Un metodo chirurgico per l'intervento della struttura sottovalvolare tramite approccio transaortico in maiali Bama normali

Summary

Questo studio presenta un metodo chirurgico per l'intervento nella struttura della valvola aortica subvalvolare utilizzando il taglio del tessuto mirato tramite un approccio transaortico in maiali Bama normali.

Abstract

Le anomalie della struttura sottovalvolare che portano a alterazioni del tratto di uscita del ventricolo sinistro (LVOT) e a ipertrofia miocardica sono caratteristiche anatomiche tipiche delle malattie cardiache strutturali come la cardiomiopatia ipertrofica (HCM). Questo studio stabilisce un metodo chirurgico per l'intervento nella struttura subvalvolare aortica tramite un approccio transaortico nei maiali Bama normali. Gli animali sono stati ottenuti da un fornitore certificato di maiali sperimentali a Pechino (Licenza n. SCXK (Jing) 2018-0008). Questo metodo è stato convalidato in tre femmine sane di maiali miniatura Bama di circa 33-35 settimane, con un peso di 30-35 kg al momento dell'intervento. La procedura prevede una sternotomia mediana e un'incisione anteriore nella parete aortica, eseguita sotto supporto di bypass cardiopolmonare (CPB), arresto cardiaco ipotermico e visualizzazione diretta delle regioni LVOT e sottovalvolare. La trazione dei tessuti mirata, la localizzazione e il taglio vengono utilizzati per rimodellare la struttura subvalvolare.

Il processo chirurgico completo include l'induzione dell'anestesia, la posa di un catetere venoso centrale e di un catetere urinario, la disinfezione e la copertura del sito chirurgico, la sternotomia mediana, l'incisione pericardica e la mobilitazione cardiaca. La CPB si stabilisce tramite drenaggio atriale sinistro e perfusione coronarica retrograda. Dopo un'incisione anteriore nella parete aortica, il ventricolo sinistro viene utilizzato attraverso la valvola aortica e l'intervento nel tessuto sottovalbolare viene eseguito in caso di arresto cardiaco. La procedura si conclude con la chiusura dell'aorta, la ripresa del battito cardiaco, la ritirata della CPB e la chiusura toracica. Durante tutta la procedura è stata mantenuta la stabilità emodinamica e l'animale è rimasto in buone condizioni senza mortalità intraoperatoria. Dopo l'intervento, le superfici tagliate erano lisce e le strutture circostanti rimasero intatte.

Questo metodo dimostra un'elevata riproducibilità e controllabilità procedurale, fornendo un modello di intervento chirurgico stabile per studiare l'intervento nella struttura sottovalvulare. Offre inoltre una piattaforma tecnica per condurre analisi istologiche, convalida chirurgica e valutazione della strategia di intervento.

Introduction

Le anomalie nelle strutture sottovalvolari del ventricolo sinistro svolgono un ruolo cruciale in varie malattie cardiovascolari, in particolare nei pazienti con cardiomiopatia ipertrofica (HCM), dove anomalie sottovalvolari contribuiscono all'ostruzione del tratto di uscita ventricolare sinistra (LVOT) e all'ipertrofia del^{setto interventricolare.} Questi cambiamenti strutturali non solo compromettono l'otturazione e l'espulsione ventricolare, ma possono anche portare a gravi complicazioni come aritmie ventricolari, morte cardiaca improvvisa e insufficienza cardiaca^{cronica 2}. Clinicamente, la resezione chirurgica transaortica dei tessuti ventricolari sinistri è spesso impiegata in tali pazienti per alleviare l'ostruzione della LVOT e migliorare la^{prognosi 3}. Tuttavia, solo pochi studi hanno indagato sistematicamente i cambiamenti fisiologici e i processi di rimodellamento ventricolare successivi a questo intervento chirurgico, limitandone l'applicazione nella ricerca di base e nello sviluppo terapeutico traslazionale.

