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Il protocollo di ricerca è stato approvato dal Comitato Etico del Secondo Ospedale Affiliato, Facoltà di Medicina dell'Università di Zhejiang (n. 2025-0581). Tutti gli esperimenti e le procedure sono stati eseguiti secondo la Dichiarazione di Helsinki (come rivista nel 2013). Questo studio retrospettivo ha incluso 47 pazienti ricoverati per LETM presso il Second Affiliated Hospital, Zhejiang University School of Medicine. Questo studio ha ottenuto il consenso informato di tutti i partecipanti. Questo studio di coorte retrospettivo ha incluso tutti i pazienti idonei. È stata condotta un'analisi di potenza post hoc per valutare l'adeguatezza della dimensione del campione. I risultati hanno mostrato che, con la dimensione attuale del campione, la dimensione dell'effetto osservata era 1,213515, e la potenza raggiunta (probabilità 1-β err) era 0,9659161, che supera la soglia convenzionale di 0,8. Pertanto, la dimensione del campione soddisfa i requisiti statistici.
Reclutamento dei pazienti
Criteri di inclusione: Includere i pazienti che soffrivano di attacchi acuti, che dispongono di dati clinici completi, i cui sieri sono risultati negativi per MOG, AQP4 e anticorpi GFAP, e i cui segmenti colpiti erano più o uguali a tre18. Criteri di esclusione: Escludere i pazienti che hanno sperimentato altre malattie che potrebbero causare disabilità e quelli che avevano accettato efgartigimod all'insorgenzaacuta 18. Raccolta delle informazioni dei pazienti: Sono stati registrati dati demografici, inclusi età, sesso, durata della malattia e lunghezza dei segmenti spinali coinvolti.
Trattamento e valutazione clinica
Raggruppare i pazienti secondo i rispettivi regimi di trattamento. I pazienti sono stati divisi in due gruppi: il gruppo di trattamento efgartigimod (n = 11) e il gruppo di trattamento convenzionale (n = 36). Nel gruppo efgartigimod, i pazienti sono stati trattati con somministrazione di 400 mg di efgartigimod per 2 settimane, insieme a infusione endovenosa di 1.000 mg di metilprednisolone mescolato con 500 mL di soluzione di glucosio al 10%, somministrata durante un periodo di trattamento di 2settimane 16. Nel gruppo di trattamento tradizionale, i pazienti sono stati trattati con infusione endovenosa di 1.000 mg di metilprednisolone miscelata con 500 mL di soluzione di glucosio al 10% somministrata durante un periodo di trattamento di 2settimane 19.
Parametri di valutazione clinica dei pazienti
La disabilità dei pazienti è stata valutata con una serie di indici, tra cui la scala espansa dello stato di disabilità (EDSS) e la scala di fragilità clinica (CFS)20,21. La qualità della vita dei pazienti è stata valutata con il Health Survey Short Form-36 (SF-36), inclusi il funzionamento fisico (PF), la salute mentale (MH), il dolore (PA), la salute generale (GH), la vitalità (VT), il funzionamento sociale (SF), il ruolo emotivo (RE) e il ruolo fisico (RP)22.
Misurazione dell'interleucina-6 (IL-6), IL-10 e IL-41
I campioni di sangue a digiuno venivano prelevati al mattino. Il siero è stato isolato dal sangue con centrifugazione di 10 minuti a 1.000 x g e conservato a -80 °C per analisi successive. La durata di conservazione di tutti i campioni variava da 6 a 48 mesi.
I livelli sierici di IL-6, IL-10 e IL-41 sono stati misurati utilizzando kit di immunoassorbimento enzimatico (ELISA), seguendo le istruzioni del produttore (Tabella dei materiali). Bilancia tutti i reagenti dal kit ELISA a temperatura ambiente per 20 minuti prima del test. Venivano utilizzati pozzi standard, campione e a vuoto. Nei pozzi standard venivano aggiunti 50 μL di soluzione standard a diverse concentrazioni (0-100 pg/mL), 50 μL del campione siero nei pozzi del campione e 50 μL di diluente al campione nei pozzi a vuoto. Un tampone di lavaggio è stato preparato diluendo la soluzione concentrata con acqua doppiamente distillata in un rapporto 1:24. Il tampone preparato veniva utilizzato lo stesso giorno per garantire un'efficienza ottimale del lavaggio.
