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Articolo metodologico

Controllo delle larve di zanzara Aedes albopictus con Carpesium abrotanoides L.

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DOI:

10.3791/63976

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23 agosto 2022

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1Qiannan Medical College for Nationalities, 2Key Laboratory of Human Parasitic Diseases in Qiannan Prefecture, 3Guizhou Medical University

In questo articolo

Sommario

L'utilizzo della pianta Carpesium abrotanoides L. per il controllo delle larve di zanzara può ridurre efficacemente la popolazione di zanzare Aedes albopictus e fornire una base per la progettazione di insetticidi di origine vegetale.

Abstract

Come vettore vitale della febbre dengue, della febbre gialla e di altre malattie trasmesse dalle zanzare, l'Aedes albopictus (Diptera: Culicidae) può essere ampiamente distribuito in tutto il mondo e causare una grave minaccia per la salute pubblica. Ad oggi, considerando la resistenza agli insetticidi in rapida ascesa nella zanzara, lo sviluppo di nuovi insetticidi botanici per controllare e ridurre l'Ae. albopictus è urgente e cruciale. Pertanto, per studiare l'effetto del decotto della pianta C. abrotanoides L. sull'uccisione delle larve di zanzara, abbiamo rilevato la mortalità delle larve dopo il trattamento con diverse concentrazioni (60 mg/mL, 120 mg/mL e 180 mg/mL) di decotto entro una serie di punti temporali (12 h, 24 h, 36 h e 48 h). Abbiamo scoperto che 24 ore con 180 mg/mL di C. abrotanoides L. il trattamento per decotto ha ucciso il 92,35% delle zanzare rispetto al trattamento di controllo. Nel frattempo, 36 ore con 120 mg/mL potrebbero anche uccidere oltre il 90% delle zanzare. Inoltre, le popolazioni di Carassius auratus sono state esposte a 120 mg/mL di C. abrotanoides L. decotto per 36 ore e non sono morte. La valutazione della mortalità ha indicato che questa concentrazione non è un livello dannoso di inquinamento ambientale ecologico. Questo studio fornisce una possibile pianta candidata che potrebbe essere utilizzata per la progettazione di insetticidi di origine vegetale. Inoltre, questi metodi possono essere modificati e applicati ad altre specie di zanzare.

Introduzione

L'Aedes albopictus, nota anche come "zanzara tigre asiatica", può diffondere una varietà di malattie, come la febbre dengue, la febbre chikungunya e la malattia da virus Zika, succhiando sangue umano e animale1. A causa dell'ampia diffusione di Ae. albopictus, la situazione epidemica di malattie trasmesse dalle zanzare come la febbre dengue è diventata sempre più grave negli ultimi anni, rappresentando una grave minaccia per la vita e la salute delle persone in tutto il mondo2. Attualmente, per la maggior parte delle malattie trasmesse dalle zanzare, non esiste un vaccino efficace o un farmaco terapeutico specifico. Uccidere le zanzare con insetticidi chimici è ancora il mezzo principale per controllare le malattie trasmesse dalle zanzare3. Il metodo di controllo chimico che utilizza insetticidi chimici può uccidere le zanzare in modo rapido ed efficiente ed è diventato il principale mezzo di controllo dei vettori di zanzare4. Tuttavia, l'uso a lungo termine e su larga scala di insetticidi ha portato a un declino della sensibilità di Ae. albopictus agli insetticidi e della resistenza agli insetticidi, che è diventata il più grande ostacolo al controllo delle malattie trasmesse dalle zanzare. Pertanto, è di grande importanza pratica sviluppare un nuovo tipo di insetticida per zanzare con alta efficienza, sicurezza e protezione ambientale.

