Dichiarazione etica
Tutti i protocolli sperimentali sono stati esaminati e approvati dal Comitato per la Cura e l'Uso Sperimentale degli Animali del Fuzong Clinical Medical College della Fujian Medical University e condotti in rigorosa conformità con la Dichiarazione dell'Association for Research in Vision and Ophthalmology (ARVO) for the Use of Animals in Ophthalmic and Vision Research.
Animali e assegnazione dei gruppi
Un totale di 72 maschi C57BL/6 topi (8–10 settimane, peso corporeo 20–25 g) sono stati ottenuti dal fornitore certificato, in conformità agli standard nazionali per l'allevamento di animali da laboratorio. I topi venivano ospitati in gabbie ventilate individualmente in condizioni ambientali standardizzate, inclusi un ciclo luce/buio di 12 ore, temperatura controllata (22 ± 2 °C) e umidità relativa (50% ± 10%), con accesso ad libitum a cibo e acqua. Per indagare gli effetti modulatori delle vie ALDH2, SIRT1 ed ERS sul danno retinico indotto dalla MNU, i topi sono stati distribuiti casualmente in otto gruppi sperimentali (n = 9 per gruppo; n = 5 per il secondo giorno; n = 4 per il quarto giorno) utilizzando una sequenza di randomizzazione generata al computer per minimizzare il bias di selezione. L'abstract grafico dello studio è stato mostrato nella Figura 1.
Preparazione e regimi di trattamento dei reagenti
I reagenti sperimentali utilizzati in questo studio sono elencati nella Tabella dei Materiali, con informazioni dettagliate sulla preparazione e sul dosaggio come segue. (1) MNU (50 mg/kg): 100 mg di MNU sono stati disciolti in 2 mL di soluzione salina normale per preparare una soluzione da 50 mg/mL. Successivamente, 1,4 mL di questa soluzione è stato diluito con 5,6 mL di soluzione fisiologica normale fino a una concentrazione finale di 10 mg/mL per la somministrazione animale. (2) Alda-1 (10 mg/kg): 50 mg di polvere di Alda-1 sono stati disciolti in 1 mL di dimetilsolfosido (DMSO) per preparare una soluzione da 50 mg/mL, diluita con 24 mL di soluzione salina normale fino a una concentrazione finale di 2 mg/mL. (3) Daidzin (10 mg/kg): 50 mg di polvere di Daidzin sono stati disciolti in 1 mL di DMSO per preparare una soluzione da 50 mg/mL, poi diluita con 24 mL di soluzione salina normale fino a una concentrazione finale di 2 mg/mL. (4) EX-527 (10 mg/kg): 5 mg di polvere di EX-527 sono stati disciolti in 0,1 mL di DMSO per preparare una soluzione da 50 mg/mL, diluita con 2,4 mL di soluzione salina normale fino a una concentrazione finale di 2 mg/mL. (5) SRT1720 (10 mg/kg): 5 mg di polvere di SRT1720 sono stati disciolti in 0,1 mL di DMSO e ben mescolati. Successivamente, sono stati aggiunti 400 μL di PEG300, 50 μL di Tween-80 e 450 μL di soluzione salina normale per preparare una soluzione di lavoro di 2 mg/mL. (6) TUN (10 mg/kg): 5 mg di polvere di TUN sono stati disciolti in 0,1 mL di DMSO per preparare una soluzione da 50 mg/mL, poi diluita con 2,4 mL di soluzione salina normale fino a una concentrazione finale di 2 mg/mL. (7) 4-Fenilbutirato (4-PBA; 10 mg/kg): 2 mg di polvere di 4-PBA sono stati disciolti in 1 mL di soluzione salina normale per preparare una soluzione da 2 mg/mL. Tutti i volumi di somministrazione sopra indicati erano di 5 × M millilitri (dove M = peso corporeo animale in kg). Successivamente, i topi sono stati divisi in otto gruppi con i seguenti protocolli di trattamento:
Gruppo di controllo: Un'unica iniezione intraperitoneale di soluzione fisiologica normale.
Gruppo MNU: Un'iniezione intraperitoneale singola di MNU.
