22 febbraio 2010
Tessuti vegetali, tra cui floema e xilema di pino loblolly ( Pinus taeda L.), contengono alti livelli di fenoli e polisaccaridi che interferiscono con la purificazione di RNA. Questa presentazione discute le tecniche per la raccolta del campo coltivato tessuti e l'isolamento di RNA di qualità sufficiente per microarray e analisi genomiche di altri.
Quanto segue è stato prodotto da ricercatori dell'Università della Georgia e della Warnell School of Forestry and Natural Resources. Questo video dimostrativo descrive il prelievo dei tessuti xilematici e floematici e l'isolamento successivo dell'RNA da Pinus Teta, comunemente noto come pino loblolly, che è la specie di conifera più importante per la produzione di prodotti forestali negli Stati Uniti. Una volta abbattuto l'albero, in questo caso un albero di 40 anni, il fusto principale viene tagliato in sezioni di circa 50 centimetri di lunghezza.
Il tronco viene quindi inciso longitudinalmente in diversi punti con la motosega per facilitare la rimozione della corteccia. Utilizzando un martello e uno scalpello per legno, si solleva la corteccia finché non può essere staccata a sezioni. Successivamente, il tessuto fluido viene rimosso manualmente, prelevato dall'interno delle sezioni di corteccia e immediatamente immerso in azoto liquido.
Dopo aver rimosso la corteccia, lo strato sottile di xilema secondario può essere raccolto raschiando la superficie del fusto con una lametta a taglio singolo. Il tessuto xilematico acquoso viene immediatamente posto in azoto liquido. In questo campionamento, abbiamo inoltre raccolto campioni di legno reattivo, comunemente indicati come legno di compressione e legno opposto, prima di tagliare i rami dal fusto principale.
L'orientamento del ramo viene innanzitutto segnato con vernice spray in modo da identificare le aree contenenti i due tipi di tessuto: legno opposto nella parte superiore del ramo e legno di compressione nella parte inferiore. Durante la rimozione della corteccia, i rami vengono inizialmente incisi con una motosega lungo linee che delimitano il legno di compressione, il legno opposto e la zona di rimozione della corteccia, operazione eseguita come per i tronconi del fusto principale, fatta eccezione per il fatto che viene rimossa soltanto la corteccia nella regione corrispondente al tipo di reazione.
Il legno raccolto viene rimosso in qualsiasi momento. È tipicamente più difficile rimuovere ampie sezioni di corteccia da questi rami più piccoli. I campioni di legno di reazione del xilema secondario vengono raccolti nello stesso modo del xilema secondario normale, raschiando con la lametta e immergendo immediatamente in azoto liquido.
Notare il colore bruno rossastro caratteristico del legno di compressione. È importante sottolineare che il prelievo e la lavorazione di numerosi campioni da un albero di grandi dimensioni richiedono diverse persone, ognuna impegnata in un compito specifico, in modo che tutti i tipi di tessuto vengano raccolti contemporaneamente per ridurre al minimo la degradazione dell'RNA; i campioni congelati e l'azoto liquido vengono successivamente trasferiti in sacchetti di stoccaggio etichettati e posti su ghiaccio secco per il trasporto in laboratorio. Il nostro primo passo consiste nel polverizzare il tessuto utilizzando un mulino criogenico modello 6850 Specs; rispetto alla macinazione con mortaio e pestello, questo passaggio aumenta in modo significativo i rendimenti di estrazione dell'RNA per i campioni di tessuto legnoso, mantenendo i campioni freddi con azoto liquido.
Il tessuto viene inizialmente spezzettato manualmente e posto nella camera del campione. La camera viene inserita nel portacampioni e bloccata in posizione, quindi il campione viene macinato per due minuti. Il prodotto finale ha la consistenza di una polvere grossolana.
Il protocollo di estrazione dell'RNA è un processo che richiede due giorni. Nel primo giorno, 2,5 grammi di tessuto congelato vengono aggiunti al tampone per l'estrazione dell'RNA riscaldato a 65 gradi Celsius. Il campione viene agitato vigorosamente per favorire la miscelazione, quindi viene aggiunto un volume uguale di cloroformio e il campione viene nuovamente mescolato mediante inversione delicata.
Il campione viene quindi posizionato su una ruota rotante per cinque minuti. Successivamente, il campione viene trasferito in provette in teflon Oakridge ad alta velocità e centrifugato in un rotore SS 34 a 12.000 giri al minuto per cinque minuti. La frazione acquosa superiore viene estratta in una provetta pulita e viene aggiunto un volume pari alla metà di cloroformio.
Il campione viene vorticosato per un minuto e quindi nuovamente posto sulla ruota rotante per cinque minuti. Dopo una seconda centrifugazione, la frazione acquosa viene nuovamente estratta in una provetta in polipropilene ad alta velocità da 50 ml e centrifugata a 10.000 giri/min per 20 minuti. Per rimuovere eventuali particelle residue, il campione viene travasato in una provetta Falcon da 50 ml e viene aggiunto un quarto del volume di cloruro di litio 10 molare al campione.