In natura, le piante sono i produttori primari. Gli insetti e molti animali mangiano le piante. Quando le piante soffrono di vari "disastri naturali e causati dall'uomo", producono metaboliti secondari per sopravvivere. Queste sostanze hanno spesso la capacità di resistere all'alimentazione, alle malattie e alla resistenza degli insetti di altri organismi. Non solo hanno effetti su una varietà di parassiti, ma hanno anche un basso rischio di tossicità ambientale5. Carpesium abrotanoides L. è un'erba perenne del genere Carpesium abrotanoides delle Compositae, nota anche come "rospo blu", "erba viva del cervo", "tabacco selvatico", ecc. È ampiamente distribuito in Cina e nell'Asia orientale. I suoi steli e le sue foglie possono essere usati come insetticidi in queste aree per trattare abrasioni e febbre6. Il suo frutto è localmente conosciuto come "Bei-He-Shi" in Cina ed è usato per trattare la tenia e l'Ascaris lumbricoides nella medicina popolare 7,8. È stato riportato che la pianta è ricca di monoterpeni, sesquiterpeni, fenoli e altri componenti caratteristici e ha effetti farmacologici efficaci, come effetti antinfiammatori, antimicotici, antiparassitari, antitumorali e antivirali7. Studi recenti hanno scoperto che ha un effetto antifeedante su Spodoptera exigua9, tossicità da contatto per Sitophilus zeamais10, capacità di uccidere il cysticercus cellulosae di Taenia asiatica8, attività antifeedant e tossicità da contatto per Armyworm e Plutella xylostella11. Sono stati compiuti progressi preliminari nello studio degli effetti tossici di C. abrotanoides L. su alcuni parassiti, parassiti agricoli e parassiti sanitari, che possono essere utilizzati per controllare le larve di Aedes albopictus.

Questo studio discute il protocollo per il controllo delle larve di Ae. albopictus con C. abrotanoides L. In questo protocollo, il decotto di C. abrotanoides L. è stato utilizzato per agire sulle larve di quarto stadio di Ae. albopictus e la morte larvale è stata rilevata dopo il trattamento con il decotto di C. abrotanoides L. a diverse concentrazioni (60 mg/mL, 120 mg/mL e 180 mg/mL) in una serie di punti temporali (12 h, 24 h, 36 h, e 48 ore). La determinazione dell'effetto letale del decotto di C. abrotanoides L. sulle larve di Ae. albopictus fornisce una nuova idea per un ulteriore controllo delle zanzare con alta efficienza, bassa tossicità e l'uso di insetticidi botanici ecologici.

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Protocollo

Il sangue di capra utilizzato per nutrire le zanzare femmine è stato raccolto da un macello locale nella città di Duyun, Guizhou, in Cina, e utilizzato seguendo le linee guida etiche e i regolamenti del Laboratorio chiave delle malattie parassitarie umane nella prefettura di Qiannan, Duyun, Guizhou, Cina.

1. Preparazione dei reagenti

NOTA: Fare riferimento alla Tabella dei materiali per un elenco di apparecchiature, reagenti e altri materiali di consumo utilizzati in questo protocollo.

  1. Estrazione e identificazione di C. abrotanoides L.
    1. Raccogli l'intera erba di C. abrotanoides L. L'erba intera di C. abrotanoides L. in questo studio è stata raccolta dalla contea autonoma di Sandu Shui, provincia di Guizhou (N: 25,95, E: 107,87) nell'aprile 2021.Le foto dal sito di raccolta per C. abrotanoides L. nella Figura 1.
      NOTA: In base alla distribuzione delle risorse, alle proprietà medicinali, alla struttura dei tessuti e alle caratteristiche di identificazione fisica e chimica di C. abrotanoides L., l'identificazione di C. abrotanoides L. era la seguente: L'intera pianta è alta 30-100 cm, con fusti eretti, molti rami nella parte superiore, foglie alterne nella parte inferiore del fusto, leggermente picciolate, foglie ovali, lunghe 10-15 cm e larghe 5-8 cm, piene o irregolarmente seghettate, foglie nella parte superiore del fusto sono quasi sessili, lunghe ovali, Gradualmente più piccolo verso l'alto, e la testa è ascellare, quasi sessili, con fiori pendenti, gas speciale, sapore leggero e pungente. La pianta è stata identificata come C. abrotanoides L. dagli insegnanti specializzati in medicina tradizionale cinese presso le nostre affiliazioni.
  2. C. abrotanoides L. pulizia, asciugatura e frantumazione
    1. Rimuovere le impurità come foglie morte e terra dal C. abrotanoides L. raccolto e pulirlo. Asciugalo all'aria per 10-15 giorni in condizioni ventilate o asciugalo in forno asciutto a 95 °C per 6 ore.
      NOTA: Durante il processo di essiccazione di C. abrotanoides L., è necessario capovolgerlo in modo che possa asciugarsi in modo uniforme. Se il tessuto di C. abrotanoides L. non viene facilmente frantumato durante il processo di frantumazione, può essere nuovamente essiccato e quindi frantumato.
  3. Preparazione del decotto di essenza di C. abrotanoides L.
    1. Pesare 360 g di C. abrotanoides L. polvere raffinata, aggiungere 1000 mL di acqua distillata e decotta a fuoco lento (potenza 800 W) per 2 h.
    2. Filtrare il decotto con normale carta da filtro e poi concentrarlo in un evaporatore rotante per ottenere un estratto. Diluire l'estratto con acqua distillata a 1000 ml e preparare un C. abrotanoides L.decotto di acqua raffinata contenente 360 mg/mL del materiale medicinale originale.
    3. Prendi 50 mL, 100 mL e 150 mL di decotto d'acqua raffinata di C. abrotanoides L. e diluiscili per preparare decotti d'acqua contenenti 120 mg/mL, 240 mg/mL e 360 mg/mL dei materiali medicinali originali, 150 mL ciascuno per lo standby.
      NOTA: Durante il processo di ebollizione, il calore deve essere ben controllato. Dopo l'ebollizione, il fuoco veniva ridotto e il liquido veniva mantenuto a 100 °C e leggermente bollito.