Gruppo MNU + Alda-1: iniezione intraperitoneale di Alda-1, seguita da una somministrazione di MNU 2 ore dopo. Alda-1 veniva poi somministrato intraperitonealmente una volta al giorno.
Gruppo MNU + Daidzin: iniezione intraperitoneale di Daidzin, seguita da un'iniezione singola di MNU somministrata 2 ore dopo. Il Daidzin veniva quindi somministrato intraperitonealmente una volta al giorno.
Gruppo MNU + Alda-1 + EX-527: iniezione intraperitoneale di Alda-1, seguita da iniezione di EX-527 un'ora dopo e iniezione di MNU un'ora dopo (somministrazione singola). Alda-1 veniva poi somministrato intraperitonealmente una volta al giorno.
MNU + Alda-1 + gruppo TUN: iniezione intraperitoneale di Alda-1, seguita da iniezione TUN un'ora dopo e iniezione MNU un'ora dopo. Alda-1 veniva poi somministrato intraperitonealmente una volta al giorno.
MNU + Daidzin + gruppo SRT1720: iniezione intraperitoneale di Daidzin, seguita da SRT1720 iniezione un'ora dopo e iniezione MNU un'ora dopo. Il Daidzin veniva quindi somministrato intraperitonealmente una volta al giorno.
Gruppo MNU + Daidzin + 4-PBA: iniezione intraperitoneale di Daidzin, seguita da iniezione 4-PBA un'ora dopo e iniezione MNU un'ora dopo. Il Daidzin veniva quindi somministrato intraperitonealmente una volta al giorno.
Monitoraggio del peso corporeo
La tossicità sistemica e gli effetti fisiologici correlati al trattamento sono stati monitorati registrando il peso corporeo di ciascun topo ogni giorno per quattro giorni consecutivi dopo la somministrazione di MNU. I pesi sono stati misurati utilizzando una bilancia digitale di precisione con una precisione di ±0,1 g, e i dati sono stati documentati per monitorare le tendenze nella perdita o nell'aumento di peso tra i gruppi, che fungevano da indicatori indiretti della tolleranza al trattamento e dello stress sistemico.
Esame di istopatologia retinica
Nei momenti del secondo e quarto giorno dopo l'esperimento, i topi sono stati soppressi da lussazione cervicale dopo anestesia con iniezione intraperitoneale (i.p.) di pentobarbital sodio a una dose di 50–60 mg/kg di peso corporeo, rispettando rigorosamente le linee guida istituzionali sull'eutanasia. Gli occhi, in particolare quello sinistro, sono stati immediatamente enucleati. Prima dell'enucleazione, è stata effettuata una piccola incisione nel limbo nasale per segnare l'orientamento. I globi sono poi stati immersi nel 4% di paraformaldeide (PFA) in soluzione salina tamponata con fosfato (PBS, pH 7,4) per 24 ore a 4 °C per la fissazione. Gli occhi fissi sono stati poi disidratati tramite una serie di etanolo gradato (70%, 80%, 95% e 100%), eliminati nello xilene e incorporati in blocchi di paraffina per l'elaborazione istologica. Durante l'immersione, l'orientamento veniva standardizzato posizionando il lato nasale marcato verso il basso.
Le sezioni seriali (spesse 5 μm) sono state preparate utilizzando un microtomo rotativo attraverso la testa del nervo ottico (ONH) per garantire un campionamento rappresentativo della regione retinica centrale. In particolare, le sezioni sono state tagliate dall'aspetto superiore verso il punto nasale segnato, assicurando che tutte le sezioni passassero attraverso l'ONH. Le sezioni venivano poi montate su vetrine in vetro caricate positivamente. La colorazione di ematossilina ed eosina (HE) è stata eseguita secondo protocolli standard. La morfologia retinica è stata valutata tramite microscopia ottica a un ingrandimento del 400×. Le misurazioni sono state effettuate sistematicamente dalla retina temporale a distanze predeterminate dall'ONH: 200, 400, 600, 800, 1000 e 1200 μm. In ogni posizione sono stati misurati lo spessore totale della retina, la lunghezza dei segmenti interni ed esterni (IS/OS), lo spessore dello strato nucleare esterno (ONL), lo spessore dello strato plexiforme esterno (OPL) e lo strato nucleare interno (INL).
