Estrazione del DNA e confronto tra campioni di mosca necrofila vecchi e freschi

Sommario

Questo articolo descrive un protocollo per l'estrazione del DNA di mosche necrofile fresche e vecchie utilizzando un kit di estrazione del DNA comune modificato.

Abstract

Un totale di cinque campioni di Chrysomya megacephala - tre campioni freschi, un campione conservato in alcol per 2 anni e un campione conservato in un deposito sigillato a secco per 2 anni protetto solo dalla luce - sono stati selezionati per indagare se un kit di estrazione del DNA del sangue potesse estrarre il DNA dai moscerini necrofili e per determinare se l'alcol potesse prolungare la conservazione del DNA dei moscerini necrofili. In primo luogo, il kit di estrazione del DNA del sangue è stato utilizzato per estrarre il DNA dai tessuti del torace. Quindi, la purezza e la concentrazione del DNA sono state esaminate utilizzando un lettore di micropiastre e un fluorimetro. Infine, l'amplificazione PCR e l'elettroforesi del DNA estratto sono state eseguite con primer necrofili specifici per la mosca situati nella sequenza genica mitocondriale CO I. I risultati hanno mostrato che la purezza del DNA di tutti i campioni era superiore a 2,0. È stato osservato che la concentrazione di DNA era del seguente ordine: campioni freschi > vecchi campioni conservati in alcool > vecchi campioni non trattati. Tutti i campioni avevano bande elettroforetiche specifiche dopo l'amplificazione della PCR. In conclusione, un kit per l'estrazione del DNA del sangue può essere utilizzato per estrarre con successo il DNA dalle mosche necrofile e la concentrazione di DNA dei campioni di mosca freschi è maggiore di quella dei vecchi campioni di mosca. Le mosche possono essere conservate a lungo nell'alcool.

Introduzione

La deduzione dell'ora della morte è sempre stata una delle questioni chiave e difficili da risolvere nella pratica giudiziaria. Nella pratica delle scienze forensi, per un caso penale, determinare l'intervallo post-mortem gioca un ruolo cruciale nel dedurre l'ora del crimine, bloccare il sospetto e restringere l'ambito dell'indagine. I metodi tradizionali per dedurre l'ora della morte si basano principalmente su fenomeni post-mortem precoci, che generalmente possono essere utilizzati solo per dedurre l'ora della morte entro 24 ore. Tuttavia, il lungo periodo della morte non può essere determinato da fenomeni post mortem. È ora generalmente riconosciuto nella comunità delle scienze forensi che l'entomologia forense ha il potenziale per essere un metodo efficace per dedurre un tempo di morte più lungo.

Gli insetti necrofagi prendono il nome dalle loro larve che si nutrono di cadaveri. Tra questi, ogni volta che è presente un cadavere, le mosche necrofile adulte saranno le prime a raggiungere il cadavere e deporre le uova o le larve. Le larve si nutrono di tessuto cadaverico e maturano in pupe, che si involano negli adulti. Le mosche necrofile svolgono un ruolo enorme nella pratica della scienza forense a causa del loro ciclo di vita regolare e della distribuzione geografica, ad esempio deducendo l'ora della morte e determinando il luogo della morte ^1,2. Tuttavia, l'ostacolo all'uso di mosche necrofile nella pratica forense è l'identificazione delle specie. I metodi morfologici sono ancora utilizzati come metodo autorevole per l'identificazione delle specie di mosche necrofile. Tuttavia, l'identificazione morfologica delle specie richiede un alto grado di integrità degli insetti. Se le mosche si trovavano in diversi stadi di sviluppo, o a causa di cambiamenti morfologici causati da scelte ambientali, tutto ciò rende più difficile l'esame morfologico. In particolare, la morfologia delle pupe e dei gusci pupali, che si trovano più spesso sulla scena del crimine, è a malapena riconoscibile. Questo, insieme alla scarsità di esperti morfologici, rende estremamente difficile l'identificazione morfologica delle specie. Pertanto, è emersa l'applicazione di metodi di biologia molecolare per l'identificazione delle specie di mosche, che riduce la difficoltà di identificazione morfologica ed è indipendente dallo stadio di sviluppo 3,4,5,6,7.