Vari modelli animali sono stati ampiamente impiegati per studiare i cambiamenti strutturali subvalbolari e le strategie di intervento. Questi modelli hanno contribuito in modo significativo alla comprensione dei meccanismi molecolari e a livello tissutale; tuttavia, mostrano limitazioni notevoli nella simulazione di procedure chirurgiche cardiache cliniche, in particolare nel raggiungere un'esposizione precisa e un taglio miro del ventricolo sinistro. Problemi come distorsione anatomica, insufficiente precisione chirurgica e campionamento tissutale limitato rimangono 4,5,6,7. Queste carenze ostacolano l'applicazione più ampia di tali modelli nella ricerca sui meccanismi di intervento chirurgico, sull'intervento strutturale post-operatorio e sulla valutazione dei biomateriali.

Negli ultimi anni, i modelli animali che simulano l'intervento della struttura subvalvolare del ventricolo sinistro tramite un approccio transaortico sono rimasti estremamente limitati. Gli studi esistenti sono principalmente limitati a modifiche delle tecniche chirurgiche attuali, tentando di intervenire nelle strutture localizzate del tessuto ventricolare tramite vie minimamente invasive o metodi basati sull'energia. Tuttavia, questi approcci differiscono significativamente dalle pratiche chirurgiche cliniche in termini di percorsi chirurgici, condizioni cardiache intraoperatorie e strategie di intervento tissutale, rendendo difficile riprodurre accuratamente le risposte di stress strutturale, emodinamiche, di reperfusione e meccaniche indotte dagli interventi^{chirurgici 8,9}. Pertanto, in questo studio, abbiamo stabilito un modello chirurgico riproducibile su grandi animali eseguendo una sternotomia mediana e un'incisione anteriore della parete aortica sotto supporto di bypass cardiopolmonare (CPB) in maiali Bama normali. Questo modello consente l'esposizione diretta del tratto di uscita del ventricolo sinistro e della regione sottovalvolare, seguita da un taglio controllato del tessuto per promuovere l'intervento della struttura sottovalvolare, fornendo una piattaforma clinicamente rilevante per future ricerche.

In particolare, questo modello è stato progettato per replicare la via procedurale e l'ambiente operativo della miectomia clinica del setto transaortico utilizzato nei pazienti con cardiomiopatia ostruttiva ipertrofica (HOCM). Non è inteso a ricapitolare la fisiopatologia della HOCM né a fungere da modello di malattia, ma piuttosto a riprodurre le condizioni operative in cui viene eseguito l'intervento sottovalvulare.

Questo modello funge da quadro chirurgico standardizzato per studiare interventi strutturali sottovalvolari, valutare nuovi dispositivi chirurgici cardiaci e fornire una piattaforma di addestramento riproducibile per la chirurgia cardiaca sperimentale, inclusa la formazione chirurgica nell'esposizione transaortica a LVOT e alla resezione sottovalvolare controllata, nonché studi acuti a livello tessutale e istologici dopo interventi strutturali definiti.

Protocol

Tutte le procedure animali sono state approvate dal Comitato Istituzionale per la Cura e l'Uso degli Animali (IACUC) dell'Accademia Cinese delle Scienze Mediche dell'Ospedale di Fuwai, con il numero di approvazione 0106-1-20-ZX(X)-21. Tutti gli esperimenti sono stati condotti in conformità con le linee guida ARRIVE e la Guida dei National Institutes of Health per la Cura e l'Uso degli Animali da Laboratorio. Gli animali venivano ospitati in condizioni ambientali standard (temperatura 20-26 °C, umidità 40-60%, ciclo chiaro/buio di 12 ore) con libero accesso a cibo e acqua.

