È richiesta un abbonamento a JoVE per visualizzare questo contenuto. Accedi o inizia la tua prova gratuita.

Articolo metodologico

Microscopia subcellulare intravitale della ghiandola mammaria

1.6K visualizzazioni

⸱

DOI:

10.3791/63674

⸱

24 giugno 2022

 ,  ,  ,  ,  , 

In questo articolo

Sommario

Il presente protocollo descrive una tecnica semplice per l'imaging intravitale della ghiandola mammaria del topo in allattamento mediante microscopia confocale e multifotonica a scansione laser.

Abstract

La ghiandola mammaria costituisce un modello per eccellenza per lo studio delle funzioni epiteliali, tra cui il rimodellamento dei tessuti, la polarità cellulare e i meccanismi secretori. Durante la gravidanza, la ghiandola si espande da un albero duttale primitivo incorporato in un cuscinetto adiposo a una rete alveolare altamente ramificata innescata per la formazione e la secrezione di colostro e latte. Dopo il parto, la ghiandola fornisce tutti i nutrienti necessari per la sopravvivenza neonatale, comprese le goccioline lipidiche rivestite di membrana (LD), le proteine, i carboidrati, gli ioni e l'acqua. Vari componenti del latte, tra cui il lattosio, le micelle di caseina e le proteine del latte scremato, sono sintetizzati all'interno delle cellule alveolari e secreti dalle vescicole per esocitosi sulla superficie apicale. Le LD vengono trasportate dai siti di sintesi nel reticolo endoplasmatico ruvido all'apice cellulare, rivestite di membrane cellulari e secrete da un meccanismo apocrino unico. Altri costituenti preformati, inclusi anticorpi e ormoni, vengono trasportati dal lato sieroso dell'epitelio nel latte mediante transcitosi. Questi processi sono suscettibili di microscopia intravitale perché la ghiandola mammaria è una ghiandola cutanea e, quindi, direttamente accessibile alla manipolazione sperimentale. In questo articolo, viene descritta una procedura semplice per studiare la cinetica della secrezione di LD in situ, in tempo reale, in topi vivi anestetizzati. Il boro-dipirrometene (BODIPY)665/676 o il monodansilpentano sono utilizzati per marcare la frazione lipidica neutra dei topi transgenici, che esprimono EGFP solubile (proteina fluorescente verde potenziata) nel citoplasma o un peptide mirato alla membrana fuso con EGFP o tdTomato. Le proteine di fusione marcate con membrana fungono da marcatori delle superfici cellulari e i coloranti lipidici risolvono le LD ≥ 0,7 μm. Le immagini time-lapse possono essere registrate con la microscopia confocale a scansione laser standard fino a una profondità di 15-25 μm o con la microscopia multifotone per l'imaging più profondo nel tessuto. La ghiandola mammaria può essere bagnata con agenti farmacologici o coloranti fluorescenti durante l'intervento chirurgico, fornendo una piattaforma per manipolazioni sperimentali acute secondo necessità.

Introduzione

La microscopia intravitale della ghiandola mammaria di topo sta attirando sempre più attenzione come metodo potente per analizzare un'intera gamma di fenomeni biologici, tra cui l'origine e la differenziazione delle cellule staminali 1,2, la progressione dei tumori metastatici 3,4,5 e il ruolo dei macrofagi duttali durante lo sviluppo e l'involuzione mammaria6. Attraverso lo sviluppo della microscopia subcellulare intravitale (ISMic)7, l....

Accesso limitato. Accedi o avvia una prova gratuita per visualizzare questo contenuto.

Protocollo

Tutte le procedure per gli animali sono state approvate dall'Institutional Animal Care and Use Committee del Center for Cancer Research, del National Cancer Institute, del National Institutes of Health in conformità con la Guida del National Research Council degli Stati Uniti per la cura e l'uso degli animali da laboratorio, la politica del servizio sanitario pubblico degli Stati Uniti sulla cura umana e l'uso degli animali da laboratorio, e la Guida per la cura e l'uso degli animali da laboratorio. Per questo lavoro, le ghiandole numero 4 di topi primipare femmine (di età compresa tra 4 e 5 mesi, 10° giorno di lattazione) sono state....

Accesso limitato. Accedi o avvia una prova gratuita per visualizzare questo contenuto.

Risultati

Il latte è secreto da cellule epiteliali alveolari polarizzate, che si differenziano durante la gravidanza dalle gemme di un esteso albero duttulare26 (Figura 2A). I precursori per la sintesi del latte vengono assimilati attraverso le membrane basali/laterali e i prodotti completi vengono secreti attraverso la superficie apicale in uno "spazio del latte" centrale. Il lato basale di ciascun alveolo è coperto da una serie stellata di cellule mioepiteliali (

Accesso limitato. Accedi o avvia una prova gratuita per visualizzare questo contenuto.

Discussione

L'utilizzo di un microscopio a uno o più fotoni dipende dalle domande poste, dalla natura e dalla posizione del tessuto da riprendere e dalla risoluzione richiesta. I microscopi multifotone si basano sulla generazione di due o più fotoni a bassa energia nel vicino infrarosso, che possono penetrare nei tessuti a una profondità maggiore con una fototossicità inferiore rispetto ai microscopi a un fotone29,30. Inoltre, il fluoroforo .......