Il primo passo nell'identificazione delle specie di mosche necrofile basata su metodi di biologia molecolare è l'estrazione efficiente del DNA, mentre attualmente non sono comunemente disponibili kit specializzati per l'estrazione del DNA degli insetti. E come utilizzare i comuni kit di sangue per l'estrazione del DNA delle mosche necrofile diventa più rilevante dal punto di vista forense. Le mosche necrofile trovate sulle scene del crimine sono spesso mutilate o hanno subito carie e degradazione del DNA. I campioni di mosca non sono immediatamente disponibili per l'estrazione del DNA dopo l'acquisizione o, se possibile, i campioni completi devono essere conservati a causa dei requisiti di conservazione delle prove. Sulla base dei requisiti di cui sopra, in questo studio, abbiamo applicato il kit di DNA del sangue basato sulla digestione della proteinasi K e selezionato tre campioni freschi di Chrysomya megacephala (Ditteri, Lepidotteri) (Figura 1), un vecchio campione di C. megacephala posto in alcol per due anni e un campione di C. megacephala posto in una conservazione protetta dalla luce per due anni, pesato ciascuno dei cinque campioni, eletto il tessuto toracico dell'insetto per l'estrazione del DNA. Confrontando la qualità e la purezza del DNA estratto dai campioni vecchi e nuovi, l'amplificazione PCR e l'elettroforesi del DNA estratto sono state eseguite con primer specifici per mosche necrofile situati nella sequenza genica mitocondriale del CO .

Protocollo

NOTA: In questo protocollo sono stati utilizzati un totale di cinque campioni di C. megacephala : tre campioni freschi (Fresh 1, Fresh 2 e Fresh 3), un campione conservato in alcool per 2 anni (Old 1) e un campione conservato in una conservazione sigillata a secco per 2 anni al riparo dalla luce (Old 2). I campioni devono essere etichettati secondo i requisiti sperimentali.

1. Conservazione e preparazioni generali dei campioni

1. Selezione e preparazione dei campioni
   NOTA: Assicurarsi di lavorare nella cappa aspirante quando si applica l'acetato di etile per eseguire mosche necrofaghe. Rimuovere il liquido dalla superficie della mosca prima di pesare.
   1. Campioni freschi: Mettere tre campioni di mosche raccolti in fiale di gas dopo averle uccise con acetato di etile. Pesare e denominare i campioni come Fresh 1, Fresh 2 e Fresh 3 e utilizzarli immediatamente negli esperimenti.
      NOTA: I campioni di mosca fresca in questo protocollo avevano masse di 56,8 mg, 49,3 mg e 52,1 mg.
   2. Vecchio campione 1: Prelevare campioni di mosca uccisi dall'acetato di etile e conservati in provette da centrifuga riempite di alcol per 2 anni in contenimento ermetico, al riparo dalla luce a temperatura ambiente. Pesare il campione dopo aver adsorbito il liquido superficiale con carta da filtro; chiamalo Vecchio 1.
      NOTA: La massa di Old 1 era di 42,3 mg in questo protocollo.
   3. Vecchio campione 2: Estrarre il campione di mosca ucciso dall'acetato di etile e conservato in una provetta da centrifuga per 2 anni in contenimento ermetico, al riparo dalla luce a temperatura ambiente. Pesa e chiamalo Vecchio 2.
2. Preparazione prima dell'estrazione
   1. Aggiungere una piccola quantità di azoto liquido per raffreddare un contenitore di acciaio inossidabile; Attendere che tutto l'azoto liquido sia evaporato.
   2. Metti un campione di mosca nel contenitore; Versare lentamente l'azoto liquido per evitare che l'azoto liquido schizzi e colpisca il campione di insetto.
   3. Congelare i campioni in azoto liquido. Rimuovere i campioni dopo che l'azoto liquido è evaporato.
   4. Separare il torace singolarmente, metterlo in una provetta da centrifuga da 2 ml e tagliarlo a fette il più piccole possibile.
      NOTA: Tagliare il campione in piccoli pezzi in modo che possa essere completamente tagliato e il DNA possa essere rilasciato in grandi quantità.
   5. Ripetere i passaggi precedenti per ogni mosca, congelare singolarmente e quindi rimuoverla in una nuova provetta da centrifuga per prevenire la contaminazione incrociata del DNA.

