$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Seguendo il protocollo, un U-Net a cinque fette è stato addestrato su un singolo tomogramma (Figura 2A) per identificare cinque classi: membrana, microtubuli, actina, marcatori fiduciali e background. La rete è stata addestrata iterativamente per un totale di tre volte, quindi applicata al tomogramma per segmentarla e annotarla completamente (Figura 2B,C). La pulizia minima è stata eseguita utilizzando i passaggi 7.1 e 7.2. I successivi tre tomogrammi di interesse (Figura 2D,G,J) sono stati caricati nel software per la pre-elaborazione. Prima dell'importazione dell'immagine, uno dei tomogrammi (Figura 2J) richiedeva la regolazione della dimensione dei pixel da 17,22 Å / px a 13,3 Å / px poiché veniva raccolto su un microscopio diverso con un ingrandimento leggermente diverso. Il programma IMOD squeezevol è stato utilizzato per il ridimensionamento con il seguente comando:
'squeezevol -f 0.772 inputfile.mrc outputfile.mrc'
In questo comando, -f si riferisce al fattore con cui modificare la dimensione dei pixel (in questo caso: 13.3/17.22). Dopo l'importazione, tutti e tre gli obiettivi di inferenza sono stati pre-elaborati secondo i passaggi 3.2 e 3.3, quindi è stato applicato U-Net a cinque sezioni. È stata nuovamente eseguita una pulizia minima. Le segmentazioni finali sono visualizzate nella Figura 2.
Le segmentazioni dei microtubuli da ciascun tomogramma sono state esportate come file TIF binari (passo 7.4), convertiti in MRC (programma IMOD tif2mrc ) e quindi utilizzati per la correlazione dei cilindri e il tracciamento dei filamenti. Le segmentazioni binarie dei filamenti si traducono in un tracciamento dei filamenti molto più robusto rispetto al tracciamento sui tomogrammi. Le mappe di coordinate dal tracciamento dei filamenti (Figura 3) saranno utilizzate per ulteriori analisi, come le misurazioni del vicino più vicino (impacchettamento del filamento) e la media del subtomogramma elicoidale lungo i singoli filamenti per determinare l'orientamento dei microtubuli.
Le reti non riuscite o non adeguatamente addestrate sono facili da determinare. Una rete guasta non sarà in grado di segmentare alcuna struttura, mentre una rete non adeguatamente addestrata in genere segmenterà correttamente alcune strutture e avrà un numero significativo di falsi positivi e falsi negativi. Queste reti possono essere corrette e addestrate iterativamente per migliorare le loro prestazioni. La procedura guidata di segmentazione calcola automaticamente il coefficiente di somiglianza dei dadi di un modello (chiamato punteggio nella SegWiz) dopo che è stato addestrato. Questa statistica fornisce una stima della somiglianza tra i dati di allenamento e la segmentazione U-Net. Dragonfly 2022.1 ha anche uno strumento integrato per valutare le prestazioni di un modello a cui è possibile accedere nella scheda Intelligenza artificiale nella parte superiore dell'interfaccia (vedere la documentazione per l'utilizzo).

Figura 2: Inferenza. (A-C) Tomogramma di addestramento originale di un neurone di ratto ippocampale DIV 5, raccolto nel 2019 su un Titan Krios. Questa è una ricostruzione retroproiettata con correzione CTF in IMOD. (A) La casella gialla rappresenta la regione in cui è stata eseguita la segmentazione della mano per l'input di formazione. (B) Segmentazione 2D da U-Net al termine dell'addestramento. (C) Rendering 3D delle regioni segmentate che mostrano membrana (blu), microtubuli (verde) e actina (rosso). (D-F) DIV 5 neurone di ratto ippocampale dalla stessa sessione del tomogramma di allenamento. (E) Segmentazione 2D da U-Net senza formazione aggiuntiva e pulizia rapida. Membrana (blu), microtubuli (verde), actina (rosso), fiduciali (rosa). (F) Rendering 3D delle regioni segmentate. (G-I) DIV 5 neurone di ratto ippocampale dalla sessione 2019. (H) segmentazione 2D da U-Net con pulizia rapida e (I) rendering 3D. (J-L) DIV 5 neurone di ratto ippocampale, raccolto nel 2021 su un diverso Titan Krios a un diverso ingrandimento. La dimensione dei pixel è stata modificata con il programma IMOD squeezevol per abbinare il tomogramma di allenamento. (K) Segmentazione 2D dalla rete U-Net con pulizia rapida, dimostrando una solida inferenza tra i set di dati con un'adeguata pre-elaborazione e (L) rendering 3D della segmentazione. Barre di scala = 100 nm. Abbreviazioni: DIV = giorni in vitro; CTF = funzione di trasferimento del contrasto. Fare clic qui per visualizzare una versione ingrandita di questa figura.

Figura 3: Miglioramento del tracciamento dei filamenti . (A) Tomogramma di un neurone ippocampale di ratto DIV 4, raccolto su un Titan Krios. (B) Mappa di correlazione generata dalla correlazione dei cilindri sui filamenti di actina. (C) Tracciatura dei filamenti di actina utilizzando le intensità dei filamenti di actina nella mappa di correlazione per definire i parametri. Il tracciamento cattura la membrana e i microtubuli, così come il rumore, mentre cerca di tracciare solo l'actina. (D) Segmentazione U-Net del tomogramma. Membrana evidenziata in blu, microtubuli in rosso, ribosomi in arancione, triC in viola e actina in verde. (E) Segmentazione dell'actina estratta come maschera binaria per il tracciamento dei filamenti. (F) Mappa di correlazione generata dalla correlazione del cilindro con gli stessi parametri di (B). (G) Tracciatura dei filamenti significativamente migliorata dei soli filamenti di actina dal tomogramma. Abbreviazione: DIV = giorni in vitro. Fare clic qui per visualizzare una versione ingrandita di questa figura.
File supplementare 1: il tomogramma utilizzato in questo protocollo e il multi-ROI generato come input di training sono inclusi come set di dati in bundle (Training.ORSObject). Vedi https://datadryad.org/stash/dataset/doi:10.5061/dryad.rxwdbrvct.