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Articolo metodologico

Fluorescenza in tempo reale, imaging inverso dell'arruffamento cellulare e macropinocitosi

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DOI:

10.3791/62870

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5 agosto 2021

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In questo articolo

Sommario

Questo protocollo dimostra l'imaging del destrano in cellule vive utilizzando l'assorbimento continuo e immagini inverse per ottimizzare la visualizzazione dell'arricciamento, la maturazione dei macropinosomi e l'analisi del destrano e di altre marcature cellulari.

Abstract

La macropinocitosi è un processo altamente conservato, ma ancora non completamente compreso, essenziale per l'assorbimento e l'ingestione di fluidi, nutrienti in fase fluida e altro materiale nelle cellule. La drammatica estensione delle increspature della superficie cellulare, la loro chiusura per formare macropinosomi e la maturazione dei macropinosomi internalizzati sono eventi chiave in questo percorso che possono essere difficili da catturare utilizzando l'imaging confocale convenzionale basato sul tracciamento di un bolo di carico fluorescente. I destroni fluorescenti sono comunemente usati sperimentalmente come marcatori di fase fluida per i macropinosomi e per altre vie endocitiche. Un metodo che il laboratorio ha adottato per ottimizzare l'imaging dell'assorbimento del destrano prevede l'utilizzo di immagini dal vivo di cellule immerse in alte concentrazioni di destrano fluorescente nel mezzo, con le cellule non marcate che appaiono in rilievo (come nere). Le increspature cellulari sono evidenziate per visualizzare la chiusura delle increspature e i macropinosomi internalizzati appaiono come vacuoli fluorescenti all'interno della cellula. Questo metodo è ottimale per visualizzare le caratteristiche dei macropinosomi e consente una facile segmentazione e quantificazione. Questo articolo descrive la doppia marcatura di percorsi con destrani di diverse dimensioni e la co-espressione di sonde lipidiche e proteine fluorescenti di membrana per marcare macropinosomi e altri endosomi. È stata inoltre dimostrata la rilevazione del destrano internalizzato a livello ultrastrutturale mediante microscopia elettronica e ottica correlativa (CLEM). Questi processi cellulari possono essere riprodotti utilizzando diverse modalità di imaging dal vivo, anche in 3D. Nel loro insieme, questi approcci ottimizzano l'imaging dei macropinosomi per molti contesti e sistemi sperimentali diversi.

Introduzione

La maggior parte dei tipi di cellule vertebrate condivide la capacità innata di assorbire non selettivamente il fluido con i predecessori nel corso dell'evoluzione, risalenti all'ameba unicellulare1. Questo processo altamente conservato di assorbimento della fase fluida da parte della macropinocitosi (big drinking) è utilizzato dall'ameba principalmente per l'acquisizione di nutrienti1, mentre nelle cellule dei vertebrati può essere una via di rifornimento per ottenere nutrienti sotto stress, ed è utilizzato dalle cellule immunitarie per il campionamento e la sorveglianza degli ambienti ....

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Protocollo

1. Preparazione delle celle su piastre con fondo di vetro da 35 mm (Giorno 0)

  1. Mantenere e far passare le linee cellulari in terreno completo integrato con siero di vitello fetale inattivato al 10% (per RAW264.7) o normale e L-glutammina all'1%, a 37 °C in incubatore umidificato al 5% di CO2 .
  2. Piastra il numero appropriato di celle per ottenere una confluenza del 60% in 24 ore, su piastre con fondo di vetro da 35 mm.
    NOTA: La densità cellulare raccomandata è compresa tra 2 mL di 0,15 x 106 cellule/mL e 0,25 x 106 cellule/mL per le cellule microgliali RAW264.7, BV2 e MDA-MB 231 q....

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Risultati

L'approccio di imaging di cellule vive non marcate immerse in un'alta concentrazione di destrano fluorescente presenta diversi vantaggi rispetto alle tecniche di imaging convenzionali per il monitoraggio della macropinocitosi. Presentando le immagini in rilievo, i corpi cellulari appaiono neri e consentono una migliore visualizzazione della drammatica superficie cellulare che si increspa su uno sfondo luminoso e fluorescente, seguita dall'internalizzazione in fase fluida dei macropinosomi riempiti di destrano TMR (70 kDa.......