2. Estrazione del DNA

NOTA: Tutte le fasi di centrifugazione devono essere eseguite a temperatura ambiente (15-25 °C) in una microcentrifuga. Tutti i passaggi devono essere eseguiti nel rigoroso rispetto dei principi dell'asepsi e per evitare la contaminazione incrociata.

1. Lisi tissutale
   1. Aggiungere 180 μl di tampone per lisi tissutale a una provetta da centrifuga da 2 mL contenente un campione clippato.
   2. Aggiungere 20 μl di proteinasi K. Mescolare accuratamente agitando a 3 000 giri/min per 10 s e incubare a 56 °C fino a quando i tessuti degli insetti non sono completamente lisati.
      NOTA: Aggiungere più proteinasi K se il tessuto non è completamente digerito. La lisi è solitamente completa in 1-3 ore, inoltre può prolungare il tempo di lisi durante la notte.
2. Precipitazione del DNA
   1. Vortice a 3.000 giri/min per 15 s. Aggiungere 200 μL di tampone di lisi al campione e mescolare accuratamente agitando a 3.000 giri/min per 15 s.
   2. Aggiungere 200 μl di etanolo (96-100%) e mescolare nuovamente accuratamente vorticando a 3.000 giri/min per 15 s.
      NOTA: Il tampone di lisi e l'etanolo possono essere preaggiunti insieme in un unico passaggio per risparmiare tempo. Un precipitato bianco può formarsi con l'aggiunta di tampone di lisi ed etanolo.
3. Inserire la miscela nella colonna di adsorbimento del DNA posta in una provetta di raccolta da 2 mL. Centrifugare a 6.000 × g per 1 min. Scartare il flusso di passaggio e la provetta di raccolta.
4. Posizionare la colonna di adsorbimento del DNA della fase precedente in una nuova provetta di raccolta da 2 mL, aggiungere 500 μl di tampone per la rimozione delle proteine e centrifugare a 6.000 × g per 1 minuto. Scartare il flusso di passaggio e la provetta di raccolta.
5. Trasferire la colonna di adsorbimento del DNA in una nuova provetta di raccolta da 2 mL, aggiungere 500 μl di tampone di desalinizzazione e centrifugare a 20.000 × g per 3 minuti per asciugare la membrana della colonna di adsorbimento del DNA. Scartare il flusso di passaggio e la provetta di raccolta.
   NOTA: Questa fase di centrifugazione garantisce la rimozione di eventuali residui di etanolo prima della successiva eluizione. In caso di riporto di etanolo, centrifugare nuovamente a 20.000 × g per 1 minuto.
6. Posizionare la colonna di adsorbimento del DNA in una provetta da microcentrifuga pulita da 2 mL, pipettare direttamente 100 μl di tampone di eluizione del DNA sulla membrana della colonna, incubare a temperatura ambiente per 1 minuto e quindi centrifugare a 6.000 × g per 1 minuto per eluire.
   NOTA: L'eluizione con 100 μL (invece di 200 μL) aumenta la concentrazione finale di DNA nell'eluato, ma diminuisce anche la resa complessiva del DNA. Per massimizzare la resa del DNA, ripetere l'eluizione una volta come descritto al punto 2.8.
7. Conservare i campioni di DNA a 4 °C (fino a 1 settimana) o -80 °C per la conservazione a lungo termine.