1. Preparazione sperimentale degli animali

1. Ottieni maiali miniatura Bama adulti normali da un fornitore certificato di maiali sperimentali a Pechino (Licenza n. SCXK (Jing) 2018-0008).
   NOTA: Questo metodo è stato convalidato in tre femmine sane di maialino miniatura Bama di circa 33-35 settimane, con un peso di 30-35 kg al momento dell'intervento.
2. Alloggiare gli animali in un ambiente standard a barriera per almeno 7 giorni prima dell'intervento chirurgico per l'acclimatazione, a temperatura controllata (20-26 °C), umidità (40-60%) e con un ciclo di 12 ore luce e buio, con libero accesso a cibo e acqua.
3. Eseguire una valutazione sanitaria completa 24 ore su 24 ore prima dell'intervento, includendo la valutazione dello stato mentale, dell'appetito, delle caratteristiche fecali, dell'integrità della pelle, dell'andatura e delle condizioni respiratorie.
4. Trattenere cibo per 12 ore e acqua per 4 ore preoperatorie per ridurre il rischio di aspirazione durante l'anestesia.
5. Completare la misurazione del peso corporeo e la registrazione dell'identificazione prima dell'intervento, oltre a registrare i parametri vitali di base.
6. Il giorno dell'intervento, trasferire gli animali nell'area operatoria per l'installazione di accesso endovenoso e la preparazione all'induzione dell'anestesia.

