Modellazione animale
Questo studio è stato approvato dal Comitato Etico del Secondo Ospedale Affiliato dell'Università di Medicina Tradizionale Cinese del Fujian (Approvazione n. FJPSPH-IAEC2024114) e condotta in conformità con le linee guida per il benessere animale. I maschi di ratti Sprague-Dawley del peso 180-200 g sono stati alloggiati in condizioni controllate a 22-26°C e umidità del 40-70%. La LM è stata indotta con il metodo Allen di dropdi peso 10: anestesia inalazione di isoflurano al 3-4%, incisione mediana a T10, esposizione dei segmenti T9-T11, laminectomia (dura mater intatta) e impatto (punta di 2 mm, velocità 0,5 m/s, profondità 1,3 mm, durata 1 s). I ratti finti sono stati sottoposti a laminectomia senza impatto. Criteri di inclusione: punteggio BBB < 8 a 24 ore dall'intervento; Criteri di esclusione: infezione, transezione del midollo spinale. Cura post-operatoria: analgesia (buprenorfina, 0,1 mg/kg s.c., ogni 12 ore per 3 giorni), espressione vescica (ogni 6 ore per 1 settimana) e cura delle ferite sterili. I ratti modello riusciti sono stati assegnati casualmente a un gruppo modello, e gruppi GLGZ ad alto (2,32 g/kg, n = 10), medio (1,16 g/kg, n = 10), a bassa dose (0,58 g/kg, n = 10).
Analisi della funzione motoria
La registrazione di Basso, Beattie e Bresnahan (BBB) è stata eseguita alla cieca. I ratti sono stati osservati in un campo aperto per 5 minuti, valutando il movimento delle articolazioni dell'arto posteriore, il carico di peso, l'andatura e la coordinazione.
Elastografia a onda di taglio per misurare la rigidità del retto femorale
È stato utilizzato un sistema a ultrasuoni Doppler con una sonda a array lineare (18L6). I ratti venivano posti in posizione di reclinazione laterale (muscolo rilassato). L'SWE veniva eseguita con la sonda posizionata a un angolo di 90° rispetto al muscolo, a una profondità di 1-2 cm. La regione di interesse (ROI) è stata impostata a 0,5 × 0,5 cm, e sono stati acquisiti dieci fotogrammi per ogni misura. Il valore finale di rigidità rappresentava la media di tre misurazioni valide. Fu registrata la velocità dell'onda di taglio (SWV); Il controllo qualità verde indicava immaginivalide 11.
Esame MRI
La risonanza magnetica è stata eseguita utilizzando uno scanner 7.0T con una sequenza grassocompressa ponderata T2 e una bobina specifica per animali. I parametri di acquisizione erano i seguenti: tempo di ripetizione (TR) 3.800 ms, tempo di eco (TE) 72 ms, spessore della sezione 1 mm, dimensione voxel 0,1 × 0,1 × 1 mm, matrice 256 × 256, campo visivo (FOV) 25,6 × 25,6 mm, quattro medie del segnale e gating respiratorio. L'area della lesione è stata misurata utilizzando un software di elaborazione delle immagini.
Colorazione istologica
La colorazione con HE è stata eseguita tramite deparaffinizzazione sequenziale, reidratazione, colorazione con ematossilina per 5 minuti, risciacquo in acqua corrente, differenziazione in acido cloridrico-etanolo all'1% per 30 secondi, colorazione con eosina per 2 minuti, disidratazione, pulizia e montaggio. Come checkpoint visivo, le sezioni colorate mostravano nuclei blu e citoplasma rosso.
La colorazione con Nissl è stata effettuata tramite deparaffinizzazione, reidratazione, incubazione in blu di toluidina allo 0,1% a 50-60 °C per 30 minuti, seguita da risciacquo con acqua distillata, differenziazione con etanolo, disidratazione, pulizia e montaggio. Come checkpoint visivo, i corpi blu scuro di Nissl furono chiaramente osservati nel gruppo finto.
La colorazione Luxol fast blue-cresyl violet è stata eseguita tramite deparaffinizzazione, reidratazione, incubazione in Luxol fast blue a 60 °C per 2 ore, risciacquo con etanolo al 95%, differenziazione nel carbonato di litio per 30 s, seguita da differenziazione al 70% con etanolo, controcolorazione cresyl viola per 10 minuti, disidratazione, pulizia e montaggio. La concentrazione operativa di viola cresyl era dello 0,1%. Come checkpoint visivo, nel gruppo sfinto è stata osservata mielina blu scuro.
La colorazione multiplex per immunofluorescenza è stata eseguita a partire dalla deparaffinizzazione, reidratazione e recupero di antigeni utilizzando tampone di citrato (pH 6,0) a 95 °C per 20 minuti. Le sezioni sono state trattate con perossido di idrogeno al 3% per 10 minuti, seguite da un blocco con BSA al 5% a 37 °C per 1 ora. Gli anticorpi primari sono stati incubati durante la notte a 4 °C (ASC: 1:500; Caspase-8: 1:400; RIPK3: 1:500). Dopo il lavaggio con PBS-T (0,1% Tween-20, 3 x 5 min), le sezioni sono state incubate con anticorpi secondari marcati con HRP (1:1000) a 37 °C per 1 ora. Successivamente è stata applicata la marcatura con fluorocromo: YTR520 Plus per ASC, TYR570 Plus per Caspase8 e TYR690 Plus per RIPK3 (30 min), seguita da colorazione nucleare DAPI per 5 minuti. Sono state montate vetrine e l'imaging è stato effettuato utilizzando un microscopio a fluorescenza impostato a 500 ms di esposizione, guadagno 1,0, ingrandimento ×200, con set di filtri corrispondenti ai rispettivi fluorochromi.
Per lo xilene ed l'etanolo, tutte le operazioni venivano eseguite in una cappa a fumi, e durante l'uso venivano indossati guanti e occhiali protettivi. Per i reagenti che colorano, il contatto diretto con la pelle era strettamente evitato. Tutti i reagenti di rifiuti venivano smaltiti in contenitori designati per rifiuti pericolosi. Per i materiali a rischio biologico, è stata effettuata una sterilizzazione accurata con autoclave prima dello smaltimento finale per prevenire una potenziale contaminazione biologica.
Analisi statistica
Per confronti di gruppo è stata utilizzata un'ANOVA unidirezionale con test post-hoc LSD. P < 0,05 è stato considerato statisticamente significativo.