Accesso limitato. Accedi o avvia una prova gratuita per visualizzare questo contenuto.

Dichiarazioni

Nessuno degli autori ha interessi contrastanti da dichiarare.

Ringraziamenti

Gli autori ringraziano Sherry Rausch e Samri Gebre (National Cancer Institute, NIH) per la gestione e la cura degli animali e James Mather per l'aiuto nella produzione di una gamma di distanziatori in plastica. Questa ricerca è stata supportata [in parte] dal Programma di Ricerca Intramurale del NIH.

....

Accesso limitato. Accedi o avvia una prova gratuita per visualizzare questo contenuto.

Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
488 laserMelles-Griot-CW  laser 50 mW
60x PLAPON obiettivo a immersione in olio (NA 1.42)Olympus1-U2B933Lente Microscopio confocale
633 laserMelles-Griot-CWHe-Ne 12 mW
Obiettivo 63x (NA 1.40, HC PL APO CS2)Leica11506350Lens Microscopio a due fotoni
BA 410-460 nmChroma-Filtro passa-banda
BA 495-540 nmFiltro passa-bandaChroma
BA 505-605 nmFiltro passa-bandaChroma
BA 655-755 nmFiltro passa-bandaChroma
Boro-dipirrometano (BODIPY) 665/676Thermo Fisher ScientificB3932Sensore di perossiazione lipidica
Carbomer-940Snowdrift FarmCatetere ingel
TerumoSV27ELSet di infusione alati 
Cauterizzatore Braintree Scientific, IncGEM 5917Sistema di cauterizzazione
CMV-Cre topo Jackson lab006054Mouse line
CoverslipBioptechs-30mmdiametro coverlip per microscopio invertito
Curity 4x4 pollici multiuso spugna garzaCovidien9024Sponge
EGFPcyto mouseJackson lab003291Mouse line
Fiji/ImageJ softwareOpensource-Free
Pinze finiBraintree Scientific, IncFC003 8Pinze per tessuti
Microscopio Fluoview 1000Microscopio confocaleOlympusFV1000
Software FluoView Microscopioconfocale Olympus e microscopio a due fotoni
Rasoio elettrico portatileBraintree Scientific, IncCLP-8786-451AClipper senza fili
TermoforoBraintree Scientific, IncDPIPPad termico per animali
Rivelatori HyDLeica-Leica4Tune rivelatore spettrale
Software ImarisBitplane / Oxford instruments-Strumentosoftware commerciale
Ingisht X3 laser sintonizzabileSpectra PhysicsInsight X3Tunable Pulse-Laser
IsofluraneVetOne13985-046-40Ketamina anestetica
 VetOne13985-702-10Anestetico
LAS X Softwaremicroscopio strumento software
Mai-Tai laser sintonizzabileSpectra Fisica Mai-TaiLaser
MetaMorphMolecular Devices-Strumentosoftware commerciale
Monodansilpentano AUTODOTAbceptaSm1000aColorante goccioline lipidiche
MPE-RS microscopioOlympusIX70Microscopio a due fotoni
mouse mT/mGlabJackson 007676Linea di topi
Riscaldatore dell'obiettivoBioptechs150819Riscaldatore dell'obiettivo per microscopi confocali e a due fotoni
Camera di respirazione satura di ossigenoPatterson Scientific78933385, SAS3 ed EVAC4Sistema di anestesia ed evacuazione dei gas...
ParafilmHeathrow ScientificHS234526Ba film termoplastico semitrasparente, flessibile
Olympus-Descanned    rivelatori
PMT RivelatoreLSM-TechnologyRivelatori non descanneticostruiti su misura
PompaHarvard Apparatus703602, 704402Iniettore e controller di nanoacari
salinaBiologico114-055-721EASoluzione salina normale
Forbici affilate con estremità smussateBraintree Scientific, IncSCT-S 508Forbici
chirurgicheSiringaCovidien22-257-150Siringa tubercolina da 1 ml
TCS SP8 Microscopio spettrale da immersioneLeicaSP8Microscopio a due
fotoni Pinzette Braintree Scientific, IncFC032Pinze per tessuti
Xilazina VetOne13985-704-10Anestetico
739601480651 software Leica-Two-Photon Rivelatore PMT Qualità

Riferimenti

  1. Scheele, C. L. G. J., et al. Identity and dynamics of mammary stem cells during branching morphogenesis. Nature. 542 (7641), 313-317 (2017).
  2. Dawson, C. A., Mueller, S. N., Lindeman, G. J., Rios, A. C., Visvader, J. E. Intravital microscopy of dynamic single-c....

Accesso limitato. Accedi o avvia una prova gratuita per visualizzare questo contenuto.

Ristampe e permessi

Esplora altri articoli

Microscopia intravitaleimaging subcellularesecrezione di gocce lipidichemicroscopia confocalemicroscopia a due fotonicellule epiteliali secretorietopi EGFPsecrezione apocrinaimaging time-lapse