3. Rilevamento della concentrazione di DNA

1. Determinare i valori di OD 260 e OD 280 per confrontare la purezza del DNA e la concentrazione di acido nucleico mediante lettore di micropiastre. Ripetere tre volte su ogni campione.
2. Determinare la concentrazione del DNA estratto mediante fluorimetro utilizzando il kit complementare, con tre repliche per ogni campione.
   1. Prelevare 190 μL di soluzione di lavoro in due provette da centrifuga da 0,5 mL, prelevare 10 μL ciascuno di Standard #1 e Standard #2, aggiungerli alle soluzioni di lavoro e tenerli al riparo dalla luce per non meno di 15 minuti.
      NOTA: Lo standard #1 e lo standard #2 sono accuratamente calibrati per una certa concentrazione di DNA. Le soluzioni standard devono essere configurate accuratamente per garantire la formazione di una curva standard accurata. Lo standard #1 è un campione di DNA a doppio filamento (dsDNA) da 0,2 ng/μL; lo standard #2 è di 2.000 ng/μL. La soluzione funzionante è un colorante che si lega specificamente al dsDNA.
   2. Prelevare 2 μL di DNA in esame e mescolarlo con 198 μL di soluzione di lavoro in una provetta da centrifuga da 0,5 mL e tenerlo lontano dalla luce per non meno di 15 minuti.
      NOTA: Se la concentrazione di DNA è bassa, aggiungere 5 μL di DNA di prova con 195 μL di soluzione di lavoro.
   3. Dopo 15 minuti, accendere lo strumento e selezionare Misurazione della concentrazione di dsDNA | Lungo raggio. Innanzitutto, testare lo standard #1 e poi lo standard #2 per ottenere la curva standard.
      NOTA: La soluzione standard deve essere utilizzata lo stesso giorno successivo alla configurazione; Lasciarlo troppo a lungo comporterà un grosso errore nella curva standard.
   4. Posizionare i campioni da analizzare nei pozzetti del saggio uno per uno, regolare il volume di picco del DNA a 2 μl, ripetere la misurazione tre volte, prendere il valore medio e registrare.

4. PCR e rilevamento elettroforetico

NOTA: La sequenza del gene CO mitocondriale con una lunghezza di 278 bp è stata prelevata per l'amplificazione PCR con il primer diretto C1-J-2495: CAGCTACTTTATGAGCTTTAGG e il primer inverso C1-N-2800: CATTTCAAGCTGTGTAAGCATC⁸, e quindi è stata eseguita l'elettroforesi su gel di agarosio al 2% per verificare l'effetto di amplificazione e la lunghezza dei prodotti di amplificazione.

1. Impostare 20 μL del sistema di amplificazione PCR aggiungendo 10 μL di miscela 2x Taq, 1 μL di ciascun primer, 5 μL di ddH₂O e 3 μL di DNA stampo; Mescolare bene per 10 s in una centrifuga.
2. Utilizzare i seguenti parametri del ciclo PCR: predenaturazione 95 °C per 10 min; denaturazione 95 °C per 30 s, ricottura 48 °C per 30 s, prolunga 72 °C per 45 s per un totale di 40 cicli; e prolungamento finale 72 °C per 10 min.
3. Sottoporre i prodotti dopo la PCR all'elettroforesi su gel di agarosio al 2% e, dopo l'elettroforesi, posizionarli su un sistema di imaging su gel per l'analisi fotografica.

Risultati

Abbiamo utilizzato un lettore di micropiastre per misurare i valori di OD260 e OD280 della soluzione di DNA estratta e quindi abbiamo ottenuto i valori OD260/OD280 per valutare la purezza del DNA. L'OD260/OD280 di tutti i campioni freschi e del vecchio campione 1 era maggiore di 2. L'OD260/OD280 del vecchio campione 2 aveva un valore massimo di 2,187 anche se la media era 1,753 e le sue tre misurazioni fluttuavano notevolmente a causa dei piccoli valori (≤0,01) sia del suo OD280 che dell'OD280 (Tabella 1). Sulla base del valore di OD260 ottenuto, abbiamo stimato la concentrazione di DNA. La concentrazione di DNA dei tre era dell'ordine: i campioni freschi > vecchio campione 1 > vecchio campione 2, misurati utilizzando il lettore di micropiastre, ma la differenza tra i campioni freschi e i vecchi campioni era piccola, solo ~ 10-20 ng / μL (Tabella 1), mentre la concentrazione di DNA dei tre campioni freschi misurata dal fluorimetro Qubit era maggiore di quella misurata dal lettore di micropiastre di 125-130 ng / μL, con una differenza di 15 ng/μL nel vecchio campione 1 e di soli 1,3 ng/μL nel vecchio campione 2. La concentrazione di DNA dei campioni freschi > vecchio campione 1 > vecchio campione 2 (Tabella 2).

