Lo studio retrospettivo è stato esaminato e approvato dal Comitato Etico dell'Ospedale di Medicina Tradizionale Cinese di Quzhou (numero di approvazione 202402208). Il consenso informato scritto è stato ottenuto da ogni paziente arruolato o da un tutore legale prima della raccolta dei campioni.
Collezione dei campioni
I tessuti tumorali primari di carcinoma polmonare non a piccole cellule (NSCLC) sono stati ottenuti chirurgicamente dai pazienti arruolati, mentre i corrispondenti tessuti polmonari normali adiacenti sono stati raccolti retrospettivamente presso il National Engineering Research Center for Clinical Biopsy (Quzhou City, Zhejiang Province, China). In questo studio di coorte sono stati inclusi un totale di 157 campioni di pazienti con NSCLC arruolati consecutivamente tra gennaio 2019 e dicembre 2024. L'ampiezza campionaria di 157 campioni appaiati è stata giustificata statisticamente sulla base di precedenti ricerche pubblicate riguardanti il prognostico degli miRNA nell'NSCLC: assumendo una dimensione dell'effetto moderata pari a 0,5, α = 0,05 e una potenza statistica dell'80%, il numero minimo di casi necessari è stato calcolato in 122. Considerando possibili perdite di campioni, necrosi tissutale grave e pazienti persi al follow-up, sono stati arruolati consecutivamente 157 pazienti idonei tra gennaio 2019 e dicembre 2024, al fine di garantire una potenza statistica sufficiente. Tutti i tessuti tumorali e i corrispondenti tessuti polmonari normali adiacenti sono stati prelevati dallo stesso paziente durante la resezione chirurgica, formando così coppie di campioni destinate ad analisi comparative successive.
I criteri di inclusione erano: (1) pazienti confermati istopatologicamente come NSCLC primario mediante biopsia postoperatoria; (2) dati completi relativi al basale clinico, allo stadio istopatologico e alla sopravvivenza a lungo termine durante il follow-up; (3) assenza di radioterapia, chemioterapia o terapia mirata precedente al prelievo del tessuto; (4) disponibilità di campioni abbinati completi di tessuto tumorale e tessuto para-canceroso.
I criteri di esclusione erano: (1) Tumori maligni secondari combinati di altri organi; (2) Pazienti persi al follow-up entro 3 mesi dall'intervento chirurgico; (3) Campioni con necrosi grave o volume tissutale insufficiente per l'analisi molecolare successiva.
Tutti i campioni di tessuto fresco sono stati posti in azoto liquido entro 15 minuti dal reperimento chirurgico, trasferiti in un congelatore ad ultra bassa temperatura e conservati a −80 °C per l'estrazione di RNA e proteine. È stato effettuato un follow-up clinico regolare e la sopravvivenza complessiva è stata misurata in mesi a partire dalla diagnosi istopatologica fino al decesso o all'ultima data di follow-up disponibile.
Stratificazione del livello di espressione di miR-21-5p
I valori relativi di espressione di miR-21-5p di tutti i 157 pazienti sono stati ordinati in ordine crescente e la coorte è stata stratificata in base alla soglia mediana di espressione. A causa della presenza di numerosi valori identici intorno alla mediana, i pazienti con espressione inferiore alla mediana sono stati assegnati al gruppo a bassa espressione (n = 61); i pazienti con espressione uguale o superiore alla mediana, inclusi tutti i valori identici corrispondenti alla mediana, sono stati classificati nel gruppo ad alta espressione (n = 96). Questa regola di assegnazione per i valori identici è stata definita a priori rispetto alla suddivisione in gruppi, al fine di risolvere le letture duplicate della mediana, e il risultato della suddivisione è stato verificato incrociando i dati grezzi della quantificazione qRT-PCR.
Coltura cellulare
Le linee cellulari umane di NSCLC A549 e H1299 sono state ottenute da un fornitore commerciale (vedere Tabella dei materiali). Le cellule A549 sono state mantenute in mezzo RPMI-1640, mentre le cellule H1299 sono state coltivate in DMEM. Entrambi i mezzi di coltura cellulare sono stati arricchiti con siero fetale bovino (FBS) inattivato termicamente al 10%, penicillina (100 U/mL) e streptomicina (100 µg/mL). Le cellule sono state coltivate in condizioni standard a 37 °C in un incubatore umidificato con 5% di CO₂.