2. Preparazione preoperatoria

1. Istituzione di accesso venoso auricolare
   1. Prima dell'induzione dell'anestesia, stabilire l'accesso venoso attraverso la vena auricolare marginale come segue:
      1. Applicare una pressione delicata sulla porzione prossimale della vena auricolare marginale per permettere l'otturazione venosa. Utilizzando un catetere endovenoso 22-G (22 GA × 1,00 in; 0,8 × 25 mm), inserire l'ago lungo il percorso del vaso dal distale verso la prossimale.
      2. Osservando il ritorno del sangue, ritirare lo stiletto e avanzare completamente il catetere nella vena. Rimuovi il nucleo dell'ago, collega un rubinetto a tre vie e inietta una piccola quantità di soluzione salina sterile per confermare la permeabilità.
      3. Confermare che non si verifichi protrusione sottocutanea e che l'infusione proceda senza intoppi, quindi fissare il rubinetto con nastro adesivo per stabilizzare il catetere.
2. Anestesia
   ATTENZIONE: Verifica la profondità dell'anestesia adeguata e la perdita dei riflessi prima di eseguire qualsiasi procedura invasiva per prevenire stress o dolore.
   1. Indurre l'anestesia iniettando una soluzione di propofol all'1% tramite la vena auricolare a una dose di 2-4 mg/kg. Quando l'animale perde la capacità di stare in piedi, mostra una diminuzione della coscienza e crolla, trasferiscilo immediatamente al centro del tavolo operatorio.
   2. Posiziona l'animale in posizione supina e fissa tutti e quattro gli arti ai lati del tavolo operatorio usando cinghie di contenzione. Posiziona cuscinetti morbidi sotto la schiena e il collo per prevenire lesioni da compressione.
   3. Dopo aver confermato l'incoscienza, somministrare fentanyl (3-5 μg/kg) per via endovenosa per l'analgesia, seguito da atracurio (0,2 mg/kg) per il rilassamento muscolare.
   4. Eseguire l'intubazione endotracheale esponendo la glotide con un laringoscopio. Inserire un tubo endotracheale cuffiato di dimensioni appropriate (diametro interno raccomandato 6,5-7,5 mm) nella trachea e avanzare verso il segmento toracico per evitare l'occlusione del bronco cranico destro.
   5. Collega il tubo a un ventilatore meccanico. Imposta il ventilatore su un volume mareale di 10-12 mL/kg, una frequenza respiratoria di 12-16 respiri/min,_{FiO 2} al 100% e un rapporto I:E di 1:2. Confermare la ventilazione polmonare bilaterale prima di fissare il tubo endotracheale.
   6. Mantieni l'anestesia durante l'intervento utilizzando infusione endovenosa continua di propofol (6-10 mg/kg/h). Regola il dosaggio di fentanyl in base ai segni vitali dell'animale.
   7. Monitorare continuamente l'elettrocardiogramma (ECG), la pressione sanguigna (BP), la saturazione di ossigeno (_{SpO 2}) e la temperatura corporea (Temperatura).
   8. Mantieni la temperatura corporea a 37 ± 0,5 °C per ridurre la domanda metabolica e garantire la protezione miocardica durante il bypass cardiopolmonare. Mantieni_{SpO 2}≥ 95% e mantieni la pressione sanguigna entro un intervallo fisiologico stabile.
3. Preparazione chirurgica della mano
   1. Eseguire l'antisepsi chirurgica standard della mano secondo il protocollo istituzionale. Dopo il lavaggio delle mani, asciugate le mani con asciugamani chirurgiche sterili prima di indossare i guanti sterili.
4. Cateterizzazione venosa centrale sotto guida guida
   ATTENZIONE: Mantieni una tecnica asettica rigorosa durante la cateterizzazione. Maneggiare con attenzione aghi e fili guida per evitare infortuni accidentali.
   1. Seleziona la vena giugulare esterna destra per l'accesso venoso. Disinfettare accuratamente l'area cutanea locale, poi iniettare 5 mL di lidocaina al 2% per via sottocutanea per ottenere un'anestesia locale.