2. Preparazione del campione di zanzara

  1. Fonte di zanzare
    1. Collezione di larve di Ae. albopictus . In questo studio, le larve di Ae. albopictus sono state raccolte nell'area residenziale della città di Duyun (N: 26,25, E: 107,52), nella provincia di Guizhou, nell'agosto 2020.
    2. In base alla distribuzione, alle caratteristiche morfologiche larvali e adulte di Ae. albopictus, l'identificazione di Aedes albopictus è stata la seguente: La base di Ctenophora delle larve di Aedes albopictus ha un finedraw; sella di coda incompleta; il tubo di respirazione è nero, corto e spesso; gli adulti di Aedes albopictus sono zanzare di piccole e medie dimensioni. La zanzara femmina è di medie dimensioni e nera. Lo scutello mediotoracico ha una striscia longitudinale bianca, che di solito si assottiglia gradualmente nella parte posteriore e si biforca nella zona anteriore del piccolo scutello. L'articolazione del piede ha un anello bianco di base e tutta o la maggior parte dell'articolazione 5 è bianca. Le zanzare sono state identificate come Ae. albopictus dagli insegnanti di Parassitologia e specialità zanzare presso le nostre affiliazioni.
    3. Mantenere l'alimentazione convenzionale a una temperatura di 25 ± 1 °C e un'umidità relativa del 70% ± 10% e utilizzare una lampada fluorescente da 80 W come fonte di luce (luce: buio = 14 h:10 h).
    4. Nutri le larve con polvere di fegato di pollo e le zanzare adulte con il 10% di acqua zuccherata.
  2. Raccolta uova di zanzara
    1. Quando le larve di Ae. albopictus si sono trasformate in pupe, succhiare le pupe usando una pipetta di plastica usa e getta Pasteur e trasferirle nella gabbia per zanzare adulte.
    2. Dopo 3-5 giorni dall'emergenza della zanzara adulta, le zanzare femmina e maschio si accoppiano. A questo punto, nutri le zanzare femmine con sangue per 4-8 ore.
      NOTA: Il sangue aggiunto con l'anticoagulante è stato messo in un piatto di coltura, riscaldato con acqua tiepida a 37 °C e coperto con uno strato di garza per consentire alle zanzare femmine di succhiare il sangue.
    3. Raccogli le uova di Aedes albopictus usando un bicchiere raccogliuova (fatto in casa: 300 ml di bicchiere di plastica opaca con il lato dritto contenente 250 ml di acqua distillata, quindi la carta da filtro è stata immersa a metà del bordo interno del bicchiere).
      NOTA: Le uova di Ae. albopictus possono essere conservate per 3-6 mesi.
  3. Schiusa e alimentazione delle zanzare
    1. Durante l'esperimento, Ae. albopictus di solito si schiudeva con 1 settimana di anticipo. Mettere le uova di Aedes albopictus su un piatto smaltato, aggiungere 1000 ml di acqua di rubinetto e lasciar riposare per più di 24 ore. Le uova si schiudono in larve in 1-2 giorni.
    2. Le larve hanno fatto la muta una volta ogni 1-2 giorni, cioè sono aumentate di uno stadio. Selezionare 1000 larve alla fine del terzo stadio o all'inizio del quarto stadio dopo la riproduzione per 2-3 generazioni senza entrare in contatto con insetticidi chimici in laboratorio per il test.
      NOTA: Se la densità delle larve è troppo alta, dividerle in piastre per consentire alle larve di crescere normalmente.

