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Articolo metodologico

Preparazione del campione utilizzando un metodo monostrato lipidico per studi cristallografici elettronici

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DOI:

10.3791/63015

20 novembre 2021

In questo articolo

Sommario

I monostrati lipidici sono stati utilizzati come base per la formazione di cristalli proteici bidimensionali (2D) per studi strutturali per decenni. Sono stabili all'interfaccia aria-acqua e possono fungere da materiale di supporto sottile per l'imaging elettronico. Qui presentiamo i passaggi comprovati sulla preparazione di monostrati lipidici per studi biologici.

Abstract

La cristallografia elettronica è un potente strumento per la determinazione della struttura ad alta risoluzione. Le macromolecole come le proteine solubili o di membrana possono essere coltivate in cristalli bidimensionali (2D) altamente ordinati in condizioni favorevoli. La qualità dei cristalli 2D cresciuti è fondamentale per la risoluzione della ricostruzione finale tramite l'elaborazione di immagini 2D. Nel corso degli anni, i monostrati lipidici sono stati utilizzati come strato di supporto per favorire la cristallizzazione 2D delle proteine di membrana periferica e delle proteine solubili. Questo metodo può essere applicato anche alla cristallizzazione 2D di proteine di membrana integrali, ma richiede un'indagine empirica più ampia per determinare le condizioni di detergente e dialisi per promuovere la suddivisione nel monostrato. Un monostrato lipidico si forma all'interfaccia aria-acqua in modo tale che i gruppi di testa lipidica polare rimangano idratati nella fase acquosa e le catene acilice non polari, le code si dividano nell'aria, rompendo la tensione superficiale e appiattindo la superficie dell'acqua. La natura carica o le parti chimiche distintive dei gruppi di testa forniscono affinità per le proteine in soluzione, promuovendo il legame per la formazione di array 2D. Un monostrato di nuova formazione con l'array 2D può essere facilmente trasferito in un microscopio elettronico (EM) su una griglia di rame rivestita di carbonio utilizzata per sollevare e supportare l'array cristallino. In questo lavoro, descriviamo una metodologia monostrato lipidico per l'imaging criogenico al microscopio elettronico (crio-EM).

Introduzione

La diffrazione elettronica attraverso cristalli 2D o matrici elicoidali di proteine può raggiungere risoluzioni sub-nanometriche in casi favorevoli1,2,3. Di particolare interesse sono gli array di proteine di membrana 2D ricostituite o i cristalli nei loro ambienti quasi nativi1. Poiché un cristallo agisce come un amplificatore di segnale migliorando l'intensità dei fattori strutturali a specifiche frequenze spaziali, la cristallografia elettronica consente di sondare un bersaglio con dimensioni più piccole ad alte risoluzioni, come piccole molecole, r....

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Protocollo

1. Preparazione del blocco di teflon

  1. Preparare il blocco di Teflon da resina PTFE (politetrafluoroetilene) resistente agli agenti chimici. Praticate dei fori sul blocco utilizzando un trapano generale seguito dalle quote etichettate nella Figura 1.

2. Preparazione lipidica monostrato

NOTA: Tempo di funzionamento stimato: 30-45 minuti

  1. Preparazione del brodo lipidico
    1. Preparare una miscela lipidica da 0,01 mg/mL in cloroformio/metanolo 9:1 (v/v) utilizzando 8,91 mL di cloroformio, 0,99 mL di metanolo e 0,01 ml di lipidi....

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Risultati

Un monostrato lipidico depositato sulla griglia EM può essere visualizzato al microscopio elettronico a trasmissione (TEM) senza macchie. La presenza del monostrato può essere riconosciuta dalla differenza di contrasto dall'area senza alcun campione nel percorso del fascio. Le aree che hanno una copertura lipidica monostrato hanno un contrasto locale inferiore rispetto a quelle senza copertura, poiché il fascio di elettroni attraverso i fori vuoti non ha dispersione e mostra un'illuminazione più luminosa (

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Discussione

Un monostrato lipidico è un potente strumento che facilita la crescita di grandi cristalli 2D per studi strutturali di macromolecole biologiche. Per preparare con successo un monostrato lipidico intatto all'interfaccia aria-acqua, si raccomanda vivamente che i lipidi siano preparati appena il giorno dell'esperimento, perché l'ossidazione della catena lipidica acilico potrebbe portare a un'interruzione dell'imballaggio nel monostrato e influire negativamente sulla formazione di cristalli risultante. I lipidi acquistati in.......

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Dichiarazioni

Gli autori non hanno alcun conflitto di interessi da dichiarare.

Ringraziamenti

La preparazione di questo manoscritto è stata parzialmente supportata dall'US Army Research Office (W911NF2010321) e dai fondi di avvio dell'Arizona State University per P.-L.C.

....

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
14:0 PC (DMPC)Avanti Lipids8503451,2-dimiristoil-sn-glicero-3-fosfocolina,
1 x 25 mg, 10 mg/mL, 2,5 mL
Bulbo per pipette piccoleFisher Scientific03-448-21
CloroformioSigma-AldrichC2432
Essiccatore sottovuotoSouthern Labware55207
Griglie EMScienze della microscopia elettronicaCF413-50CF-1.2/1.3-4C 1.2 µ m foro, 1,3 µ m spazio
Carta da filtroGE Healthcare Life Sciences1001-090Diametro 90 mm
Vetro Pasteur pipetteFisher Scientific13-678-20A
Siringa Hamilton (25 µ L)Hamilton Company80465
Siringa Hamilton (250 µ L)Hamilton Company81165
Siringa Hamilton (5 µ L)Hamilton Company87930
Siringa Hamilton (500 µ L)Hamilton Company203080
MetanoloSigma-AldrichM1775-1GA
Piastra di PetriVWR25384-342100 mm & 15 mm
Blocco di teflonGrainger55UK0560 &; Pozzetti a L con porte di iniezione laterali, pinzette fatte manualmente
Microscopia elettronica Scienze78325Vari stili
Acqua
Pulitore ad ultrasuoniVWR97043-996
ultrapura

Riferimenti

  1. Raunser, S., Walz, T. Electron crystallography as a technique to study the structure on membrane proteins in a lipidic environment. Annual Review of Biophysics. 38 (1), 89-105 (2009).
  2. Avila-Sakar, A. J., Chiu, W.

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Ristampe e permessi

Tag

Cristallografia elettronicacristallizzazione 2Dproteine di membranaproteine solubilicriomicroscopia elettronicapreparazione di griglie EMmicroscopio elettronico a trasmissionedeterminazione della struttura proteicatensione superficiale