I recettori accoppiati a proteine G (GPCR) costituiscono la più grande famiglia di recettori transmembrana, svolgendo un ruolo cruciale nella segnalazione cellulare trasducendo gli stimoli extracellulari in risposte intracellulari. L'attivazione dei GPCR porta a cambiamenti conformazionali che consentono interazioni con le proteine G eterotrimeriche. Dopo l'attivazione, la subunità Gα subisce uno scambio GDP-GTP, dissociandosi dal dimero Gβγ e innescando cascate di segnalazione a valle. Per studiare l'attivazione della proteina G mediata da GPCR, i biosensori basati sul trasferimento di energia per risonanza di bioluminescenza (BRET) sono un approccio altamente sensibile e non invasivo. I sensori di attività tricistronica basati su proteine G (biosensori G-CASE), sviluppati da Schihada et al., rilevano la dissociazione eterotrimera come proxy per l'attivazione e consentono il monitoraggio in tempo reale dell'attività di GPCR utilizzando una singola trasfezione plasmidica, superando i limiti degli approcci di co-trasfezione. I saggi BRET offrono diversi vantaggi rispetto alle tecniche basate sulla fluorescenza, come la riduzione del rumore di fondo, la riduzione del fotosbiancamento e una migliore sensibilità. In questo protocollo, i biosensori G-CASE basati su BRET sono stati utilizzati in cellule vive e piastre a 96 pozzetti. In particolare, valutiamo l'attività del recettore β2-adrenergico (β2-AR) e del recettore dei cannabinoidi di tipo 1 (CB1R) in termini di attivazione della proteina G. Utilizzando cellule HEK 293T wild-type trasfettate transitoriamente con β2-AR e cellule HEK293T che esprimono stabilmente CB1R, la robustezza dei biosensori Gs e Gi3 G-CASE è confermata. Questo protocollo supporta l'utilità di questo approccio per gli studi farmacologici e lo screening GPCR ad alto rendimento per comprendere meglio la capacità dei ligandi di attivare percorsi specifici, ad esempio, tramite una segnalazione distorta e quindi facilitare la scoperta di nuovi composti terapeutici.