Articolo metodologico

Preparazione di una sospensione unicellulare da arterie carotidi di topo per il sequenziamento di singole cellule

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DOI:

10.3791/65863

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19 gennaio 2024

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1Cyrus Tang Hematology Center, Cyrus Tang Medical Institute, Soochow University, 2Collaborative Innovation Center of Hematology of Jiangsu Province, Soochow University, 3Suzhou Key Laboratory of Thrombosis and Vascular Biology, Soochow University

In questo articolo

Sommario

Qui descriviamo un protocollo di digestione cellulare in due fasi per la preparazione di una sospensione unicellulare delle arterie carotidi di topo.

Abstract

Le arterie carotidi sono i principali vasi sanguigni del collo che forniscono sangue e ossigeno al cervello, ma la stenosi carotidea si verifica quando le arterie carotidi sono ostruite dalla placca. Rivelare la composizione cellulare dell'arteria carotide a livello di singola cellula è essenziale per il trattamento dell'aterosclerosi carotidea. Tuttavia, non esiste un protocollo pronto all'uso per la preparazione di sospensioni unicellulari da arterie carotidi. Per ottenere un protocollo adatto per la dissociazione delle arterie carotidi normali a livello di singola cellula con meno danni alle cellule, abbiamo progettato un metodo di digestione in due fasi integrando il processo di digestione della collagenasi/DNasi e della tripsina. Per rilevare la vitalità e la concentrazione delle cellule è stato utilizzato il conteggio a doppia fluorescenza di arancia acridina/ioduro di propidio (AO/PI) ed è stato riscontrato che la sospensione a singola cellula soddisfaceva i requisiti per il sequenziamento a singola cellula, con una vitalità delle cellule superiore all'85% e un'elevata concentrazione cellulare. Dopo l'elaborazione dei dati di una singola cellula, è stata rilevata una mediana di ~2500 trascritti per cellula in ciascuna cellula dell'arteria carotide. In particolare, una varietà di tipi di cellule della normale arteria carotide, tra cui le cellule muscolari lisce vascolari (VSMC), i fibroblasti, le cellule endoteliali (EC) e i macrofagi e le cellule dendritiche (Mφ/DC), erano rilevabili contemporaneamente. Questo protocollo può essere applicato per preparare una sospensione unicellulare di vasi sanguigni di altri tessuti con opportune modifiche.

Introduzione

L'aterosclerosi è una malattia infiammatoria cronica associata a fattori di rischio come l'ipertensione, l'iperlipidemia e l'emodinamica1. Le biforcazioni dell'arteria carotide sono soggette a cambiamenti emodinamici e portano alla formazione di placche carotidi. La presentazione clinica dell'aterosclerosi carotidea può essere acuta, come ictus e ischemia cerebrale transitoria, o cronica, come ischemia cerebrale transitoria ricorrente e demenza vascolare2. Meccanicamente, la placca carotidea è il risultato dell'interazione tra diverse cellule della parete dei vasi e varie cellule del sangue in condizioni patologiche. Pertanto, rivelare l'atlante unicellulare dei vasi carotidei in condizioni fisiologiche e patologiche è particolarmente importante per prevenire e trattare lo sviluppo della placca carotidea.

Il sequenziamento dell'RNA a singola cellula è una delle tecnologie più potenti della ricerca biologica grazie alla sua altissima risoluzione e al rilevamento dell'eterogeneità cellulare dallo stesso tipo di cellule di organismi 3,4. I ricercatori hanno utilizzato il sequenziamento dell'RNA a singola cellula per condurre ricerche in molti campi, come le malattie cardiovascolari5 e il cancro6. Tuttavia, separare in modo rapido e accurato i tessuti in singole cellule è ancora una delle sfide principali. La dissociazione enzimatica è un metodo comunemente usato che include prevalentemente collagenasi, papaina, tripsina, DNasi e ialuronidasi. In particolare, le collagenasi sono le principali specie enzimatiche per la digestione unicellulare, principalmente idrolizzando i componenti del collagene nei tessuti connettivi. Diversi tipi di collagenasi sono applicabili per la dissociazione di diversi tessuti, come la ghiandola mammaria7, il glomerulo8, l'angolo iridocorneale9, l'articolazione del ginocchio10, l'aorta 11 e il polmone12. A causa delle proprietà fisiologiche uniche dei diversi tessuti, la dissociazione con lo stesso metodo può causare molti problemi nell'acquisizione di singole cellule, come bassa vitalità cellulare, basso numero di cellule e detriti cellulari di grandi dimensioni. Pertanto, l'invenzione di metodi di digestione per diversi tessuti è essenziale per preparare sospensioni unicellulari di alta qualità.

