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Articolo metodologico

Combinazione di attuatore di forza magnetica 3D e imaging a fluorescenza multifunzionale per studiare la meccanobiologia del nucleo

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DOI:

10.3791/64098

5 luglio 2022

In questo articolo

Sommario

Questo studio presenta un nuovo protocollo per applicare direttamente la forza meccanica sul nucleo cellulare attraverso microsfere magnetiche consegnate nel citoplasma e per condurre simultanee immagini fluorescenti di cellule vive.

Abstract

Una questione fondamentale in meccanobiologia è come le cellule viventi percepiscono gli stimoli meccanici extracellulari nel contesto della fisiologia e della patologia cellulare. Si ritiene che la meccano-sensazione cellulare degli stimoli meccanici extracellulari sia attraverso i recettori di membrana, il complesso proteico associato e il citoscheletro. I recenti progressi nella meccanobiologia dimostrano che il nucleo cellulare nel citoplasma stesso può percepire indipendentemente gli stimoli meccanici contemporaneamente. Tuttavia, manca una comprensione meccanicistica di come il nucleo cellulare percepisce, trasduce e risponde agli stimoli meccanici, principalmente a causa delle sfide tecniche nell'accesso e nella quantificazione della meccanica del nucleo con strumenti convenzionali. Questo documento descrive la progettazione, la fabbricazione e l'implementazione di un nuovo attuatore di forza magnetica che applica stimoli meccanici 3D precisi e non invasivi per deformare direttamente il nucleo cellulare. Utilizzando cellule ingegnerizzate con CRISPR / Cas9, questo studio dimostra che questo strumento, combinato con l'imaging fluorescente confocale ad alta risoluzione, consente la rivelazione della dinamica in tempo reale di una proteina associata al sì meccano-sensibile (YAP) in singole cellule in funzione della deformazione del nucleo. Questo semplice metodo ha il potenziale per colmare l'attuale divario tecnologico nella comunità meccanobiologica e fornire risposte al divario di conoscenze che esiste nella relazione tra meccanotrasduzione del nucleo e funzione cellulare.

Introduzione

Questo studio mira a sviluppare e applicare una nuova tecnica per chiarire la meccanobiologia del nucleo combinando gli attuatori magnetici che applicano la forza meccanica direttamente sul nucleo cellulare e la microscopia a fluorescenza confocale che visualizza simultaneamente i cambiamenti subcellulari strutturali e funzionali. Le cellule rilevano segnali biofisici extracellulari tra cui rigidità tissutale 1,2,3,4, pressione del liquido interstiziale e sforzo di taglio 5,6,7, topologia / <....

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Protocollo

1. Mantenimento di cellule B2B ingegnerizzate con CRISPR / Cas9

  1. Coltura di cellule B2B in un pallone T25 con RPMI-1640 integrato con il 10% di siero bovino fetale e l'1% di penicillina-streptomicina.
  2. Mantenere le celle B2B in un incubatore umidificato a 37 °C con il 5% di CO2.
  3. Sottocoltura delle cellule B2B quando la confluenza raggiunge il 70% all'80%.
  4. Conservare la linea cellulare B2B in terreno di coltura RPMI-1640 con DMSO al 10% (v/v) in un congelatore a -80 °C.
  5. Usa le celle B2B con un numero di passaggio inferiore a 10 negli esperimenti.

2. Coltu....

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Risultati

Progettazione di un dispositivo di movimento magnetico e applicazione della forza magnetica
Per applicare forza sul nucleo attraverso le microsfere magnetiche, è stato progettato e costruito un dispositivo di movimento magnetico per controllare la posizione spaziale del magnete. Il dispositivo di spostamento del magnete contiene un telaio centrale, tre manopole e guide per spostare il magnete collegato nelle direzioni x, y e z indipendentemente alla risoluzione spaziale di 1,59 mm per ciclo (

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Discussione

L'internalizzazione delle microsfere magnetiche (sezione 2.2) è fondamentale perché le microsfere extracellulari non possono applicare forza direttamente al nucleo. L'applicazione della forza e l'imaging (sezione 5.3) sono passaggi critici in questo esperimento e la forza necessaria per deformare il nucleo e indurre conseguenze biologiche significative potrebbe dipendere dal campione. La grandezza della forza in questo esperimento (0,8 nN e 1,4 nN) può essere ulteriormente aumentata per innescare il rilevamento meccano-m.......

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Dichiarazioni

Non ci sono conflitti di interesse da dichiarare.

Ringraziamenti

Questo progetto è finanziato da UF Gatorade Award Start-up Package (X. T.), UFHCC Pilot Award (X. T. e Dr. Dietmar Siemann), UF Opportunity Seed Fund (X. T.) e UFHCC University Scholars Program (H. Y. Wang). Apprezziamo sinceramente le discussioni intellettuali e il supporto tecnico del Dr. Jonathan Licht (UFHCC), Dr. Rolf Renne (UFHCC), Dr. Christopher Vulpe (UFHCC), Dr. Blanka Sharma (BME), Dr. Mark Sheplak (MAE & ECE), Dr. Daniel Ferris (BME), Dr. Malisa Sarntinoranont (MAE), Dr. Ashok Kumar (MAE), Dr. Benjamin Keselowsky (BME), Dr. Brent Gila (RSC), Dr. Philip Feng (ECE), Dr. Gregory A. Hudalla (BME), Dr. Steven Ghivizzani (OSSM), Dr. Yenisel Cruz-Almeida (CDBS),....

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
0,05 % TripsinaCorning25-051-CI
25 cm2 palloneCorning156340
7-µ m diametro medio microsfere di ferro carbonilicoN/AN/A
Sistema confocale A1RPolvere
CMBASF30042253Microsfere magnetiche
Terreno di coltura (RPMI-1640)Gibco11875093
Computer desktopDellcon sistema operativo Windows 10
Camera climatica TIZBTokai HitTIZB
Siero fetale bovino (FBS)Gibco26140
Fiji ImageJNational Institutes of Health e il Laboratorio per la strumentazione
Piastra di Petri con fondo in vetroMatTekP35G-1.5-14-C
MagneteK & J Magnetics, Inc.D99-N52
Monocromatico  TelecameraFLIRBFS-U3-70S7M-C
Piattaforma software NIS-ElementsPiattaforma softwareNikon
Maschera https://github.com/KOLIUG/Nuclearmacro
ImageJ NucSpot Live 650Biotium#40082Colorazione nucleare
Penicillina-streptomicinaGibco15140122
Fosfato tamponato soluzione salina (PBS)Gibco10010023
Ti2-ENikon
XYZ mover (file CAD)https://github.com/KOLIUG/XYZ-mover
di ferro carbonilico Nikon ottica e computazionaleMaschera nucleo Microscopio invertito

Riferimenti

  1. Discher, D. E., Janmey, P., Wang, Y. Tissue cells feel and respond to the stiffness of their substrate. Science. 310 (5751), 1139-1143 (2005).
  2. Janmey, P. A., Fletcher, D. A., Reinhart-King, C. A. Stiffness sensing by cells. Physiological Reviews. 100 (2), 695-724 (2020).
  3. Bajaj, P., ....

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Ristampe e permessi

Tag

Microscopia confocalemeccanosensing nuclearetraslocazione di YAPmicrosfere magnetichedeformazione del nucleomeccanica del citoscheletroimaging di cellule vive