3. Rilevamento dell'effetto tossico del decotto di C. abrotanoides L. sulle larve di Ae. albopictus mediante il metodo dell'immersione

  1. Impostare il raggruppamento
    1. Impostare il gruppo sperimentale: preparare i decotti di C. abrotanoides L. (50 mL) con tre concentrazioni di farmaco (120 mg/mL, 240 mg/mL e 360 mg/mL).
    2. Gruppo di controllo in bianco: utilizzare acqua declorata (fatta in casa: acqua del rubinetto in piedi per più di 24 ore) con lo stesso volume del farmaco.
    3. Gruppo di controllo positivo: preparare il farmaco deltametrina, un comune insetticida chimico, a una concentrazione finale di 0,05 mg/mL.
  2. Aggiunta di medicinali liquidi
    1. Utilizzare diversi bicchieri di plastica usa e getta con un volume superiore a 200 ml e aggiungere 35 larve di Ae. albopictus alla fine del terzo o all'inizio del quarto stadio a 50 ml di acqua declorata.
    2. Nel gruppo sperimentale, aggiungere 50 mL di C. abrotanoides L. decotto d'acqua raffinata di ogni concentrazione, agitare delicatamente e mescolare uniformemente per un volume totale di 100 mL. Le concentrazioni finali del decotto di acqua raffinata di C. abrotanoides L. sono 60 mg/mL, 120 mg/mL e 180 mg/mL.
    3. Nel gruppo di controllo in bianco, aggiungere 50 mL di acqua declorata a un volume totale di 100 mL e contrassegnarlo come controllo in bianco.
    4. Nel gruppo di controllo positivo, aggiungere 50 mL di soluzione di deltametrina con una concentrazione di 0,1 mg/mL, agitare delicatamente e mescolare uniformemente per un volume totale di 100 mL fino a una concentrazione finale di 0,05 mg/mL e contrassegnarlo come controllo positivo.
  3. Osservazioni
    1. Trasferire delicatamente i bicchieri di plastica contrassegnati nella sala di osservazione con lo stesso ambiente di alimentazione e registrare le morti delle larve di Ae. albopictus in ciascun gruppo sperimentale e di controllo rispettivamente a 12 ore, 24 ore, 36 ore e 48 ore. Osservare gli individui morti al microscopio e confrontarli con le normali larve di Ae. albopictus .
    2. Al punto temporale di osservazione di cui sopra, se le larve sono state agitate con un ago sottile e affilato e non sono riuscite a scappare o non hanno avuto risposta, consideratele come morte. Ripeti il test tre volte.
      NOTA: Se la mortalità delle larve nel gruppo di controllo superava il 20%, i risultati del test non erano validi e dovevano essere ripetuti. L'approccio generale è riassunto nella Figura 2.

4. Esperimento di simulazione all'aperto

  1. Applicare le tre concentrazioni di C. abrotanoides L. decotto alle larve di Ae. albopictus in condizioni esterne per osservare la morte larvale. Confrontare se c'è qualche differenza tra l'effetto tossico e quello in laboratorio.
  2. Applicare le tre concentrazioni di C. abrotanoides L. decotto d'acqua raffinata al carassio selvatico in condizioni esterne per osservare se ha influenzato la crescita del carassio. Questo per giudicare preliminarmente se il C. abrotanoides L.Il decotto d'acqua raffinato provoca danni all'ambiente ecologico.
    NOTA: Le concentrazioni erano simili a quelle indicate al punto 3.2.2. I punti temporali utilizzati sono rispettivamente 12 ore, 24 ore, 36 ore e 48 ore. L'effetto dell'esperimento di simulazione sul campo è stato giudicato confrontando la mortalità di Ae. albopictus trattato con decotto di C. abrotanoides L. in condizioni di alimentazione di laboratorio e in condizioni naturali all'aperto.

5. Analisi statistica

  1. Esprimere i dati quantitativi in media ± SD e i dati di conteggio in percentuale (%).
    NOTA: Il metodo di inferenza statistica utilizzato qui era p < 0,05 e la differenza era statisticamente significativa.
  2. Utilizzare un software appropriato per l'analisi statistica dei dati e delle tossicità di tre diverse concentrazioni di C. abrotanoides , il decotto da L. a larve di Ae. albopictus sono stati utilizzati per determinare preliminarmente quale concentrazione di decotto aveva la migliore tossicità per le larve di Ae. albopictus .