Questo protocollo mira a sviluppare un metodo di digestione cellulare in due fasi per preparare una sospensione unicellulare dell'arteria carotide di topi wild-type. In base alle caratteristiche dell'arteria carotide, abbiamo combinato la collagenasi/DNasi con la tripsina per ottenere una sospensione unicellulare di alta qualità dell'arteria carotide del topo perché la collagenasi può idrolizzare il collagene dei tessuti carotidi, che è stato ulteriormente digerito dalla tripsina in una sospensione unicellulare. Per rilevare la vitalità e la concentrazione delle cellule è stato utilizzato il conteggio a doppia fluorescenza di arancia acridina/ioduro di propidio (AO/PI) ed è stato riscontrato che la sospensione a singola cellula soddisfaceva i requisiti per il sequenziamento a singola cellula, con una vitalità delle cellule superiore all'85% e un'elevata concentrazione cellulare. Dopo l'elaborazione dei dati a singola cellula, quattro tipi di cellule, tra cui cellule muscolari lisce vascolari (VSMC), fibroblasti, cellule endoteliali (EC) e macrofagi e cellule dendritiche (Mφ/DC), sono stati identificati nelle arterie carotidi di topo normali dopo la digestione. I vantaggi di questo protocollo sono che: 1) è possibile identificare più tipi di cellule nell'arteria carotide, 2) la vitalità cellulare è ben preservata e 3) può essere facilmente ripetuto senza apparecchiature speciali. Questo protocollo è adatto ai ricercatori interessati a studiare la multiomica a singola cellula delle arterie carotidi di topo. Questo protocollo può anche essere utile nella dissociazione di altri vasi sanguigni con opportune modifiche.

Protocollo

Tutte le procedure sugli animali descritte di seguito sono state approvate dal Comitato Istituzionale per la Cura e l'Uso degli Animali dell'Università di Soochow.

1. Preparazione di reagenti e materiali

  1. Utilizzare 1x PBS senza calcio e magnesio e 2,5 U/mL di sale sodico di eparina per preparare la soluzione di perfusione. Conservare a 4 °C e preraffreddare su ghiaccio al momento dell'uso.
  2. Preparare il reagente di dissociazione A che contenga 125 CDU/mL collagenasi II e 60 U/mL DNasi I diluendo 1250 CDU/mL collagenasi II e 3000 U/mL DNasi I con HBSS. Conservare a 4 °C fino al momento dell'utilizzo.
  3. Preparare il reagente di dissociazione B che contenga una concentrazione finale di tripsina dello 0,12% diluendo 1 mL di tripsina senza EDTA allo 0,25% (senza rosso fenolo) in 1 mL di PBS 1x. Conservare a 4 °C fino al momento dell'utilizzo.
  4. Preparare 10 mL di FBS all'1,5% e 10 mL di FBS al 5% in 1x PBS. Utilizzare l'1,5% di FBS per raggruppare le arterie carotidi e mantenere il ghiaccio prima dell'uso. Utilizzare FBS al 5% per neutralizzare la digestione e conservare a temperatura ambiente (RT).
  5. Procuratevi i materiali sperimentali, tra cui siringhe da 1 mL, siringhe da 20 mL con aghi da 26 G, piastre per colture cellulari a sei pozzetti, provette da centrifuga da 1,5 mL, filtri per cellule sterili da 40 μm e contenitori per il ghiaccio.

2. Preparazione dell'attrezzatura

  1. Sterilizzare tutte le attrezzature chirurgiche, tra cui un microscopio stereoscopico, forbici da dissezione, forbici da micro-dissezione e pinze a punta fine.
  2. Attivare il contatore automatico di cellule e mantenerlo a RT.
  3. Accendere il bagnomaria a 37 °C in anticipo.
  4. Preraffreddare la microcentrifuga a 4 °C prima dell'uso.