   2. Collega l'ago da puntura a una siringa e inserisci l'ago con un angolo di 20-30° lungo il percorso della vena giugulare verso la direzione cranica.
   3. Avanza lentamente l'ago aspirando continuamente finché non si osserva il ritorno venoso del sangue. Inserisci delicatamente un filo guida nella lumen del vaso attraverso l'ago. Stabilizza il filo guida e ritira con attenzione l'ago. Fai avanzare un dilatatore sopra il filo guida per espandere il percorso di perforazione, poi rimuovi il dilatatore.
   4. Inserire un catetere venoso centrale sopra il filo guida nella vena. Avanzare il catetere a una profondità di circa 10-15 cm, assicurandosi che la punta del catetere sia posizionata all'interno della vena cava cranica senza entrare nell'atrio destro per evitare interferenze con l'occlusione cardiaca intraoperatoria.
   5. Rimuovi il filo guida. Confermare la permanenza di ogni lumen tramite aspirazione. Risciacquare ogni lumen con soluzione salina eparinizzata (50 IU/mL) e bloccare il catetere usando la stessa soluzione per mantenere la permeabilità.
   6. Fissa il catetere con punti sterili. Applica una medicazione sterile trasparente sul sito della puntura. Etichetta chiaramente la funzione del lumen e la profondità di inserimento del catetere.
5. Cateterismo urinario
   1. Dopo l'induzione e il posizionamento dell'anestesia, disinfettare l'area perineale usando batuffoli di cotone sterili immersi in soluzione di povidone-iodio e lasciarla asciugare naturalmente. Posizionare un drappo sterile sull'area circostante, esponendo solo l'orifizio uretrale. Utilizzare solo maialine femmine per facilitare la cateterizzazione uretrale.
   2. In condizioni sterili, apri un kit per cateteri di Foley. Indossa guanti sterili, lubrifica la punta del catetere e inseriscila delicatamente nell'uretra. Una volta osservato il flusso urinario, avanzare il catetere di ulteriori 1-2 cm. Inietta acqua distillata sterile nel palloncino del catetere per fissarlo in posizione. Applica una trazione delicata per confermare la fissazione.
   3. Collega il catetere a un sacco di drenaggio chiuso. Fissa il tubo alla coda o al lato del tavolo operatorio con del nastro adesivo per evitare tensioni o contaminazioni. Annota l'orario dell'inserimento del catetere e i dettagli procedurali. Durante l'intervento, monitorare continuamente l'emissione di urina e la pervigenza dei drenaggi.
6. Drappeggiamento e istituzione del campo chirurgico sterile
   1. Eseguire nuovamente l'antisepsi chirurgica della mano secondo gli standard clinici. Dopo l'asciugatura, riportarlo sul tavolo operatorio.
   2. Collabora con l'assistente per coprire il campo chirurgico. Per prima cosa, posiziona delle piccole tende sterili e fissale con morsetti per asciugamani. Poi posiziona tende di medie dimensioni, coprendo il corpo tranne la zona operatoria.
   3. Assicurarsi che l'area esposta si estenda dal manubrio dello sterno fino al processo xifoide, di circa 20-25 cm di lunghezza e 10-12 cm di larghezza, includendo lo sterno medio e i margini costali bilaterali.
   4. Dopo il drappeggio, eseguire nuovamente una rapida antisepsi della mano. Indossa camice chirurgiche sterili e guanti con l'assistenza dell'infermiera. Posizionare un grande drappo sterile con una fenestrazione, assicurandosi che sia esposta solo l'area dell'incisione mentre tutte le altre zone rimangano completamente coperte. Allineare la finestra con il centro dell'incisione e fissare i margini per prevenire la perdita di liquidi, completando così l'insediamento del campo chirurgico sterile.

