta regolazione spazio-temporale, che si manifesta nell'attivazione sequenziale delle origini di replicazione1. Le origini di replica vicine che sparano in modo sincrono formano cluster di replicons2. A livello di microscopia ottica, i siti di replicazione del DNA in corso vengono rilevati come focolai di replicazione di vari numeri e dimensioni. I focolai di replicazione mostrano modell....

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Protocollo

Il protocollo è ottimizzato per le cellule aderenti ed è stato testato su linee cellulari HeLa, HT1080 e CHO.

1. Etichettatura e fissazione delle celle

  1. Cellule di piastre su coperture pulite con acido in una capsula di Petri di 3 cm. Far crescere le cellule nel mezzo raccomandato per la linea cellulare utilizzata al 70% di confluenza.
  2. Aggiungere EdU (5-etinile-2'-deossiuridina) da 10 mM di stock a 10 μM di concentrazione finale e posizionare le cellule nell'incubatore per 10 minuti o più (a seconda dell'obiettivo dell'esperimento). Per impulsi più brevi (fino a 2 minuti), preparare una capsula di Petri c....

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Risultati

I focolai di replicazione nei nuclei cellulari di mammifero mostrano modelli distinti di distribuzione all'interno del nucleo a seconda della progressione della fase S. Questi modelli sono correlati all'attività trascrizionale dei loci replicati. Poiché il metodo qui presentato utilizza una procedura di fissazione piuttosto forte, è abbastanza semplice utilizzare l'etichettatura replicativa degli impulsi per il rilevamento specifico dei loci della cromatina in vari stati trascrizionali, anche in condizioni che offrono la.......

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Discussione

Il metodo qui descritto presenta diversi vantaggi rispetto ai protocolli pubblicati in precedenza. In primo luogo, l'uso della Chimica del clic per etichettare il DNA replicato elimina la necessità del prerequisito di denaturazione del DNA per il rilevamento di BrdU con anticorpi, preservando così meglio l'ultrastruttura della cromatina.

In secondo luogo, l'utilizzo della biotina come ligando secondario generato dopo la fissazione della glutaraldeide e la corretta tempra dei gruppi aldeidici .......

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Dichiarazioni

Gli autori non hanno nulla da rivelare

Ringraziamenti

Questo lavoro è stato supportato in parte da RSF (grant #17-15-01290) e RFBR (grant #19-015-00273). Gli autori ringraziano il programma di sviluppo della Lomonosov Moscow State University (PNR 5.13) e il Nikon Center of Excellence in correlative imaging presso il Belozersky Institute of Physico-Chemical Biology per l'accesso alla strumentazione di imaging.

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Reagente
5-etinil-2'-deossiuridina (EdU)Thermo FisherA10044
2-(4-Morpholino)Acido solfonico etano (MES)Fisher ScientificBP300-100
AlexaFluor 555-azideTermo FisherA20012
biotina-azideLumiprobeC3730
Siero bovino AlbuminaBovalLY-0080
DDSASPI-CHEM26544-38-7
DMP-30SPI-CHEM90-72-2
DRAQ5Thermo Scientific62251
Resina epossidica monomeroSPI-CHEM90529-77-4
Glutaraldeide (25%, grado EM)TED PELLA, INC18426
Gomma arabicaACROS Organics258850010
Cloruro di magnesioPanreac141396.1209
NaBH4SIGMA-ALDRICH213462
NMASPI-CHEM25134-21-8
N-propil gallatoSIGMA-ALDRICHP3130
PBSMP Biomedicals2810305
Lattato d'argentoALDRICH359750-5G
Streptavidina-AlexaFluor 488 coniugatoTermo FisherS11223
Streptavidina-Nanooro coniugatoNanosonde2016
acido tetracloroauricoSIGMA-ALDRICHHT1004
Tris(idrossimetil)amminometano (Tris)CHEM-IMPEX INT'L298
Triton X-100Fluka Chemica93420
Instruments
Carbon CoaterHitachi
Griglie a fessura singola in rameTed Pella1GC10H
Cy5 set di filtri a fluorescenza (Ex620/60 DM660 Em700/75)NikonCy5 HQAlternative: Zeiss, Leica, Olympus
Coltello diamantato Ultra Wet 45oDiatomeDUAlternative: Ted Pella
Microscopio fluorescenteNikonTi-EAlternative: Zeiss, Leica, Olympus
Supporto per campioni ad alta inclinazioneJeol
RotatorBiosanMulti Bio RS-24
Microscopio elettronico a trasmissione operante a 200 kV in modalità EFTEM, con goniometro ad alta inclinazioneJeolJEM-2100Alternative: FEI, Hitachi
PinzetteTed Pella523
UltramicrotomoLeicaUltraCut-EAlternative: RMC
Software
Acquisizione immaginiOpen SourceSerialEM (https://bio3d.colorado.edu/SerialEM/)
Elaborazione immaginiIMOD Open Source(https://bio3d.colorado.edu/imod/)

Riferimenti

  1. Rivera-Mulia, J. C., Gilbert, D. M. Replicating large genomes: divide and conquer. Molecular Cell. 62 (5), 756-765 (2016).
  2. Méchali, M. Eukaryotic DNA replication origins: Many choices for appropriate answers. Nature Reviews Molecular and Cell Biology. ....

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Ristampe e permessi

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