3. Isolamento dell'arteria carotide del topo

  1. Anestetizzare il topo utilizzando tribromoetanolo all'1,25% mediante iniezione intraperitoneale (0,24 ml per ogni 10 g di peso corporeo) e capovolgere il topo per verificare se c'è un riflesso di raddrizzamento dopo 3 minuti. Quindi, sopprimere il topo con lussazione cervicale e adagiarlo sulla schiena. Spruzzare la pelle del topo con alcol al 75%.
  2. Usa forbici da dissezione sterilizzate per aprire la pelle ed esporre la cavità toracica. Aprire il diaframma.
  3. Continuare a tagliare verso l'alto fino alla mascella inferiore e rimuovere con cura i tessuti connettivi e il grasso in eccesso, esponendo l'arteria carotide.
  4. Taglia la vena cava inferiore del topo per far defluire il sangue dalla circolazione chiusa.
  5. Iniettare 20 mL di soluzione di perfusione preraffreddata nel ventricolo sinistro con una siringa lentamente e continuamente.
    NOTA: Se la perfusione ha successo, gli organi ricchi di sangue come il fegato, la milza e i reni diventeranno grigio-bianchi.
  6. Staccare tutti i tessuti adiposi e connettivi intorno all'arteria carotide con forbici da micro-dissezione al microscopio stereoscopico.
    NOTA: Questo passaggio deve essere eseguito lentamente e con attenzione per evitare danni all'arteria carotide.
  7. Isolare l'arteria carotide dal topo, lavare con 1x PBS per lavare nuovamente il sangue e trasferire in piastre a sei pozzetti contenenti l'1,5% di FBS su ghiaccio.

4. Digestione dell'arteria carotide in sospensione unicellulare

  1. Utilizzare forbici da micro-dissezione per sezionare longitudinalmente l'arteria carotide e distenderla in un'altra piastra di coltura cellulare a 6 pozzetti contenente 1 ml di FBS all'1,5% su ghiaccio.
  2. Sciacquare accuratamente l'intima con FBS all'1,5% per rimuovere il sangue residuo.
    NOTA: Il lavaggio deve essere delicato e lento per evitare di danneggiare le cellule endoteliali.
  3. Tagliare ciascuna arteria carotide in circa 2 mm2 pezzi di tessuto utilizzando forbici da microdissezione in FBS all'1,5%.
  4. Trasferire questi pezzi di tessuto in una provetta da centrifuga da 1,5 mL con punte larghe da 1 mL, centrifugare a 400 x g per 5 minuti a 4 °C per affondare i tessuti sul fondo.
  5. Scartare il surnatante e risospendere i tessuti in 500 μL di reagente di dissociazione A.
  6. Mettere il tubo a bagnomaria a 37 °C per 1 h. Pipettare delicatamente con una pipetta da 1 mL ogni 10 min.
  7. Aggiungere 500 μL di FBS al 5% nella provetta e mescolare bene con una pipetta da 1 mL.
  8. Filtrare la sospensione cellulare attraverso un colino cellulare sterile da 40 μm in una nuova provetta da centrifuga da 1,5 mL e centrifugare a 400 x g per 5 minuti a 4 °C.
  9. Rimuovere con cautela il surnatante e risospendere il pellet cellulare in 200 μL di reagente di dissociazione B.
  10. Mettere a bagnomaria a 37 °C e digerire per altri 5 minuti. Pipettare delicatamente ogni 2 minuti durante la digestione per dissociarsi completamente in una sospensione unicellulare.
  11. Utilizzare 200 μL di FBS al 5% per terminare la reazione di digestione e centrifugare a 400 x g per 5 minuti a 4 °C.
  12. Scartare il surnatante e risospendere il pellet cellulare in 100 μL di 1x PBS su ghiaccio.