3. Esposizione cardiaca e mobilitazione

1. Esposizione alla cavità toracica
   ATTENZIONE: Proteggi le mani e gli occhi dell'operatore durante la sternotomia. Assicurati che il retrattore venga applicato lentamente per evitare lacerazioni tissuti o fratture ossee.
   1. Eseguire un'incisione mediana lungo lo sterno, che si estende dalla tacca suprasternale fino a circa 2 cm sotto il processo xifoide, utilizzando un bisturi chirurgico per incidere la pelle e i tessuti sottocutaneo. Mantenere una lunghezza dell'incisione di circa 20 cm.
   2. Utilizzare un dispositivo elettrocauterizzato per separare i muscoli pettorali maggiori dal periosto dello sterno, esponendo completamente la superficie anteriore dello sterno.
   3. Ritrae delicatamente i tessuti laterali con l'aiuto di un assistente per mantenere un campo chirurgico chiaro.
   4. Dopo aver esposto lo sterno, inserire un coltello Lebsche sotto il processo xifoide e applicare la trazione verso l'alto.
   5. Con un piccolo martello, batti con cura e uniformemente l'estremità prossimale del coltello di Lebsche per spaccare gradualmente lo sterno lungo la linea mediana, procedendo in modo cranico fino ad aprire la cavità toracica.
   6. Mantieni una trazione continua verso l'alto durante tutto il processo per evitare deviazioni o lesioni al pericardio. Dopo aver completato la divisione sternale, posizionare un retrattore di costole Finochietto ed espandere lentamente la cavità toracica bilateralmente per allargare il campo operatorio. Evita una retrazione eccessiva per prevenire lesioni pleuriche o fratture alle costole.
2. Mobilitazione cardiaca
   1. Identificare il percorso dei nervi frenici bilaterali che corrono lungo le superfici laterali del pericardio (Figura 1A).
   2. Incisci il margine superiore del pericardio ed estendi l'incisione parallela all'asse lungo dell'animale, mantenendola vicina alla linea mediana per minimizzare il rischio di lesioni nervose (Figura 1B).
   3. Eseguire una dissezione contusiva bilateralmente per separare il pericardio dalla pleura mediastinale e dai tessuti connettivi adiacenti.
   4. Dopo aver completato la dissezione, esponi il cuore sotto visualizzazione diretta. Confermare l'identificazione chiara delle strutture anatomiche chiave, inclusi l'aorta, l'arteria polmonare, l'appendice atriale sinistra, l'apice cardiaco e il seno coronarico.
3. Istituzione del bypass cardiopolmonare (CPB)
   ATTENZIONE: Assicurati che tutte le connessioni dei circuiti CPB siano sicure e correttamente messe a terra. Maneggiare con attenzione dispositivi elettrici e di perfusione per prevenire perdite o scosse elettriche.
   1. Dopo aver raggiunto un'adeguata esposizione cardiaca, si posiziona una sutura a stringo alla base dell'appendice atriale sinistra. Effettuare una piccola incisione all'interno dell'anello della sutura e inserire una cannula di drenaggio venosa obliqua verso il basso lungo l'asse dell'appendice atriale sinistra per stabilire la via di ritorno venosa per il bypass cardiopolmonare.
   2. Avanza la cannula di circa 3-4 cm per assicurarti che la sua punta entri nella cavità atriale sinistra. Fissa la cannula all'appendice atriale usando suture di seta per evitare scivolamenti o perdite.
   3. Posiziona una sutura a cordone all'ingresso del seno coronarico. Crea una piccola incisione all'interno dell'anello della sutura e inserisci una cannula per perfusione che funga da via di ingresso per la consegna della cardioplegia e la perfusione miocardica.
   4. Avanza la cannula di perfusione di circa 1-2 cm nel seno coronarico. Fissalo con suture di seta per garantire una posizione stabile.
   5. Collega tutte le cannule alla macchina di bypass cardiopolmonare. Prepara il circuito con una miscela di 800 mL di soluzione di Ringer lattata, 1.000 mL di soluzione di gelatina succinilata e 2 mL di eparina. Disarizza accuratamente il circuito ed esegui un test di pressione per confermare la stabilità.
   6. Monitorare continuamente i parametri di perfusione e la portata durante tutta la procedura, e mantenere il tempo di coagulazione attivata (ACT) sopra i 480 s durante l'eparinizzazione sistemica.
   7. Attiva la pompa di ritorno venoso per avviare il drenaggio venoso parziale. Apri gradualmente la pompa arteriosa per mantenere la pressione di perfusione a 60-80 mmHg. Verifica che non ci siano perdite e che il flusso del circuito sia libero prima di avviare il bypass cardiopolmonare completo.
   8. Dopo aver raggiunto una CPB stabile, infondi lentamente una soluzione raffreddata per la cardioplegia ad alto contenuto di potassio tramite il seno coronarico. Osserva il progressivo indebolimento delle contrazioni cardiache fino a quando non si verifica un arresto cardiaco completo e l'elettrocardiogramma (ECG) mostra una linea piatta. Annota l'ora dell'arresto cardiaco.
   9. Assicurarsi che vengano ottenuti un arresto elettromeccanico completo e un adeguato raffreddamento miocardico prima di iniziare l'intervento sottovalvolare. Inizia la manipolazione dei tessuti solo dopo aver confermato l'assenza di contrazioni ventricolari e uno stato di arresto stabile.
   10. In questo protocollo, somministrare una cardioplegia a dose singola sufficiente a mantenere l'arresto miocardico durante tutto il periodo di intervento sottovalvulare. Il ridosaggio non è regolarmente necessario a causa della durata relativamente breve del clamp incrociato aortico (circa 30-40 minuti).
   11. Applica una pasta salina di ghiaccio frantumato, già preparata, sulla superficie cardiaca per ridurre ulteriormente la temperatura miocardica, diminuire la domanda metabolica e migliorare la protezione miocardica.

4. Esposizione ventricolare sinistra e intervento nella struttura sottovalvolare tramite accesso aortico

ATTENZIONE: Maneggiare con attenzione strumenti appuntiti e forbici durante l'incisione aortica e il taglio dei tessuti. Evita un'eccessiva trazione che potrebbe danneggiare le strutture circostanti.