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Risultati

Qui, l'erba intera di C. abrotanoides L. in questo studio è stata raccolta in natura (Figura 1). Dopo l'identificazione di C. abrotanoides L., il decotto di C. abrotanoides L. è stato ottenuto con il metodo del decotto (Figura 2) e preparato in diverse concentrazioni (60 mg/mL, 120 mg/mL e 180 mg/mL). È stato applicato alle larve di Ae. albopictus con il metodo dell'immersione larvale. È stato riscon...

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Discussione

Attualmente, Ae. albopictus è diventata una delle 100 specie più invasive al mondo. Secondo le statistiche dell'Organizzazione Mondiale della Sanità (OMS), nel 2020 le aree più colpite da Ae. albopictus in Asia rappresenteranno circa il 70% del carico globale di malattia12. Come vettore vitale della febbre dengue, della febbre gialla e di altre malattie trasmesse dalle zanzare, Ae. albopictus può essere ampiamente distribuito in tutto il...

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Dichiarazioni

Gli autori non hanno conflitti di interesse da dichiarare.

Ringraziamenti

Ringraziamo il Dr. Xin-Ru Wang dell'Università del Minnesota, per i suggerimenti e le indicazioni approfondite. Questo lavoro è stato sostenuto dal fondo per la ricerca scientifica del Qiannan Medical College for Nationalities (Qnyz202112, QNYZ202205) e dal Fondo per la scienza e la tecnologia della Commissione sanitaria provinciale del Guizhou (qwjh [2022] n. 101, progetto gzwkj2023-251).

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Acetone (purezza analitica)Shanghai Shenbo Chemical Co., Ltd
Carassio carpaGuangzhou Yunfeng acquacoltura Co., Ltd
Fegato di pollo in polvereautoprodotto
Acqua declorataautoprodottaL'acqua del rubinetto in piedi per più di 24 ore
Deltametrina tecnicaNanjing Lesheng Biotechnology Co. , LtdPurezza: 94,62%
Tazza di plastica usa e gettaTecnologia Guizhou Fuqiang Packaging Co., Ltd220ML-A1
Tazza di raccolta delle uovaautoprodotta
Forno elettrico di essiccazioneHangzhou Aipu Instrument Equipment Co., LtdWGLL-230BE
Distillatore d'acqua elettricoPechino Xinrun Kono Instrument Co., LtdTT-98-II
GraphPad PrismGraphPad Softwaredi elaborazione dati e software di grafica
Microscopio digitale integratoChongqing Aote Optical Instrument Co., LtdSMARTe-500
Gabbia di alimentazione per zanzareNanjing Lesheng Biotechnology Co., Ltdmisura
Fornello a induzione multifunzionaleGuangdong Midea living appliance manufacturing Co., LtdC21-WK2102misura
carta da filtro qualitativaHangzhou Fuyang Beimu pulp and Paper Co., Ltd15cm-102
evaporatore rotanteHenan Jingbang Instrument Equipment Co., LtdR-1010
Piccolo frantoioJinhua Mofei elettrodomestici Co., LtdCHY-6001
SPSS versione 25.0Software
Setaccio standard del campioneHebei Hengshui Anping lvruo rete metallica prodotti Co., Ltd100-30su misura
acqua di zucchero, 10%autoprodotto
su su statistico IBM