Il DNA estratto con il metodo di estrazione attualmente utilizzato contiene tutti i componenti del DNA provenienti da diverse fonti nel campione. Ciò significa che la soluzione di DNA non era solo una soluzione di DNA genomico di mosca. I primer per amplificare in modo specifico i frammenti del gene CO mitocondriale della mosca sono stati selezionati consultando la letteratura e verificati da NCBI-Blast Primer. I risultati hanno mostrato che il primer diretto C1-J-2495 e il primer inverso C1-N-2800 del gene CO mitocondriale erano primer specifici per la mosca con polimorfismo di sequenza e coprivano molte specie di mosche. I risultati dell'amplificazione non hanno mostrato geni umani. Si trattava di una coppia di biomarcatori di DNA affidabili per l'identificazione di mosche necrofile e sono stati selezionati per la verifica dei risultati di questo esperimento.

Tutti i diversi campioni hanno mostrato evidenti bande elettroforetiche con lunghezze che vanno da 250 bp a 400 bp. Le bande erano più luminose nei campioni freschi rispetto ai vecchi campioni, e i vecchi campioni posizionati con alcol (Figura 2, Old1) erano più luminosi dei vecchi campioni non trattati (Figura 2, Old2), ma anche i vecchi campioni avevano due bande in posizioni diverse. Il controllo in bianco non aveva bande (Figura 2).

Figura 1: Immagini di Chrysomya megacephala da diverse angolazioni. (A) Maschio; (B) femmina. Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.

Figura 2: Elettroferogramma dei prodotti di amplificazione PCR. Le prime tre bande da sinistra sono prodotti di amplificazione PCR del DNA da campioni di mosca fresca. La quarta banda elettroforetica è il prodotto PCR del DNA del vecchio campione di mosca conservato in alcol. La quinta banda è il prodotto PCR del DNA del vecchio campione di mosca senza alcuna conservazione speciale. La sesta banda è un controllo vuoto; è pulito, dimostrando che non si è verificata alcuna contaminazione durante l'amplificazione PCR. All'estrema destra c'è la scala del DNA, dove abbiamo etichettato le posizioni del DNA con lunghezze di 250 bp e 400 bp. Le bande elettroforetiche di tutti i prodotti PCR dei campioni erano leggermente superiori a 250 bp e inferiori a 400 bp delle bande ladder. Questa posizione corrisponde alla lunghezza del gene bersaglio di 278 bp. È più evidente ad occhio nudo che le bande di DNA che rappresentano i campioni freschi sono più luminose di quelle dei vecchi campioni. I vecchi campioni comprendono altre bande di DNA che sono presenti in geni meno intensi, non bersaglio, di diverse lunghezze. Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.

Campione	Fresco1	Fresco2	Fresco3	Vecchio1	Vecchio2
OD260/OD280	2,354±0,036	2,245±0,027	2.060±0.038	2,143±0,012	1,753±0,421
DNA (ng/μL)	119,91±1,686	116.084±4.965	95.239±3.401	86.845±6.14	10,151±0,168

Tabella 1: Misurazione della purezza e della concentrazione del DNA con un lettore di micropiastre.

Campione	Fresco1	Fresco2	Fresco3	Vecchio1	Vecchio2
DNA (ng/μL)	243.333±1.528	237.667±2.082	226.000±2.000	101.000±0.000	11,433±0,058

Tabella 2: Misurazione della concentrazione di DNA con un fluorimetro.

Discussione

L'estrazione del DNA è l'anello più critico nell'identificazione molecolare delle mosche necrofile e il suo metodo di estrazione e la qualità del DNA estratto influenzano direttamente la successiva rilevazione. In questo esperimento, abbiamo estratto con successo il DNA dalle mosche necrofile utilizzando un comune kit di sangue, senza la necessità di acquistare uno speciale kit di estrazione del DNA degli insetti, che rende l'estrazione del DNA degli insetti più facile da realizzare.

La superficie delle mosche è ricca di chitina, soprattutto negli stadi larvale e pupale dove la chitina epidermica può raggiungere il 60-70%, rendendo difficile l'estrazione del DNA dalle mosche necrofile⁹. Durante il processo di estrazione abbiamo scoperto che se il campione era umido, anche se lo avevamo adeguatamente tosato, il campione rimaneva gelatinoso quando la proteinasi K veniva applicata per la digestione. Ciò impediva al liquido aggiunto di ripassare attraverso la colonna di adsorbimento. Per risolvere questo problema, abbiamo prima applicato l'azoto liquido per congelare rapidamente i campioni per rendere le mosche fragili e facili da macinare, oltre che facili da digerire. Se l'azoto liquido non è disponibile per la macinazione e l'efficienza dell'estrazione del DNA deve ancora essere migliorata, i campioni di mosca possono essere collocati in un'area ventilata per circa 48 ore. I campioni possono essere lasciati asciugare prima di essere adeguatamente tranciati e successivamente estratti dal DNA.