1. Dopo aver raggiunto l'arresto cardiopligico e la protezione ipotermica, eseguire un'incisione trasversale di circa 1,0-1,5 cm di lunghezza sulla parete anteriore dell'aorta ascendente, situata circa 1,5-2,0 cm sopra l'anello della valvola aortica e orientata perpendicolarmente all'asse lungo dell'aorta.
2. Inserire due ganci curvi nell'incisione aortica rispettivamente dai lati dorsale sinistro e ventrale. Ritrae delicatamente l'incisione lateralmente per aprire la radice aortica ed espandere il campo chirurgico (Figura 2A).
3. Introdurre un portaago che trasporti una sutura di trazione precaricata nel campo operatorio. Posizionare la sutura sul tessuto sottovalvolare bersaglio per facilitare la trazione intraoperatoria e la localizzazione precisa.
4. Avanzare piccole forbici curve attraverso l'incisione aortica lungo l'asse dell'aorta verso la camera ventricolare sinistra. Utilizzare la sutura di trazione per esporre la regione subvalvolare bersaglio (Figura 2A).
5. Con visualizzazione diretta, orientare le forbici orizzontalmente e tagliare le strutture subvalvolari designate in modo controllato (Figura 2B). Rimuovi il tessuto resezionato e consegnalo all'assistente.
6. Irrigare accuratamente la camera ventricolare sinistra e il lumen aortico con soluzione salina sterile per rimuovere eventuali residui tissutali residui.
7. Chiudi l'incisione aortica usando suture absorbibili continue. Inizia da un'estremità dell'incisione e passa sequenzialmente l'ago attraverso l'intima e il mezzo, usando punti a distanza uniforme per garantire una chiusura completa e impermeabile. Dopo aver completato la sutura, irrigare nuovamente la superficie esterna del sito di chiusura con soluzione salina sterile per pulire l'area.

5. Ripresa cardiaca e bypass cardiopolmonare

ATTENZIONE: Confermare la completa deairazione delle camere cardiache e delle linee di perfusione prima di ripristinare la circolazione per prevenire embolie atmosferiche.

1. Dopo aver completato la chiusura aortica, ridurre gradualmente il tasso di perfusione del seno coronarico e interrompere l'infusione di cardioplegia. Contemporaneamente, diminuire gradualmente la portata della pompa di bypass cardiopolmonare (CPB) per consentire un recupero progressivo dell'attività cardiaca spontanea.
2. Monitorare continuamente il ritmo cardiaco tramite elettrocardiografia (ECG) per rilevare il ritorno del ritmo paranasale o la presenza di aritmie.
3. Dopo il successo dello svezzamento dalla CPB, invertire l'eparinizzazione sistemica somministrando protamina per neutralizzare l'eparina circolante e ripristinare la normale funzione della coagulazione.
4. Se il rientro cardiaco spontaneo non avviene entro pochi minuti, applicare la defibrillazione diretta posizionando le palette del defibrillatore direttamente sulla superficie cardiaca. Somministrare una singola scossa a bassa energia e ripetere se necessario finché l'attività elettrica organizzata non viene ripristinata.
5. Dopo il ripristino delle normali forme d'onda ECG, valutare l'impulso apicale, la pulsazione coronarica e la contrattilità miocardica complessiva.
6. Una volta che il ritmo cardiaco si stabilizza e la forza contrattile è soddisfacente, si rimuove sequencialmente la cannula di perfusione del seno coronarico e la cannula di drenaggio venoso atriale sinistro. Chiudere ogni sito di canulazione con suture per ottenere l'emostasi.
7. Scollega il sistema CPB. Annota la durata totale della CPB, il tempo di pinzatura incrociata aortica e il tempo fino alla ripresa cardiaca.
8. Irrigare accuratamente la cavità pericardica con soluzione salina sterile e aspirare eventuali liquidi residui o coaguli di sangue.
9. Prima della chiusura sternale, posizionare due tubi di drenaggio chiusi all'interno della cavità pericardica, posizionandone uno su ciascun lato del cuore. Esternizza i tubi di drenaggio attraverso uno spazio intercostale e collegali a bottiglie di drenaggio esterne.
10. Chiudi lo sterno usando quattro fili d'acciaio inossidabile in configurazione interrotta. Successivamente, esegui una chiusura stratificata di routine della parete toracica.

