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Le modifiche post-traduzionali delle istone (hPTM) sono regolatori centrali dell'organizzazione della cromatina e dell'espressione genica. La loro disregolazione è implicata nello sviluppo, nel cancro e nell'invecchiamento. Sebbene la spettrometria di massa sia il metodo preferito per studiare gli hPTM, la maggior parte dei protocolli è progettata per campioni di massa e non può risolvere la variabilità cellula a cellula. Estendere l'analisi PTM degli istoni al livello di singola cellula è quindi essenziale ma tecnicamente impegnativo, poiché gli istoni sono in bassa abbondanza, ricchi di lisina e fortemente modificati.
Qui descriviamo un flusso di lavoro proteomico automatizzato a singola cellula per l'analisi PTM degli istoni utilizzando la gestione di nano liquidi. Il sistema consente l'elaborazione su scala nanolitrica di singole cellule con una gestione minima e un'elevata riproducibilità. Il flusso di lavoro include la digestione con ArgC Ultra proteasi, che taglia i residui di arginina ed evita la necessità di passaggi di derivatizzazione che bloccano la lisina tipicamente necessari nella proteomica degli istoni. Per consentire un confronto quantitativo tra le condizioni, applichiamo una strategia di marcatura a due plex con anidride propionica e il suo analogo deuterato, l'anidride propionica-d10. Questa combinazione di preparazione automatica del campione, multiplexazione isotopica e digestione ArgC Ultra porta a un protocollo semplificato e sensibile per l'analisi PTM degli istoni a singola cellula.
Il metodo consente di studiare l'eterogeneità della cromatina e gli effetti delle perturbazioni epigenetiche a risoluzione monocellulare. Per dimostrare il flusso di lavoro, abbiamo generato sferoidi dalle cellule epatocellulari del carcinoma HepG2/C3A e li abbiamo trattati con butirato di sodio, un inibitore dell'istoria deacetilasi che induce l'iperacetilazione.