5. Esame della sospensione cellulare e sequenziamento dell'RNA a singola cellula

  1. Aggiungere 10 μL di soluzione AO/PI in 10 μL di sospensione unicellulare e miscelare delicatamente con una pipetta da 20 μL.
  2. Pipettare 20 μL di miscela nel vetrino della camera e attendere 1 minuto.
  3. Caricare il vetrino nello strumento contatore automatico di cellule.
  4. Selezionare il test di vitalità AO/PI , quindi attendere il rapporto di qualità.
  5. Utilizzare un kit di reagenti 3ʹ a cellula singola per generare perle di gel unicellulare nell'emulsione su un controller a cellula singola e amplificare il cDNA con codice a barre in un termociclatore seguendo il protocollo del produttore.
    NOTA: In questo caso è stato utilizzato il kit di reagenti 3 a cella singola di cromo v3.
  6. Eseguire il sequenziamento su un sequencer con una strategia di lettura a 150 bp (PE150) a due estremità. Utilizzare un'applicazione software (Cell Ranger) per convertire i file di chiamata di base non elaborati in file fastq utilizzando la pipeline mkfastq . Quindi, utilizzare la pipeline di conteggio di Cell Ranger per eseguire l'allineamento, il filtraggio, il conteggio dei codici a barre e il conteggio degli identificatori molecolari univoci (UMI) per generare matrici di codici a barre feature13.
  7. Esegui la riduzione e la visualizzazione della dimensionalità dei dati con il pacchetto R Seurat14.
    1. Innanzitutto, la funzione Read10X() di Seurat legge l'output della pipeline Cell Ranger e quindi utilizza la matrice di conteggio per creare un oggetto Seurat. Quindi, filtrare le cellule con l'espressione di <200 o >4000 geni o un rapporto genico mitocondriale superiore al 10% dalla funzione subset() di Seurat.
    2. Utilizzare NormalizeData () e FindVariableFeatures() per normalizzare i dati e identificare rispettivamente 2000 feature altamente variabili.
    3. Eseguire l'analisi delle componenti principali (PCA) sui dati scalati e raggruppare le celle con dims = 30 e risoluzione = 0,5. Infine, utilizzare la funzione RunUMAP () per visualizzare i set di dati a cella singola e FindAllMarkers() per trovare ogni biomarcatore del cluster.

Risultati

Questo protocollo descrive un metodo di digestione cellulare in due fasi per la preparazione di una sospensione unicellulare di arterie carotidi di topo (Figura 1). Questo metodo di digestione cellulare in due fasi combina la collagenasi/DNasi con la tripsina per dissociare efficacemente la parete vascolare carotide del topo per ottenere sospensioni unicellulari di alta qualità per il sequenziamento di singole cellule. Dopo la dissociazione, la concentrazione cellulare e la vitalità cellulare sono state calcolate da un contatore cellulare automatizzato. Il campo luminoso ha mostrato la morfologia delle cellule vascolari carotidi dopo la digestione e la colorazione a doppia fluorescenza AOPI ha rilevato contemporaneamente la vitalità cellulare (Figura 2A, B). In particolare, rispetto all'uso del solo reagente di dissociazione A, il tessuto carotideo può essere dissociato in modo più completo se combinato con il reagente di dissociazione B. Abbiamo inoltre trovato una conta cellulare vitale di nove arterie e il diametro medio delle cellule soddisfaceva i requisiti del sequenziamento di singole cellule dopo la digestione cellulare in due fasi (Figura 2C). Nel frattempo, un totale di 176.000 singole cellule sono state raccolte da nove carotidi sinistre e la maggior parte dei vasi vascolari sono stati dissociati in singole cellule ad alta vitalità (Figura 2C).

Dopo l'allineamento, il filtraggio, il conteggio dei codici a barre e il conteggio UMI, i dati grezzi del sequenziamento di singole cellule sono stati analizzati con il pacchetto R Seurat. La distribuzione dei geni per cellula, l'UMI per cellula e le letture mitocondriali per cellula sono mostrate nei grafici a violino (Figura 3A-C). In particolare, è stata rilevata una mediana di ~2500 trascritti per cellula in ciascuna cellula dell'arteria carotide. Dopo aver rimosso le cellule di bassa qualità, sono state rilevate 14.580 cellule che sono state utilizzate per l'analisi dell'RNA-seq a singola cellula a valle. Utilizzando 2000 geni variabili con profili simili, il clustering non supervisionato basato su Seurat ha mostrato quattro tipi di cellule principali, tra cui VSMC (74,0%), fibroblasti (16,5%), EC (6,5%) e Mφ/DC (3,0%), nelle arterie carotidi di topo normali dopo la digestione (Figura 3D-F).

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Figura 1: Diagramma schematico della digestione dell'arteria carotide di topo. Dopo che l'arteria carotide del topo è stata isolata e tagliata, sono stati aggiunti 500 μL di reagente di dissociazione A per dissociare l'arteria carotide del topo. Quando la sospensione cellulare è stata filtrata e centrifugata, sono stati aggiunti 200 μL di reagente di dissociazione B per un'ulteriore dissociazione al fine di ottenere una sospensione a singola cellula. Fare clic qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.