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Discussione

Questo articolo descrive le variazioni sui modi più tradizionali di utilizzare l'etichettatura del destrano per monitorare la macropinocitosi, sulla base dell'imaging dal vivo di cellule immerse continuamente in destrano fluorescente e visualizzando l'assorbimento sullo sfondo nero di cellule non marcate. Il protocollo ottimizzato fornisce i mezzi per distinguere tra diverse vescicole intracellulari e consente un tracciamento spazio-temporale di molteplici carichi e proteine macropinocit.......

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Dichiarazioni

Gli autori dichiarano di non avere interessi finanziari concorrenti.

Ringraziamenti

Gli autori ringraziano Tatiana Khromykh per la sua esperta assistenza tecnica. L'imaging a fluorescenza è stato eseguito in microscopia IMB che incorpora la Cancer Ultrastructure and Function Facility finanziata dall'Australian Cancer Research Foundation; La microscopia elettronica è stata eseguita presso il Centro di Microscopia e Microanalisi dell'UQ. I finanziamenti sono stati ricevuti dal National Health and Medical Research Council of Australia (JLS APP1176209) e dall'Australian Research Council (DP180101910). NDC è supportato come CZI Imaging Scientist dalla sovvenzione numero 2020-225648 della Chan Zuckerberg Initiative DAF, un....

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Tetrossido di osmio al 2%ProSciTechEMS19192
647-Sonde molecolari della transferrina, Invitrogen  Cellule T23366
BV2Dono gentilmente offerto dal Dr Liviu Bodea (Queensland Brain Institute)-
CpG (Classe B) BIntegrated DNA Technologies Ordine
Destrano Alexa Fluor 488  a 10 kDa MWLife Technology Australia Pty LtdD22910
Destrano Alexa Fluor 647  a 10 kDa MWLife Technology Australia Pty LtdD22914
Destrano Oregon Green 488 a 70 kDa MWLife Technology Australia Pty LtdD1818
Destrano Tetrametilrodamina a 70 kDa MW LifeTechnology Australia Pty LtdD7173
DMEM medium con piruvato di sodio e L-glutamminaGibco Invitrogen#11995
Siero fetale di vitelloInterpath Services Pty LtdSFBS-F
Soluzione acquosa di glutaraldeide, grado EM 25%ProSciTechC002
Jeol 1011 microscopio elettronico
Gibco Invitrogen25030081
Lipofectamina 2000Gibco Invitrogen11668019
MatTek  Piatto con fondo in vetro 35 mm, griglia non rivestitaMatTek CorporationP35G-2-14-CGRD
Piastre con fondo in vetro MatTek 35 mm non rivestitoMatTek CorporationP35G-1.5-14C
MDA-MB 231 celleATCCHTB-26
Opti-MEM a siero ridotto ThermoFisher Scientific31985088
Plasmid mCherry-2XFYVEDono gentilmente dato a noi dal Dr Frederic Meunier (Università del Queensland)-
Plasmide mCherry-PLCδ-PHDono gentilmente dato a noi dal Dr Frederic Meunier (Università del Queensland)-
Raw264.7 celluleATCCTIB-71
RPMI medium 1640, senza L-glutamminaGibco Invitrogen# 21870
Ultrapure LPSJomar Life Research Pte LtdTLR-3PELPS
Acetato di uranileProSciTechC079
Microscopio confocale invertito Zeiss LSM880Zeiss-
personalizzato JEOL-L-Glutammina

Riferimenti

  1. King, J. S., Kay, R. R. The origins and evolution of macropinocytosis. Philosophical transactions of the Royal Society of London. Series B, Biological Sciences. 374 (1765), 20180158(2019).
  2. Stow, J. L., Hung, Y., Wall, A. A.

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Ristampe e permessi

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