Riferimenti

  1. Hou, J., Liu, Q., Wang, J., Gong, Z. Insecticide resistance of Aedes albopictus in Zhejiang Province, China. Bioscience Trends. 14 (4), 248-254 (2020).
  2. Deng, J., Guo, Y., Su, X., Liu, S., Chen, X. G. Impact of deltamethrin- resistance in Aedes albopictus on its fitness cost and vector competence. PLoS Neglected Tropical Diseases. 15 (4), 0009391(2021).
  3. Chebabi, A. G., David, R., Raimon, G., Salvador, Q., Nuria, G. Control of the asian tiger mosquito (Aedes albopictus) in a firmLy established area in spain: risk factors and people's involvement. Transactions of the Royal Society of Tropical Medicine and Hygiene. 107 (11), 706-714 (2013).
  4. Li, M. T., et al. The driving force for 2014 dengue outbreak in Guangdong, China. Plos One. 11 (11), 0166211(2016).
  5. Wu, H. B., et al. Insecticidal activity of sesquiterpene lactones and monoterpenoid from the fruits of carpesium abrotanoides. JIndustrial Crops and Products. 92, 77-83 (2016).
  6. Mayur, B., Sandesh, S., Shruti, S., Sung-Yum, S. Antioxidant and α-glucosidase inhibitory properties of Carpesium abrotanoides L. Journal of Medicinal Plant Research. 4 (15), 1547-1553 (2010).
  7. Zhang, J. P., et al. The genus carpesium: a review of its ethnopharmacology, phytochemistry and pharmacology. Journal of Ethnopharmacology. 163, 173-191 (2015).
  8. Liu, X. Y., Guo, G. W., Wang, H. Killing effect of Carpesium abrotanoides on Taenia asiatica Cysticercus. Chinese Journal of Parasitology & Parasitic Disease. 33 (3), 237-238 (2015).
  9. Feng, X. Insecticidal activities of ethanol extracts from thirty chinese medicinal plants against spodoptera exigua (lepidoptera: noctuidae). Journal of Medicinal Plants Research. 6 (7), 1263-1267 (2012).
  10. Ma, Z., Zhang, X., Li, X., He, J. Activity evaluation of extracts from 99 plants against sitophilus zeamais. Journal of the Chinese Cereals & Oils Association. 28 (9), 103-108 (2013).
  11. Li, X. J., He, J., Feng, J. T., Ma, Z. Q., Zhang, X. Screening of the insecticidal activity of extracts from 106 plants in northwest area of China. Journal of Northwest A & F University (Natural Science Edition). 40 (11), 120-126 (2012).
  12. Jayarajah, U., Dissanayake, U., Edirisinghe, K., Seneviratne, P. The world health organization dengue case classifications). Galle Medical Journal. 25 (3), 74-79 (2020).
  13. Zhang, Z. L., Yang, T., Zhang, Y. K., Wang, L. H., Xie, Y. J. Fumigant toxicity of monoterpenes against fruitfly, drosophila melanogaster. Industrial Crops and Products. 81, 147-151 (2016).
  14. Roman, P. Essential oils for the development of eco-friendly mosquito larvicides: A review. Industrial Crops and Products. 76 (4), 174-187 (2015).
  15. Yang, Y. X., Shan, L., Liu, Q. X., Shen, Y. H., Zhang, W. D. Cheminform abstract: carpedilactones a-d, four new isomeric sesquiterpene lactone dimers with potent cytotoxicity from carpesium faberi. Organic Letters. 46 (7), 4216-4219 (2015).
  16. Chen, D. L., Li, X., Zhou, X. J. Research progress on sesquiterpenes and its pharmacological activities in genus carpesium. China Journal of Chinese Materia Medica. 45 (1), 37-51 (2020).
  17. Xu, D. D., et al. Sesquiterpenes and diterpenes with cytotoxic activities from the aerial parts of Carpesium humile. Fitoterapia. 128, 50-56 (2018).
  18. Tian, L., et al. Cle-10 from Carpesium abrotanoides L. suppresses the growth of human breast cancer cells (mda-mb-231) in vitro by inducing apoptosis and pro-death autophagy via the pi3k/akt/mtor signaling pathway. Molecules. 24 (6), 1091-1102 (2019).
  19. Kim, J. -J., Chung, I. -M., Jung, J. -C. In vivo antiplasmodial activity of 11(13)-dehydroivaxillin from Carpesium ceruum. Journal of Enzyme Inhibition & Medicinal Chemistry. 24 (1), 247-250 (2009).
  20. He, Y. Q., Cai, L., Qian, Q. G., Yang, S. H., Zhou, X. J. Anti-influenza A (H1N1) viral and cytotoxic sesquiterpenes from Carpesium abrotanoides. Phytochemistry Letters. 35, 41-45 (2020).
  21. Zhang, L., Chen, F., Wang, J. Review on structural modifications, biological activities and structure-activity relationships of Parthenolide. Natural Product Research. 29, 1617-1620 (2017).
  22. Haris, A., Azeem, M., Binyameen, M. Mosquito repellent potential of carpesium abrotanoides essential oil and its main components against a dengue vector, Aedes aegypti (diptera: culicidae). Journal of Medical Entomology. 59 (3), 801-809 (2022).
  23. Hazarika, H., Tyagi, V., Kishor, S., Karmakar, S., Chattopadhyay, P. Toxicity of essential oils on Aedes aegypti: a vector of chikungunya and dengue fever. International Journal of Mosquito Research. 5 (3), 51-57 (2018).

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