Per garantire l'obiettività e minimizzare il bias di misura, è stato implementato un rigoroso protocollo di controllo qualità. In particolare, ciascuno degli otto gruppi sperimentali è stato suddiviso in cinque o quattro sottogruppi (ad esempio, sottogruppi 1, 2, 3, 4, 5). Cinque o quattro osservatori indipendenti, accechi alle assegnazioni di gruppo, sono stati assegnati a misurare lo stesso sottogruppo corrispondente in tutti i gruppi sperimentali (ad esempio, l'Osservatore A ha sempre misurato il Sottogruppo 1 da ogni gruppo). Ad ogni punto di misura, venivano effettuate tre letture entro un intervallo di ~5 μm (ad esempio, a 200 μm, 195 μm e 205 μm) e fatte una media per minimizzare l'errore tecnico. Le misurazioni quantitative sono state effettuate utilizzando il software ImageJ (versione 1.54g) e il valore medio dello spessore per ogni punto è stato calcolato per garantire la riproducibilità.
Marcatori del metabolismo degli aldeidi
Per valutare lo stress ossidativo e il metabolismo delle aldeide, sono stati analizzati campioni sierici per i livelli di MDA e 4-HNE, che sono biomarcatori chiave della perossidazione lipidica e dello stress aldeideico. In particolare, tutti i topi sono stati anestetizzati tramite iniezione intraperitoneale (i.p.) di pentobarbital sodio a una dose di 50–60 mg/kg di peso corporeo. Dopo che i topi sono stati profondamente anestetizzati, è stata eseguita l'eutanasia tramite lussazione cervicale. Immediatamente dopo l'eutanasia, i bulbi oculari venivano enucleati e il sangue retrobulbare veniva rapidamente raccolto. I campioni sono stati lasciati coagulare a temperatura ambiente per 30 minuti, seguiti da centrifugazione a 3.000 × g per 10 minuti. La frazione sierica veniva accuratamente trasferita in tubi microcentrifughe privi di enzimi e conservata a -80 °C fino a un'analisi successiva. I livelli di MDA sierici sono stati misurati utilizzando kit di immunosorbimento enzimatico (ELISA) disponibili in commercio seguendo i protocolli del produttore. In breve, sono stati aggiunti standard e campioni alle micropiastre pre-rivestite, incubati con specifici anticorpi primari, lavati per rimuovere materiali non legati e reagiti con anticorpi secondari coniugati con perossidasi di rapano picante (HRP). È stato poi aggiunto substrato di tetrametilbenzidina (TMB) e la reazione è stata terminata con acido solforico. I valori di densità ottica (OD) sono stati letti a 450 nm tramite un lettore di microplacche, e le concentrazioni di MDA/4-HNE sono state determinate confrontando i valori OD con curve standard generate utilizzando concentrazioni note degli analites.
Analisi statistica
Tutti i dati sono stati presentati come media ± errore standard (SE). Data la piccola dimensione del campione (n = 5 per il gruppo del secondo giorno; n = 4 per il gruppo del quarto giorno), sono stati impiegati i metodi statistici del test Bootstrap. In particolare, il metodo di ricampionamento Bootstrap (1.000 iterazioni con sostituzione) è stato utilizzato per stimare intervalli di confidenza (IC) del 95% per le medie dei gruppi e per confrontare le differenze tra i gruppi. Per ogni esito (ad esempio, peso, spessore retinico, livelli di MDA/4-HNE), sono stati prelevati campioni Bootstrap dal dataset originale e la media è stata calcolata per ogni nuovo campionamento. L'IC del 95% è stato derivato dal 2,5° e 97,5° percentile della distribuzione bootstrap. La rilevanza è stata valutata indirettamente attraverso il seguente approccio, esaminando l'intervallo di confidenza. Se l'IC dei risultati di Bootstrap non includeva zero, ciò indicava tipicamente che la differenza era significativa (assumendo un confronto delle medie tra due o più gruppi). Le figure venivano generate utilizzando il software Graphpad (versione 5.01).