È stato eseguito un profilo tramite ripetizioni in tandem corte (STR) per autenticare l'identità delle linee cellulari A549 e H1299 prima di tutti gli esperimenti funzionali. Il test per la contaminazione da micoplasma è stato effettuato mensilmente utilizzando un kit commerciale di rilevamento del micoplasma basato sulla PCR, e sono state utilizzate solo cellule negative al micoplasma per i saggi successivi.
Le cellule in fase di crescita logaritmica con morfologia intatta sono state raccolte per la trasfezione transitoria. È stato utilizzato un reagente di trasfezione a base lipidica (vedere Tabella dei Materiali) seguendo le istruzioni del produttore. I saggi cellulari successivi sono stati eseguiti 50 h dopo la trasfezione.
Trasfezione cellulare
Per la trasfezione, le cellule in fase di crescita logaritmica e con morfologia integra sono state seminate nelle piastre di coltura 24 h in anticipo per raggiungere una confluenza del 60%–70%. La trasfezione è stata eseguita utilizzando un reagente di trasfezione a base lipidica (vedere la Tabella dei materiali) seguendo le istruzioni del produttore. Sono stati utilizzati quattro gruppi sperimentali: controllo negativo del mimico (mimic-NC), mimico di miR-21-5p, controllo negativo dell'inibitore (inhibitor-NC) e inibitore di miR-21-5p. Le sequenze nucleotidiche sono riportate nel File supplementare 1.
L'RNA totale è stato estratto 50 h dopo la trasfezione e la PCR quantitativa di retrotrascrizione (qRT-PCR) è stata eseguita per misurare l'espressione relativa di miR-21-5p e verificare l'efficienza di trasfezione. I saggi di migrazione cellulare sono stati eseguiti 50 h dopo la trasfezione. Per la trasfezione transitoria, le cellule sono state trattate con il mimico di miR-21-5p o con un controllo negativo del mimico (mimic-NC) a una concentrazione finale di 50 nM, mentre l'inibitore di miR-21-5p e il controllo negativo dell'inibitore (inhibitor-NC) sono stati introdotti a 100 nM. Per evitare effetti confondenti attribuibili a differenze nell'apporto di acidi nucleici, la quantità totale di acido nucleico trasfettato è stata mantenuta identica in tutti e quattro i gruppi di trattamento.
La proliferazione cellulare è stata valutata mediante il saggio con il Cell Counting Kit-8 (CCK-8). Le cellule transfettate in modo stabile sono state seminate in piastre a 96 pozzetti a una densità di 3 × 103 cellule/pozzetto, con sei replicati tecnici per ogni gruppo. A 24, 48 e 72 h dal seeding, sono stati aggiunti 10 µL di reagente CCK-8 in ogni pozzetto, seguiti da un'incubazione a 37 °C per 2 h. La proliferazione cellulare è stata quantificata misurando l'assorbanza a 450 nm mediante un lettore di microplacche.
Tutti i transfezioni transitorie, i test CCK-8 e gli esperimenti di migrazione sono stati eseguiti con non meno di tre replicati biologici indipendenti, e ciascun replicato biologico comprendeva da 3 a 6 replicati tecnici come descritto in precedenza.
PCR quantitativa di retrotrascrizione
L'RNA totale da cellule NSCLC e da tessuti tumorali clinici accoppiati e tessuti normali adiacenti è stato isolato utilizzando un reagente di estrazione dell'RNA a base di fenolo/guanidina (vedere Tabella dei Materiali). La purezza e la concentrazione dell'RNA sono state determinate mediante spettrofotometria ultravioletta; solo i campioni con rapporti tra la densità ottica (OD) 260/280 e OD 260/230 compresi tra 1,8 e 2,1 sono stati sottoposti a retrotrascrizione. Le sequenze dei primer sono riportate nel File Supplementare 1. Il sistema di retrotrascrizione conteneva 500 ng di RNA totale, 2 µL di tampone per retrotrascrizione, 1 µL di miscela di dNTP, 0,5 µL di retrotrascrittasi, 1 µL di primer specifico a stem-loop per miRNA o primer oligo(dT) per mRNA e acqua libera da RNasi fino a un volume totale di 20 µL. Il sistema di amplificazione qRT-PCR (volume totale 20 µL) era costituito da 10 µL di master mix per qPCR con SYBR Green, 0,4 µL di primer forward (10 µM), 0,4 µL di primer reverse (10 µM), 2 µL di template di cDNA diluito e 7,2 µL di acqua libera da RNasi.