Il campione viene mescolato agitandolo e posto a quattro gradi Celsius durante la notte. Il secondo giorno, il campione precipitato con cloruro di litio viene prima centrifugato a 11.000 giri al minuto per 30 minuti a quattro gradi Celsius.
Il surnatante viene versato e scartato, e i tubi vengono capovolti su salviette chimiche per un minuto. Per rimuovere ogni eccesso di liquido, il pellet di RNA, che dovrebbe essere visibile, viene risospeso in 800 microlitri di tampone SSTE caldo, pre-riscaldato a 65 gradi Celsius. Assicurarsi di aspirare e dispensare più volte e lungo tutti i margini del pellet per garantire che venga completamente solubilizzato.
Successivamente, trasferire l'RNA risospeso in una microprovetta priva di RNA da due mil e oltre. Riscaldare il campione per uno o due minuti in un bagno d'acqua a 65 gradi Celsius, seguito da vortexaggio per assicurare che il campione sia completamente risospeso. Questa procedura può essere ripetuta se necessario.
Ora, aggiungere un volume uguale di fenolo cloroformico tamponato. Vortexare il campione per 15-20 secondi e centrifugare a 14.000 giri/min per tre minuti. La frazione acquosa viene trasferita in un nuovo tubo microcentrifuga e vi si aggiunge un volume uguale di isopropanolo.
Il campione viene vortexato e microfuso come nell'estrazione precedente. Per la fase finale di estrazione organica, i tubi con gel bloccato vengono prima microfusi a 11.000 giri/min per due minuti.
Successivamente, il campione di RNA ottenuto dall'estrazione precedente viene aggiunto al gel con blocco di fase, seguito da un volume pari alla metà di cloroformio, e i due componenti vengono mescolati delicatamente mediante pipettaggio. Il campione viene quindi centrifugato a 11.000 giri al minuto per cinque minuti, e il campione acquoso di RNA viene trasferito in un nuovo tubo microcentrifuga Ambion privo di RNAasi. Il passaggio successivo consiste in una semplice precipitazione dell'RNA, aggiungendo al campione un decimo del volume di acetato di sodio 3 M a pH 4,8 e due volumi di etanolo al 100%.
Il campione viene vortexato, posto brevemente in un congelatore a meno 80 gradi Celsius per 30 minuti e quindi centrifugato per 30 minuti a quattro gradi Celsius. Il soprannatante viene aspirato con attenzione e il piccolo pellet bianco viene lavato con un millilitro di etanolo al 70% freddo di ghiaccio, quindi si aspira e si ripete il lavaggio con etanolo dopo l'ultima aspirazione. L'etanolo residuo viene fatto evaporare lasciando i tubi aperti in banco per cinque minuti.
I pellet di RNA vengono risospesi in 100 microlitri di acqua DEPC e risospesi mediante vortexaggio e riscaldamento a 65 gradi. Questa procedura può essere ripetuta se necessario. Viene determinata la concentrazione del campione.
Si calcolano i rapporti spettrofotometricamente e 2 62 80 e 2 62 30 per stimare il grado di contaminazione da proteine e carboidrati nel campione. L'elettroforesi su gel 1%AGROS viene utilizzata per stimare qualitativamente la qualità del campione, la contaminazione da DNA genomico e la degradazione dell'RNA. L'integrità di campioni critici viene valutata ulteriormente mediante un bioanalizzatore Agilent 2100 per determinare i rapporti ribosomiali 28 18 s e un numero di integrità dell'RNA. Grazie per aver guardato il nostro video sul prelievo di campioni di tessuto e sull'isolamento di RNA totale da pino loblolly.
I seguenti individui sono responsabili della ripresa e della produzione di questo video formativo.
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Questa presentazione tratta del reperimento dei tessuti xilematici e floematici del pino loblolly (Pinus taeda) e della successiva isolazione dell'RNA. Le tecniche descritte mirano a superare le difficoltà create dagli elevati livelli di fenoli e polisaccaridi che interferiscono con la purificazione dell'RNA.
L'isolamento di RNA di alta qualità da tessuti di conifere, come il pino marittimo, è fondamentale per consentire analisi genomiche e trascrittomique affidabili nella ricerca e sviluppo di biotecnologie vegetali. Superare le sfide poste da contaminanti fenolici e polisaccaridici ha un impatto diretto sulla fiducia predittiva dei saggi molecolari a valle e supporta una valida conferma degli obiettivi nei flussi di lavoro di biotecnologia forestale e agricola. Questo protocollo migliorato aumenta la riproducibilità e la scalabilità dei flussi di lavoro basati sull'RNA per sistemi vegetali complessi.
Questo protocollo di isolamento dell'RNA si integra nell'interfaccia tra il prelievo di campioni sul campo e lo sviluppo di saggi molecolari, collegando la fase iniziale di scoperta con analisi genomiche successive.