Considerando che la degradazione del DNA di vecchi campioni era una preoccupazione maggiore, i campioni di torace di mosca sono stati selezionati per l'estrazione del DNA in questo esperimento a causa dell'alto contenuto di DNA del torace. Tuttavia, l'uso del torace è troppo dannoso per l'integrità morfologica della mosca per la completa conservazione delle prove successive e la necessità di identificazione morfologica. I campioni sono difficili da estrarre quando il torace era in decomposizione. Se i campioni sono freschi, può essere preferibile l'estrazione del DNA del piede e dell'ala. Il piede e l'ala sono distribuiti simmetricamente e bilateralmente e le caratteristiche morfologiche più complete possono essere mantenute dopo l'estrazione del tessuto da un lato. Tuttavia, la concentrazione di DNA estratto dall'ala e dal piede è relativamente bassa, il che è rischioso per gli studi successivi. Inoltre, i campioni erano piccoli e si perdevano facilmente¹⁰.

Quando si utilizza il kit di estrazione del DNA per l'estrazione del DNA, i valori OD260/OD280 misurati dal lettore di micropiastre erano superiori a 2, ad eccezione del vecchio campione 2. In primo luogo, si può determinare che la proteina è stata rimossa più accuratamente, ma ci può essere contaminazione da RNA, rotture del DNA a doppio filamento dovute a centrifugazioni ripetute o degradazione del DNA nei vecchi campioni¹¹. In secondo luogo, può anche indicare che l'alcol prolunga la conservazione dell'RNA.

La concentrazione di DNA viene calcolata dal valore OD260 del lettore di micropiastre, mentre il fluorimetro Qubit viene utilizzato per stabilire prima una curva standard e quindi misurare il valore di assorbanza per calcolare la concentrazione di DNA. Entrambi i metodi possono realizzare la misurazione della concentrazione di tracce di DNA, ma ognuno ha i suoi vantaggi e svantaggi: il lettore di micropiastre applica OD260 per calcolare la concentrazione di DNA, ma il suo metodo di calcolo è anche una stima. Se il campione viene miscelato con un gran numero di nucleotidi o proteine e altre sostanze in grado di assorbire la luce ultravioletta, l'errore fotometrico sarà maggiore, quindi dovremmo cercare di rimuoverli in anticipo.

I lettori di micropiastre e gli spettrofotometri UV utilizzano l'assorbanza UV per il rilevamento, che non è in grado di distinguere tra DNA, RNA, acidi nucleici degradati, nucleotidi liberi e altre impurità, e l'assorbanza è anche fortemente influenzata dalla contaminazione di altre sostanze, rendendo le sue letture relativamente inaffidabili. Durante l'aggiunta di campioni, che di solito vengono misurati in gocce, i campioni vengono addizionati direttamente senza diluizione o elaborazione, consentendo la misurazione simultanea di più campioni e il calcolo diretto della purezza del DNA dalle misurazioni OD260/OD280. Il fluorimetro Qubit, d'altra parte, è progettato per misurare solo la concentrazione di DNA a doppio filamento applicando due soluzioni standard di concentrazione nota per stabilire una curva standard e applicando le caratteristiche dei coloranti fluorescenti che si legano specificamente al DNA a doppio filamento. Tuttavia, ogni campione deve essere pretrattato singolarmente e quindi misurato individualmente, il che è ingombrante per le applicazioni di campioni in batch e la purezza del DNA estratto non può essere misurata. Nell'applicazione specifica dei due possono essere selezionati in base alle proprie esigenze per il test di qualità del DNA 12,13,14.

La concentrazione di DNA dei campioni freschi era maggiore di quella dei vecchi campioni posti in alcol e maggiore di quella dei vecchi campioni non trattati, indipendentemente dal fatto che la concentrazione di DNA fosse misurata da un lettore di micropiastre o da un fluorimetro Qubit. Per la conservazione a lungo termine, i campioni possono essere immersi in alcol per prevenire la crescita di batteri e funghi ^15,16.