L'mRNA per CADM1 e GAPDH è stato retrotrascritto utilizzando un kit di retrotrascrizione, mentre miR-21-5p è stato retrotrascritto con primer a stem-loop e cel-miR-39 esogeno come controllo di spike-in. Lo spike-in di cel-miR-39 esogeno è stato aggiunto a ciascun campione di RNA immediatamente dopo l'isolamento dell'RNA totale e prima della retrotrascrizione. Essendo un microRNA sintetico di C. elegans privo di sequenze omologhe nei trascritti umani, cel-miR-39 può correggere le deviazioni causate da differenze nell'efficienza di estrazione dell'RNA, dalla perdita dovuta alla degradazione dell'RNA e dalle variazioni nell'efficienza della retrotrascrizione tra diversi campioni tissutali clinici, fungendo da controllo esogeno universale per la normalizzazione della quantificazione dei miRNA. La qRT-PCR è stata eseguita utilizzando una master mix a base di colorante fluorescente legante il DNA su un sistema di PCR in tempo reale (vedere la Tabella dei Materiali): 95 °C per 3 min, seguiti da 40 cicli a 95 °C per 10 s, 60 °C per 30 s e 72 °C per 20 s, con analisi della curva di denaturazione per confermare l'amplificazione specifica. Ogni campione presentava tre repliche biologiche, ciascuna con tre repliche tecniche, e l'espressione relativa è stata calcolata utilizzando il metodo 2⁻ΔΔCt. Le sequenze complete dei primer per l'amplificazione dell'mRNA di CRP, TNF-α e IL-6 sono fornite nel File Supplementare 1, insieme alle sequenze dei primer per CADM1, GAPDH e miR-21-5p.
Stabilizzazione dell'espressione di miR-21-5p mediata da lentivirus
Vettori lentivirali commerciali LV-miR-21-5p e controllo vuoto LV-NC sono stati assemblati in cellule 293T. La sequenza precursora di miR-21-5p è stata inserita in un vettore lentivirale contenente i geni di resistenza alla puromicina e di un reporter GFP. I supernatanti lentivirali sono stati raccolti a 48 h e 72 h dal transfezionamento, concentrati e purificati per l'infezione cellulare.
Le cellule A549 e H1299 sono state seminate 24 h prima dell'infezione per raggiungere una confluenza del 50–60%. Le cellule sono state infettate a un MOI = 10 (A549) e MOI = 15 (H1299) con 5 µg/mL di polibrenina per migliorare l'efficienza di trasfezione. Il mezzo è stato sostituito 24 h dopo l'infezione, e le cellule sono state coltivate per ulteriori 48 h prima della selezione con puromicina.
La selezione delle cellule stabili è stata effettuata con 5 µg/mL di puromicina per 10 giorni consecutivi; cellule vuote non infette sono state utilizzate per verificare l'eliminazione completa delle cellule non trasdotte entro 7 giorni. Singole colonie positive per GFP sono state isolate ed espanse per generare linee cellulari monoclonali stabili LV-21 e LV-NC.
Per i saggi di recupero di CADM1, sono stati preparati lentivirus commerciali per l'overespressione di LV-CADM1 e per il silenziamento di sh-CADM1. Sono stati stabiliti quattro gruppi sperimentali: LV-NC, LV-miR-21-5p, LV-CADM1 e il gruppo di recupero LV-miR-21-5p + LV-CADM1. I lentivirus di CADM1 sono stati utilizzati con lo stesso MOI e nelle stesse condizioni di selezione con puromicina dei vettori miR-21-5p. Tutti i saggi di recupero per la proliferazione e la migrazione sono stati ripetuti con tre replicati biologici indipendenti.
Convalida dell'overespressione stabile di miR-21-5p
L'RNA totale è stato estratto da cloni cellulari stabili LV-21 e LV-NC raccolti. È stata eseguita una qRT-PCR per rilevare il livello di espressione relativo di hsa-miR-21-5p utilizzando cel-miR-39 come riferimento esogeno. Sono stati selezionati per tutti i successivi saggi funzionali i cloni cellulari che mostravano un'upregolazione superiore a 8 volte rispetto al gruppo LV-NC, confermando così la corretta costruzione di linee cellulari stabili overesprimenti miR-21-5p.
