$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Tutti i dati utilizzati in questo studio sono stati ottenuti da database accessibili al pubblico (TCGA, GEO e METABRIC). Non erano coinvolti partecipanti umani né animali; Pertanto, non era richiesta l'approvazione del comitato di revisione istituzionale e il consenso informato.
Acquisizione e preelaborazione dei dati
I dati sull'espressione genica relativi alla resistenza al tamoxifene sono stati recuperati dal database Gene Expression Omnibus (GEO) 10. Il dataset GSE67916 (Affymetrix Human Genome U133 Plus 2.0 Array) include 18 campioni di cellule di tumore al seno: 8 campioni di controllo non trattati e 10 campioni resistenti al tamoxifene generati da esposizione a lungo termine a farmaci. I dati di sequenziamento dell'RNA e le relative informazioni cliniche di follow-up per la coorte del Carcinoma Invasivo del Seno (TCGA-BRCA) sono stati scaricati dal The Cancer Genome Atlas (TCGA)11.
I file CEL grezzi di microarray venivano processati in R (versione 4.4.2) utilizzando il pacchetto affy. La correzione e la normalizzazione di background sono state eseguite con l'algoritmo Robust Multi-array Average (RMA), inclusa la trasformazione log2 e la normalizzazione dei quantili. Gli ID delle sonde venivano mappati ai simboli genici tramite file di annotazione della piattaforma; Per i geni con sonde multiple, è stato utilizzato il valore medio di espressione. Per i dati TCGA RNA-seq, i valori di trascrizioni per milione (TPM) sono stati trasformati log2 [log2(TPM + 1)]. Sono stati esclusi campioni con informazioni di sopravvivenza incomplete o variabili cliniche mancanti.
Identificazione di geni espressi differenzialmente
L'espressione differenziale tra campioni resistenti al tamoxifene e quelli di controllo è stata valutata utilizzando il pacchetto limmaR 12 con moderazione bayesiana empirica. Geni con |log2 fold change| > 1 e un valore P aggiustato < 0,05 (Benjamini–Hochberg FDR) sono stati definiti come geni espressi differenzialmente (DEG).
Analisi dell'arricchimento funzionale
Le analisi Gene Ontology (GO)13e Kyoto Encyclopedia of Genes and Genomes (KEGG)14 sono state effettuate utilizzando il pacchettoclusterProfiler 15 R. Le categorie GO includevano processo biologico (BP), componente cellulare (CC) e funzione molecolare (MF). I valori P aggiustati < 0,05 sono stati considerati significativi.
Selezione delle caratteristiche basata sul machine learning
Tre algoritmi di machine learning sono stati applicati per identificare i geni hub: (1) regressione LASSO16 (pacchetto glmnet) con validazione incrociata di 10 volte per selezionare il parametro di penalità ottimale (lambda.min); (2) Supportare l'eliminazione delle caratteristiche macchina–ricorsiva vettore (SVM-RFE)17 (pacchetto e1071) con validazione incrociata a cinque volte per identificare il sottoinsieme genico minimo con il minimo errore di classificazione; (3) Random forest (RF)18 (pacchetto randomForest) con 500 alberi (ntree = 500); i geni sono stati classificati da MeanDecreaseGini. I geni identificati con tutti e tre i metodi sono stati definiti come geni hub.
Costruzione del modello di rischio prognostico
È stato costruito un modello prognostico multigene utilizzando dati sull'espressione genica e la sopravvivenza del TCGA-BRCA. I geni associati alla sopravvivenza sono stati selezionati utilizzando la regressione di Cox univariata, seguita da una regressione di Cox multivariata per sviluppare la firma finale. La formula del punteggio di rischio è stata calcolata come: Punteggio di rischio = (0,01297 × CAMK1D) + (0,03021 × CHAC1) + (0,02018 × KIAA0513) + (0,00647 × MED13) + (0,00108 × NDRG1) + (0,04551 × STXBP5). I pazienti sono stati stratificati in gruppi ad alto e basso rischio in base al punteggio mediano di rischio.
Valutazione e validazione del modello prognostico
Le differenze complessive di sopravvivenza tra i gruppi sono state valutate con l'analisi di Kaplan–Meier e il test log-rank. Le prestazioni predittive sono state valutate utilizzando curve ROC (pacchetto pROC) e analisi ROC dipendente dal tempo (pacchetto timeROC). Un nomogramma che integra punteggi di rischio e variabili cliniche è stato costruito utilizzando il pacchetto rms. Le curve di calibrazione hanno valutato l'accordo tra le probabilità di sopravvivenza previste e osservate. La validazione esterna è stata condotta nella coorte19 del Consortium Indipendente della Tassonomia Molecolare del Cancro al Seno (METABRIC) utilizzando la stessa formula e il cutoff.
Analisi dell'infiltrazione immunitaria
L'infiltrazione delle cellule immunitarie è stata stimata utilizzando CIBERSORT20 con 1.000 permutazioni basate sui dati TCGA. Sono stati inclusi campioni con P < 0,05. Le differenze nella composizione delle cellule immunitarie tra gruppi ad alto e basso rischio sono state valutate con il test di somma dei rangi di Wilcoxon, e le correlazioni tra espressione genica hub e abbondanza di cellule immunitarie sono state valutate utilizzando la correlazione di rango di Spearman.
Analisi statistica
Tutte le analisi sono state effettuate in R. Le variabili continue sono state confrontate utilizzando il test di somma dei rangi di Wilcoxon, e le variabili categoriche tramite il test del chi-quadrato. Un P a due facce < 0,05 è stato considerato statisticamente significativo.