I diversi metodi di misurazione hanno avuto un impatto minore sulle misurazioni del DNA di vecchi campioni senza alcun trattamento, probabilmente perché i vecchi campioni erano più degradati, in particolare le proteine e l'RNA possono essere degradati più velocemente del DNA. Al contrario, i campioni freschi avevano più proteine e RNA e quindi avevano un impatto maggiore sui risultati. Se vengono confrontate solo le concentrazioni di DNA a doppio filamento, dovremmo utilizzare i risultati del fluorimetro Qubit e i risultati dei nostri esperimenti hanno anche creato un significativo gradiente di concentrazione di DNA nei campioni vecchi e nuovi.

Il contenuto di DNA di campioni freschi e vecchi dopo l'estrazione del DNA può essere utilizzato per successive analisi di biologia molecolare. Come in questo esperimento, i primer selezionati per il gene CO mitocondriale erano solo 278 bp, e tutti potevano essere amplificati con successo dal DNA. Il gene CO mitocondriale è, a sua volta, un locus riconosciuto nei moscerini per il suo potenziale di codifica a barre del DNA, consentendo così l'identificazione di specie di mosche necrofile mediante successive analisi di sequenziamento¹⁷. La biologia molecolare di campioni conservati più a lungo può essere ottenuta con successo selezionando primer per altre sequenze di DNA più brevi. Da notare che le bande elettroforetiche dei vecchi campioni avevano due bande con posizioni diverse e sequenze più corte, probabilmente a causa di un'amplificazione non specifica dei primer causata dalla degradazione del DNA accoppiata alla bassa temperatura di ricottura.

Tuttavia, in questo esperimento, un numero inferiore di campioni è stato conservato per un lungo periodo per soddisfare la necessità di esperimenti ripetitivi, mentre i risultati hanno richiesto solo campioni rappresentativi. Pertanto, non abbiamo condotto un test di ripetibilità, che può essere esplorativo per la conservazione di campioni vecchi e nuovi, ma non influisce sulla riuscita estrazione di campioni di mosche necrofile.

In sintesi, l'uso di un kit per l'estrazione del DNA del sangue può anche aiutare nell'estrazione del DNA del moscerino necrofilo. Sia i campioni vecchi che quelli nuovi possono essere estratti con successo e tutto il DNA estratto può essere utilizzato per le analisi successive. L'alcol è anche favorevole per la conservazione a lungo termine dei campioni di DNA di mosca.

Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo

Nome	Azienda	Numero di catalogo	Commenti
Tampone AE	Qiagen	172026832	tampone per eluizione del DNA
Tampone AL	Qiagen	tampone per	lisi
Tampone ATL	Qiagen	172028162	tampone per lisi tissutale
Tampone AW1	Qiagen	172028760	tampone per la rimozione delle proteine
Tampone AW2	Qiagen		57203108 tampone
per desalinizzazioneC1-J-2495	Taihe Biotechnology	TW21109216	primer forword
C1-N-2800	Taihe Biotechnology	TW21109217	primer inverso
D2000 Scala del DNA	Real-Times (Pechino)	RTM415	Misurare la posizione delle bande elettroforetiche
DNeasy Mini colonna di spin	Qiagen	166050343	Colonna di adsorbimento del DNA
Incubatore a bagno secco	Miulab	DKT200-2D	utilizzato per il riscaldamento
MIX-30S Mini Mixer	Miulab	MUC881206	azione oscillatoria
Proteinasi K	Qiagen	172026218	Inattivazione di nucleasi intracellulari e altre proteine
Qubit 3.0 Fluorimetro	Thermo Fisher Scientific	2321611188
Speed Micro-Centrifuga	Scilogex	9013001121	centrifuga
Standard#1	Thermo Fisher Scientific 2342797
Standard#2	Thermo Fisher Scientific	2342797
Tanon 3500R Gel Imager	Tanon	16T5553R-455	gel imaging
Taq Mix Pro	Monad	00007808-140534	PCR Mix
Taq Mix Pro	Monad	00007808-140534	PCR Mix
Termociclatore	Zhuhai Hema	VRB020A	normale
soluzione di lavoro	Thermo Fisher Scientific	2342797