Results

Questo protocollo chirurgico consente un'esposizione stabile e un taglio controllato delle strutture sottovalvolari all'interno del ventricolo sinistro. Durante la procedura, l'incisione aortica è stata posizionata con precisione e l'ingresso attraverso l'apertura aortica ha permesso una chiara visualizzazione del tratto di uscita del ventricolo sinistro e della regione subvalvolare associata. Il chirurgo ha localizzato l'area del taglio applicando trazione sulla sutura preimpostata e ha...

Discussion

Le anomalie della struttura sottovalvolare del ventricolo sinistro rappresentano cambiamenti anatomici critici nei pazienti con cardiomiopatia ipertrofica (HCM), che portano a una compromessa della compliance ventricolare, aumento della pressione diastolica e ostruzione del tratto di uscita ventricolare sinistro (LVOT). Queste anomalie strutturali costituiscono basi patologiche principali per la disfunzione cardiaca clinica e per gli esiti avversi^10,11<...

Materials

List of materials used in this article

Name	Company	Catalog Number	Comments
0.9% Sodium Chloride Injection	-	-	Usato per irrigazione e diluizione della soluzione
Macchina per anestesia	-	-	Fornisce anestetici inalatori e supporto respiratorio
Anestetici (Propofol, Fentanyl, Atracurium)	-	-	Usato per l'induzione e il mantenimento dell'anestesia
Retrattore aortico	SINOVIEW	RT37008-25	Usato per retrarre l'aorta e migliorare la visibilità
Pinze atraumatiche	SINOVIEW	FC22500-24	Usato per afferrare il tessuto minimizzando il trauma
Soluzione cardioplegica (St. Thomas)	-	-	Usato per l'arresto cardiaco e la protezione
Macchina e tubazioni per bypass cardiopolmonare	-	-	Usato per mantenere la circolazione durante il CPB
Kit per catetere venoso centrale	-	-	Stabilisce l'accesso venoso centrale
Set per intubazione endotracheale e ventilatore	-	-	Mantiene le vie aeree durante l'intervento
Retrattore a gancio piatto	SINOVIEW	RT37000-00	Usato per la retrazione dei tessuti nella cavità toracica
Retrattore generale	-	-	Usato per retrarre i tessuti ed esporre l'area chirurgica
Pinze emostatiche	-	-	Usate per bloccare i vasi sanguigni o i tessuti per l'emostasi
Iniezione di eparina sodica	-	-	Usato per l'anticoagulazione
Catetere IV radiopacco 22 GA × 1,00 pollici	BD Angiocath	381123	Usato per stabilire l'accesso venoso
Cestino per strumenti microchirurgici	SINOVIEW	90X0003	Usato per conservare e trasportare strumenti microchirurgici
Forbici curve minima invasiva	SINOVIEW	SC40230-25	Usate in procedure minima invasiva per tagli curvi
Forbici minima invasiva a doppia giuntura	SINOVIEW	SC55001-29	Usate per tagli precisi in campi operativi profondi
Portaghiaccio	-	-	Usato per tenere gli aghi per il punto durante il cucito
Manico e lama di bisturi	-	-	Usato per incidere la pelle e i tessuti
Teli sterili, suture, guanti, maschere	-	-	Usato per mantenere un campo chirurgico sterile
Scatola per sterilizzazione di strumenti di precisione	SINOVIEW	90X0401	Usato per la pulizia e la sterilizzazione degli strumenti chirurgici
Pinze per tessuto (dentate/non dentate)	-	-	Usato per afferrare il tessuto
Forbici per tessuto	SINOVIEW	SC35101-25SC	Usato per il taglio generale dei tessuti
Micropinze a tripla giuntura	SINOVIEW	FC17010-301	Usato in microchirurgia per manipolazione delicata
Forbici ultra affilate	SINOVIEW	SC35101-23UC	Usato per la dissezione precisa dei tessuti
Catetere urinario e sacchetto di drenaggio	-	-	Usato per il drenaggio e il monitoraggio delle urine
Monitor dei segni vitali	-	-	Monitora ECG, pressione sanguigna, SpO2, temperatura