Questo studio presenta un nuovo protocollo per applicare direttamente la forza meccanica sul nucleo cellulare attraverso microsfere magnetiche consegnate nel citoplasma e per condurre simultanee immagini fluorescenti di cellule vive.
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Articolo metodologico
Questo studio presenta un nuovo protocollo per applicare direttamente la forza meccanica sul nucleo cellulare attraverso microsfere magnetiche consegnate nel citoplasma e per condurre simultanee immagini fluorescenti di cellule vive.
Una questione fondamentale in meccanobiologia è come le cellule viventi percepiscono gli stimoli meccanici extracellulari nel contesto della fisiologia e della patologia cellulare. Si ritiene che la meccano-sensazione cellulare degli stimoli meccanici extracellulari sia attraverso i recettori di membrana, il complesso proteico associato e il citoscheletro. I recenti progressi nella meccanobiologia dimostrano che il nucleo cellulare nel citoplasma stesso può percepire indipendentemente gli stimoli meccanici contemporaneamente. Tuttavia, manca una comprensione meccanicistica di come il nucleo cellulare percepisce, trasduce e risponde agli stimoli meccanici, principalmente a causa delle sfide tecniche nell'accesso e nella quantificazione della meccanica del nucleo con strumenti convenzionali. Questo documento descrive la progettazione, la fabbricazione e l'implementazione di un nuovo attuatore di forza magnetica che applica stimoli meccanici 3D precisi e non invasivi per deformare direttamente il nucleo cellulare. Utilizzando cellule ingegnerizzate con CRISPR / Cas9, questo studio dimostra che questo strumento, combinato con l'imaging fluorescente confocale ad alta risoluzione, consente la rivelazione della dinamica in tempo reale di una proteina associata al sì meccano-sensibile (YAP) in singole cellule in funzione della deformazione del nucleo. Questo semplice metodo ha il potenziale per colmare l'attuale divario tecnologico nella comunità meccanobiologica e fornire risposte al divario di conoscenze che esiste nella relazione tra meccanotrasduzione del nucleo e funzione cellulare.
Questo studio mira a sviluppare e applicare una nuova tecnica per chiarire la meccanobiologia del nucleo combinando gli attuatori magnetici che applicano la forza meccanica direttamente sul nucleo cellulare e la microscopia a fluorescenza confocale che visualizza simultaneamente i cambiamenti subcellulari strutturali e funzionali. Le cellule rilevano segnali biofisici extracellulari tra cui rigidità tissutale 1,2,3,4, pressione del liquido interstiziale e sforzo di taglio 5,6,7, topologia / <....
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1. Mantenimento di cellule B2B ingegnerizzate con CRISPR / Cas9
2. Coltu....
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Progettazione di un dispositivo di movimento magnetico e applicazione della forza magnetica
Per applicare forza sul nucleo attraverso le microsfere magnetiche, è stato progettato e costruito un dispositivo di movimento magnetico per controllare la posizione spaziale del magnete. Il dispositivo di spostamento del magnete contiene un telaio centrale, tre manopole e guide per spostare il magnete collegato nelle direzioni x, y e z indipendentemente alla risoluzione spaziale di 1,59 mm per ciclo (
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L'internalizzazione delle microsfere magnetiche (sezione 2.2) è fondamentale perché le microsfere extracellulari non possono applicare forza direttamente al nucleo. L'applicazione della forza e l'imaging (sezione 5.3) sono passaggi critici in questo esperimento e la forza necessaria per deformare il nucleo e indurre conseguenze biologiche significative potrebbe dipendere dal campione. La grandezza della forza in questo esperimento (0,8 nN e 1,4 nN) può essere ulteriormente aumentata per innescare il rilevamento meccano-m.......
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Non ci sono conflitti di interesse da dichiarare.
Questo progetto è finanziato da UF Gatorade Award Start-up Package (X. T.), UFHCC Pilot Award (X. T. e Dr. Dietmar Siemann), UF Opportunity Seed Fund (X. T.) e UFHCC University Scholars Program (H. Y. Wang). Apprezziamo sinceramente le discussioni intellettuali e il supporto tecnico del Dr. Jonathan Licht (UFHCC), Dr. Rolf Renne (UFHCC), Dr. Christopher Vulpe (UFHCC), Dr. Blanka Sharma (BME), Dr. Mark Sheplak (MAE & ECE), Dr. Daniel Ferris (BME), Dr. Malisa Sarntinoranont (MAE), Dr. Ashok Kumar (MAE), Dr. Benjamin Keselowsky (BME), Dr. Brent Gila (RSC), Dr. Philip Feng (ECE), Dr. Gregory A. Hudalla (BME), Dr. Steven Ghivizzani (OSSM), Dr. Yenisel Cruz-Almeida (CDBS),....
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| Nome | Azienda | Numero di catalogo | Commenti |
|---|---|---|---|
| 0,05 % Tripsina | Corning | 25-051-CI | |
| 25 cm2 pallone | Corning | 156340 | |
| 7-µ m diametro medio microsfere di ferro carbonilico | N/A | N/A | |
| Sistema confocale A1R | Polvere | ||
| CM | BASF | 30042253 | Microsfere magnetiche |
| Terreno di coltura (RPMI-1640) | Gibco | 11875093 | |
| Computer desktop | Dell | con sistema operativo Windows 10 | |
| Camera climatica TIZB | Tokai Hit | TIZB | |
| Siero fetale bovino (FBS) | Gibco | 26140 | |
| Fiji ImageJ | National Institutes of Health e il Laboratorio per la strumentazione | ||
| Piastra di Petri con fondo in vetro | MatTek | P35G-1.5-14-C | |
| Magnete | K & J Magnetics, Inc. | D99-N52 | |
| Monocromatico Telecamera | FLIR | BFS-U3-70S7M-C | |
| Piattaforma software NIS-Elements | Piattaforma software | Nikon | |
| Maschera https://github.com/KOLIUG/Nuclear | macro | ||
| ImageJ NucSpot Live 650 | Biotium | #40082 | Colorazione nucleare |
| Penicillina-streptomicina | Gibco | 15140122 | |
| Fosfato tamponato soluzione salina (PBS) | Gibco | 10010023 | |
| Ti2-E | Nikon | ||
| XYZ mover (file CAD) | https://github.com/KOLIUG/XYZ-mover |
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