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Figura 2: Preparazione di una sospensione a cellula singola dall'arteria carotide di topo. (A) La morfologia cellulare e la vitalità cellulare delle cellule dell'arteria carotide dopo 1 ora di digestione con il reagente di dissociazione A sono mostrate nella vista in campo chiaro e nella colorazione AOPI. Le cellule nucleate colorate con fluorescenza verde sono cellule viventi, mentre quelle colorate con fluorescenza rossa sono cellule morte. Barra della scala = 100 μm. (B) La morfologia cellulare e la vitalità cellulare delle cellule dell'arteria carotide dopo la digestione cellulare in due fasi sono mostrate nella vista in campo chiaro e nella colorazione AOPI. Le cellule nucleate colorate con fluorescenza verde sono cellule viventi, mentre quelle colorate con fluorescenza rossa sono cellule morte. Barra della scala = 100 μm. (C) La vitalità cellulare, il numero totale di cellule, il numero di cellule vitali e il diametro medio delle cellule sono stati misurati dopo la digestione cellulare in due fasi. Fare clic qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.

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Figura 3: Metriche standard di controllo della qualità (QC) per scRNA-seq e il paesaggio cellulare dell'arteria carotide . (A) Grafici a violino che mostrano la distribuzione dei geni per cellula (nFeature RNA), (B) UMI per cellula (nCount_RNA) e (C) letture mitocondriali per cellula (percentuale mt) per i dati scRNA-seq. (D) Grafico di approssimazione e proiezione uniforme della varietà (UMAP) che mostra i quattro tipi di cellule identificati dell'arteria carotide. (E) Grafico a punti che mostra i marcatori che definiscono ciascun tipo di cluster di cellule nel pannello D. La dimensione di ogni cerchio denota la proporzione di celle all'interno del gruppo che esprime ogni trascrizione. I punti blu indicano geni altamente espressi e i punti grigi indicano geni con bassa espressione. (F) Grafico a barre impilate che mostra l'abbondanza relativa dei quattro tipi di cellule rilevate da scRNA-seq di topi wild-type (WT). Fare clic qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.

Discussione

Qui forniamo un protocollo dettagliato per la preparazione di una sospensione unicellulare di alta qualità dall'arteria carotide di topi wild-type, in cui è stato costruito un metodo di digestione in due fasi che integra il processo di digestione della collagenasi/DNasi e della tripsina. Dopo il controllo di qualità della sospensione a singola cellula, abbiamo scoperto che soddisfaceva i requisiti per il sequenziamento a singola cellula, con una vitalità delle cellule superiore all'85% e un'elevata concentrazione cellulare. Inoltre, una varietà di tipi di cellule nell'arteria carotide, tra cui VSMC, fibroblasti, EC e Mφ/DC, sono stati rilevati con successo dopo l'elaborazione dei dati di una singola cellula.

I metodi attuali per la preparazione di sospensioni carotidee a singola cellula sono ancora scarsi. Depuydt et al. hanno ottenuto una sospensione unicellulare da placche carotidi umane combinando collagenasi, DNasi, frazione V di albumina umana e flavopiridolo a 37 °C per 30 minuti15. Dopo l'ordinamento cellulare attivato dalla fluorescenza, hanno identificato 14 popolazioni cellulari distinte, tra cui cellule endoteliali, cellule muscolari lisce, mastociti, cellule B, cellule mieloidi e cellule T15. Inoltre, i ricercatori hanno digerito le arterie carotidi comuni di ratto utilizzando lo 0,25% di tripsina-EDTA e lo 0,1% di collagenasi a 37 °C e hanno eseguito con successo il sequenziamento dell'RNA a singola cellula16. Cinque tipi di cellule, tra cui VSMC, fibroblasti, EC, cellule di transizione e macrofagi, sono stati identificati sia nelle arterie carotidi normali che in quelle sperimentali16. Inoltre, è stato stabilito anche un protocollo per l'ottenimento di preparati a singola cellula arricchiti con EC dell'arteria carotide17. Dopo aver completato la digestione enzimatica luminale, il lavaggio dell'arteria carotide otterrà una quantità sufficiente di pellet unicellulari per scRNAseq e scATACseq17. Per controllare in modo flessibile il tempo di digestione, abbiamo sviluppato un metodo di digestione in due fasi per le arterie carotidi di topo, separando le fasi della dissociazione tissutale e della preparazione della sospensione a cellula singola. Il processo inizia con 125 CDU/mL di collagenasi II e 60 U/mL DNasi I per 1 ora, seguita da tripsina senza EDTA per 5 minuti. Significativamente, possiamo modificare in modo appropriato qualsiasi fase del metodo per la digestione di altri tessuti dei vasi sanguigni in base alle caratteristiche dei vasi sanguigni.