Calcolò il volume di soluzione operativa in base ai requisiti sperimentali (100 μL per pozzo). A 15 minuti di utilizzo, centrifugato l'anticorpo biotinilato concentrato 100x a 7.150 x g per 1 minuto e diluito con tampone di diluizione di anticorpi biotinilati in un rapporto 1:99 per ottenere una concentrazione di lavoro 1x. Ho usato immediatamente la soluzione di lavoro preparata per mantenerne l'attività. Il coniugato HRP consisteva in streptavidina coniugata con HRP. Calcolò il volume richiesto in base ai requisiti sperimentali (100 μL per pozzo), con ulteriori 100-200 μL preparati per garantire una quantità sufficiente. A 15 minuti dall'uso, centrifugato il coniugato HRP concentrato 100x a 11.173 x g per 1 minuto e poi diluito con il tampone di diluizione coniugato HRP a un rapporto 1:99 per ottenere una concentrazione di lavoro 1x. Ho usato immediatamente la soluzione di lavoro preparata per preservarne l'attività.
Di conseguenza preparavano pozzi standard (100 μL di standard diluiti), pozzi a vuoto (100 μL di tampone standard e diluizione del campione) e pozzi di campione (100 μL di campione di prova diluito). Dopo l'aggiunta delle soluzioni, sigilla la piastra con una membrana e incuba a temperatura ambiente per 1,5 ore. Dopo l'incubazione, rimuovere il liquido nei pozzi senza lavarli. Successivamente, sono stati aggiunti 100 μL di soluzione di lavoro per anticorpi biotinilati a ciascun pozzo. Sigillare la piastra e incubare a 37 °C per 1 ora per facilitare il legame dell'anticorpo biotinilato ai complessi antigene-anticorpi. Dopo l'incubazione, rimuovere il liquido nei pozzi e asciugare la piastra su carta assorbente pulita. Riempi ogni pozzo con 350 μL di tampone di lavaggio e lascia riposare per 1 minuto. Dopo aver rimosso il liquido, asciuga di nuovo il piatto su carta assorbente. Ho ripetuto questa procedura di lavaggio 4 volte.
Dopo il lavaggio, aggiungi 100 μL di soluzione di lavoro con coniugato enzimatico in ciascun pozzo. Sigilla la piastra e incuba a 37 °C per 30 minuti per permettere un legame completo tra il coniugato HRP e l'anticorpo biotinilato. Dopo l'incubazione, rimuovere completamente il liquido dai pozzi e asciugare la lastra su carta assorbente pulita. Ripeti la procedura di lavaggio descritta sopra 5 volte per rimuovere completamente i coniugati enzimatici non legati e minimizzare le reazioni aspecifiche. Dopo il lavaggio, aggiungi 90 μL di soluzione di substrato in ciascun pozzo. Sigilla la piastra e incuba a 37 °C al buio per circa 15 minuti. Preriscaldato il lettore di micropiastre per 15 minuti per garantire l'accuratezza della rilevazione. Dopo l'incubazione, sono stati aggiunti 50 μL di soluzione a chiusura a ciascun pozzo per interrompere lo sviluppo del colore e la reazione enzimatica. Dopo la interruzione della reazione, la densità ottica (OD) a 450 nm di ciascun pozzo veniva immediatamente misurata e i risultati venivano registrati utilizzando un lettore di microplacche per l'analisi e il calcolo dei dati successivi.
Analisi statistica
Un'analisi statistica è stata effettuata su SPSS 27.0 e GraphPad Prism 8.4.3. Campioni indipendenti t-test e test χ2 sono stati utilizzati per confrontare i dati di base tra i due gruppi. Il test t a campione abbinato o test Wilcoxon è stato utilizzato per confrontare i punteggi clinici e quelli della qualità della vita prima e dopo il trattamento. Inoltre, i livelli sierici di IL-6, IL-10 e IL-41 sono stati confrontati prima e dopo il trattamento utilizzando un test t a campione abbinato. Un confronto tra i due gruppi è stato effettuato utilizzando un test t a campioni indipendenti. Il coefficiente di correlazione di Pearson è stato utilizzato per misurare la correlazione tra i livelli di fattori di infiammazione ed EDSS. Le differenze sono state considerate statisticamente significative a p < 0,05.