4 febbraio 2009
Questo protocollo dimostra come sezionare Drosophila in preparazione per immunoistochimica e / o immagini della giunzione neuromuscolare.
Questa procedura inizia con il posizionamento di una larva di terzo stadio sulla piastra di dissezione. I perni sono posizionati nelle estremità posteriore e anteriore delle larve. Le forbici vengono utilizzate per aprire le larve e le pinze vengono utilizzate per rimuovere gli organi interni.
Infine, altri quattro perni vengono posizionati in ogni angolo della parete del corpo della larva per tenerla tesa durante il fissaggio. Ciao, sono Jonathan Brent del Laboratorio di Brian McCabe presso il Dipartimento di Fisiologia e Biofisica solista presso il Columbia University College of Physicians and Surgeons. Oggi ti mostreremo la procedura per la larva di drosophila e la dissezione MJ.
Utilizziamo questa procedura nel nostro laboratorio per studiare lo sviluppo sinaptico della giunzione neuromuscolare. Quindi iniziamo. Nelle larve di drosophila, ci sono 30 muscoli per segmento emi la cui disposizione all'interno della parete periferica del corpo è nota.
Un totale di 35 motoneuroni innervano questi muscoli in uno schema altamente stereotipato. Per accedere alla giunzione neuromuscolare o NMJ, è necessario sezionare attentamente ogni larva con un'adeguata dissezione. L'NMJ può essere utilizzato per l'imaging, l'immunoistochimica o l'elettrofisiologia.
Iniziare la procedura mettendo una goccia di tampone HL 3.1 su una piastra di dissezione. Il tampone viene preparato in anticipo e raffreddato con ghiaccio. Raccogli con cura una larva di stella di terza estremità errante dal lato della fiala usando una grande pinza SS.
Il movimento indica che le larve non sono entrate nella pupa Posizionare le larve con il lato dorsale rivolto verso l'alto nella goccia tampone sulla piastra di dissezione. Il tampone freddo anestetizzerà le larve e le manterrà ferme usando una pinza. Posiziona uno spillo di mnuchin tra le sferiche posteriori, quindi posiziona un secondo spillo vicino agli uncini della bocca scuri in modo che le larve siano distese e pronte ad aprirsi.
Usando le forbici a molla, fai una piccola incisione orizzontale verso l'estremità posteriore delle larve. Inserisci una lama delle forbici nello sci e fai un taglio longitudinale verso l'estremità anteriore della larva. Quindi, quindi praticare incisioni orizzontali all'estremità anteriore delle larve a sinistra e a destra del perno.
Per rimuovere organi come l'intestino, aggiungere diverse gocce di tampone HL 3.1 all'animale, l'intestino e altri organi fluttueranno nella soluzione e possono essere estratti dal corpo usando una pinza. Inoltre, rimuovere il sistema tracheale con gli altri organi. Ora esponi i muscoli interni del corpo bloccando indietro i lembi fatti dalle incisioni.
Assicurati di allungare le pareti del corpo aperte orizzontalmente e verticalmente. Quando si fissano le alette. Rimuovere i pezzi di organo rimanenti e lavarli una volta.
Con l'aggiunta di un nuovo tampone HL 3.1, la larva è ora pronta per essere fissata con formaldeide appena fatta diluita al 3,5% in un XPBS immergere completamente le larve e il fissativo e attendere 25 minuti. Al termine del periodo di fissazione, lavare le larve due volte con tampone HL 3.1 per tre minuti. Rimuovere con cautela i perni, trasferire le larve in provette da 1,5 mil contenenti un XPBS, se necessario.
Le larve possono essere conservate per un massimo di due giorni a quattro gradi Celsius. Per risultati ottimali, utilizzare immediatamente le larve sezionate. Ci sono diversi componenti chiave per una larva di drosofila sezionata correttamente.
Innanzitutto, fai attenzione a non danneggiare i muscoli, in particolare sei, sette e quattro. In secondo luogo, l'animale deve essere adeguatamente disteso. In caso contrario, la giunzione neuromuscolare potrebbe non essere accessibile o distinguibile.
Qui si può vedere una larva sezionata correttamente. L'NMJ è chiaramente visibile e il sistema è ora pronto per gli esperimenti. Ti abbiamo appena mostrato come sezionare la larva esofaga per studiare la giunzione neuromuscolare.
Quando si esegue questa procedura, è importante portare i muscoli intatti. Se i muscoli sono danneggiati, non ci saranno giunzioni neuromuscolari da studiare. Quindi questo è tutto.
Grazie per aver guardato e buona fortuna con i tuoi esperimenti.
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Questo protocollo illustra come dissezionare larve di Drosophila in preparazione per l'immunohistochimica e/o l'analisi di imaging della giunzione neuromuscolare. La procedura prevede un'attenta posizione dei perni e l'uso di forbici e pinzette per preparare le larve ad ulteriori analisi.
La giunzione neuromuscolare (NMJ) della larva di Drosophila rappresenta un modello geneticamente accessibile per lo studio dello sviluppo sinaptico e della plasticità, offrendo un'elevata accessibilità e risoluzione a livello cellulare singolo. Questo protocollo di dissezione consente la preparazione riproducibile della NMJ per applicazioni successive come l'analisi di immagini, l'immunohistochimica e l'elettrofisiologia, sostenendo la validazione degli obiettivi e la riduzione del rischio meccanicistico nella fase iniziale della scoperta. Fornendo un metodo standardizzato per isolare e visualizzare le strutture sinaptiche, la tecnica aumenta la fiducia predittiva nella valutazione degli obiettivi neurobiologici e nella chiarificazione dei percorsi.
Il flusso di lavoro di dissezione si integra nelle fasi iniziali della scoperta permettendo la verifica di ipotesi, prosegue con l'identificazione di composti promettenti attraverso fenotipi sinaptici quantificabili e supporta la validazione preclinica mediante screening fenotipici rilevanti per la malattia.