Saggio del reporter dual-luciferasi
Sono stati costruiti un plasmide reporter della regione 3'-UTR wild-type di CADM1 (WT-CADM1) contenente la sequenza di legame prevista per miR-21-5p e un plasmide reporter della regione 3'-UTR mutante di CADM1 (MUT-CADM1) con una regione seed di legame mutata. Le cellule A549 sono state seminate in piastre a 24 pozzetti 24 ore prima della trasfezione, in modo da raggiungere una confluenza del 60%–70%. Ogni pozzetto è stato co-trasfettato con 500 ng di plasmide reporter WT/MUT, 50 nM di miR-21-5p mimic o mimic-NC e un plasmide di riferimento interno Renilla luciferasi in un rapporto di massa fisso. Dopo 48 ore di incubazione post-trasfezione, le cellule sono state lisate completamente e i segnali luminosi della luciferasi firefly e Renilla sono stati rilevati in sequenza mediante un kit di rilevamento dual-luciferasi. L'attività luciferasica relativa è stata calcolata come rapporto tra il valore di luminescenza di firefly e quello di Renilla. Ogni gruppo sperimentale comprendeva tre replicati biologici indipendenti, ciascuno con tre replicati tecnici, ed è stato utilizzato un test t per campioni indipendenti a due gruppi per il confronto statistico dell'attività luciferasica relativa tra i gruppi mimic-NC e miR-21-5p mimic.
Saggio di migrazione Transwell
Per il saggio di migrazione Transwell, le cellule transfettate in modo stabile sono state sospese in mezzo privo di siero e seminate negli inserti superiori a una densità di 4 × 104 cellule per pozzetto. Le camere inferiori sono state riempite con mezzo di coltura completo integrato con il 10% di FBS per stabilire un gradiente chemotattico. Dopo un'incubazione di 48 h a 37 °C in un'atmosfera umidificata contenente il 5% di CO₂, le cellule rimaste sulla superficie superiore della membrana sono state accuratamente rimosse. Le cellule migrate sul lato inferiore della membrana sono state fissate in metanolo e colorate con violetto cristallo. La migrazione è stata quantificata contando le cellule in cinque campi microscopici scelti casualmente per ogni inserto. Ogni esperimento è stato eseguito utilizzando tre replicati biologici indipendenti, con tre replicati tecnici inclusi per ciascun replicato biologico.
Analisi statistiche
Tutti gli esperimenti in vitro sono stati eseguiti con un minimo di tre replicati biologici indipendenti, ciascuno accompagnato da replicati tecnici corrispondenti. La distribuzione dei dati è stata inizialmente valutata mediante il test di normalità di Shapiro-Wilk per guidare l'analisi statistica. Per confronti accoppiati tra tessuti tumorali e tessuti normali adiacenti, è stato applicato il test t accoppiato o il test di Wilcoxon per ranghi con segno, a seconda della distribuzione dei dati. I confronti tra due gruppi indipendenti sono stati analizzati utilizzando il test t indipendente o il test U di Mann-Whitney. Le differenze tra più gruppi, inclusi gli esperimenti di recupero, sono state valutate mediante analisi della varianza unidirezionale (ANOVA) seguita dalla correzione post hoc di Bonferroni, mentre l'ANOVA a misure ripetute è stata utilizzata per analizzare dataset longitudinali come i saggi di proliferazione CCK-8 e di guarigione della ferita. Le associazioni tra variabili cliniche categoriali sono state esaminate mediante il test χ2, e la relazione tra l'espressione di miR-21-5p e CADM1 è stata valutata mediante analisi di correlazione di Pearson. La sopravvivenza dei pazienti è stata analizzata mediante curve di Kaplan-Meier, con i confronti effettuati tramite il test del log-rank. I fattori prognostici indipendenti sono stati identificati attraverso analisi di regressione univariata e multivariata di Cox per i rischi proporzionali. La significatività statistica è stata definita come P < 0,05. La regressione multivariata di Cox è stata aggiustata per età, sesso, tipo istologico, livello di miR-21-5p e stato dei linfonodi (riferimento: età ≤ 60 anni, sesso femminile, carcinoma squamocellulare, miR-21-5p basso, linfonodi negativi); i residui di Schoenfeld hanno verificato l'assunzione di rischi proporzionali, e le variabili con P univariata < 0,10 sono state incluse mediante selezione enter.