Il metodo descritto presenta alcune limitazioni. In primo luogo, non sappiamo se questo metodo possa essere utilizzato per la coltura cellulare primaria in vitro. Poiché la parete dell'arteria carotide è più sottile e ha meno cellule, come coltivare ed espandere in vitro è difficile. In secondo luogo, a differenza di altri metodi di digestione, questo protocollo richiede un pipettaggio delicato per dissociare le cellule durante la digestione. Un bagno d'acqua agitato può anche portare a una sospensione unicellulare di buona qualità. In terzo luogo, poiché il nostro metodo è applicabile alle arterie carotidi normali, resta da studiare se sia adatto alla digestione della placca carotidea.

In conclusione, abbiamo progettato un metodo di digestione in due fasi per ottenere una sospensione unicellulare di alta qualità dall'arteria carotide di topi wild-type. Questo protocollo può essere utilizzato per preparare sospensioni a singola cellula per altri vasi con piccole modifiche, il che lo rende molto utile nella ricerca cardiovascolare.

Dichiarazioni

Gli autori non hanno conflitti di interesse da rivelare.

Ringraziamenti

Questo lavoro è stato sostenuto da sovvenzioni della Natural Science Foundation of China (82070450 a C.T. e 82170466 a L.Z.) e dalla borsa di studio della China Postdoctoral Science Foundation (7121102223 a F.L.).

Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Tripsina senza EDTA allo 0,25%BeyotimeC0205Diluire 1 mL di tripsina priva di EDTA allo 0,25% in 1 mL di 1x PBS.
Soluzione salina di NaCl allo 0,9%BeyotimeST341Diluire la soluzione di eparina sodica in una concentrazione finale di 10 mg/mL
1 mL siringhe  SKJYLEANsk-r009Per eseguire la perfusione cardiaca
Provette da centrifuga da 1,5 mLKIRGENKG2211WPer centrifugare il pezzo di tessuto e la sospensione cellulare
Siringhe da 20 mLSKJYLEANsk-r013Per eseguire la perfusione cardiaca
40 &; filtro cellulare mJETBIOFILcss010040Per filtrare frammenti di tessuto non digeriti
Kit AO/PIHengrui BiologicalRE010212Per identificare se la cellula è viva o morta
Contatore di cellule automatizzatoCountstar MiraFLPer analizzare la morfologia cellulare e la vitalità cellulare delle cellule vascolari carotidei digerite
Software Cell Ranger10× Genomica3.0.2Per elaborare l'output di RNA-seq a singola cellula di cromo ed eseguire il clustering e l'analisi dell'espressione genica
Kit di reagenti a singola cellula di cromo 3 v310× Genomica1000075Preparare librerie di RNA-seq a cellula singola di sospensione a cellula singola
Collagenasi IISigma-AldrichC6885Diluire con HBSS a una concentrazione finale di 125 CDU/mL
Desossiribonucleasi IWorthingtonLS002140Diluire con HBSS a una concentrazione finale di 60 U/mL
Siero bovino fetale HyCloneSH30088.03Terminazione della reazione di digestione
Soluzione salina bilanciata di Hank Gibco14175095Conservare a temperatura ambiente
Eparina sale sodicoSolarbio Life ScienceH8060Diluire con 0,9% di NaCl ad una concentrazione finale di 10 mg/mL
MicrocentrifugaThermo Fisher Scientific75002560Applicato per la centrifuga dei tessuti e dei pellet cellulari
NovaSeq 6000 IlluminaN/ASequencer
Soluzione salina tamponata con fosfatoSolarbio Life ScienceP1000Utilizzato per la perfusione cardiaca e la risospensione delle cellule
Pacchetto Seurat - RSatija Lab3.1.2Per eseguire la riduzione della dimensionalità, la visualizzazione e l'analisi dei dati di sequenziamento dello scRNA
Piastre per colture cellulari a sei pozzettiNEST703002Posizionare il tessuto vascolare
Bagno d'acquaJinghongDK-S22Mantenere la temperatura di digestione a 37 gradi E

Riferimenti

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