Name: Indagare tessuti e risposte fitocromo organo-specifici utilizzando FACS-Cell-assistita di tipo profili specifici di espressione in Arabidopsis thaliana /em (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2010-05-29T14:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 10 s
Description: Scopri come analizzare le risposte fitocromo specifiche per tessuto in Arabidopsis thaliana utilizzando la tecnica FACS. Questo metodo consente l'isolamento di protoplasti fluorescenti per profili di espressione genica mirati.

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Lavoro in laboratorio Montgomery sulle risposte fitocromo nelle piante è sostenuta dalla National Science Foundation (non concede. MCB-0919100 per BLM) e Scienze Chimiche, Scienze geologiche e Bioscienze Divisione, Ufficio di Basic Sciences Energy, Office of Science, US Department of energia (non concedere alcuna. DE FG02 91ER20021 a BLM). Ringraziamo Melissa Whitaker per l&#39;assistenza tecnica durante le riprese e la lettura critica del manoscritto, Stephanie Costigan sperimentale per l&#39;assistenza, il Dott. Luigi Re di assistenza sviluppare e ottimizzare le Fluorescence-Activated cella ordinamento protocolli per l&#39;ordinamento di protoplasti di Arabidopsis e il Dr. Telaio Melinda per assistenza confocale microscopia. Ringraziamo Marlene Cameron per l&#39;assistenza di progettazione grafica e Bird Karen per l&#39;assistenza editoriale.

1. Crescita delle piante <ol><li> Confermato UAS-BVR GAL4 X-GFP linea trappola enhancer isolato come descritto 4 (per sintesi vedi fig. 1) e le linee di wild-type o parentale vengono seminate sul terreno, ovvero ~ 2000 semi sterilizzati per riga. </li><li> Le piante sono coltivate per 5 settimane in terra sotto illuminazione bianca di 100 μmolm -2 s -1 a 22 ° C e 70% di umidità. </li></ol> 2. Foglia di protoplasti di isolamento (adattato da Denecke e Vitale 9) <ol><li> Per isolare protoplasti, preparare TEX buffer. Per buffer di 1 litro TEX, pesare i seguenti componenti: 3,1 g Gamborg di sali B5, 0,5 g di 2 - (N-morfolino) etano acido (MES, 2,56 mM), 0,75 diidrato g di calcio cloruro (CaCl 2 .2 H 2 O, 6,75 mM), 0,25 g di nitrato di ammonio (NH 4 NO 3, 3.12 mM), 136,9 g di saccarosio (0.4M). Sciogliere i componenti completamente in ~ 900 ml di acqua deionizzata, acqua distillata (DDH 2 O) e portare il pH a 5,7 con 1 M KOH. Portare il volume finale a 1 litro e sterilizzare con filtro da 0,2 micron per bottiglie con filtro collegato ad una pompa a vuoto. </li><li> Raccogliere verde, foglie di piante sane (~ 250 ml di foglie poco compresso in un bicchiere) e sciacquare con ~ 40 ml DDH 2 O 4 volte, seguita da risciacquo per due volte con sterili DDH 2 O. Usando un bisturi # 20, foglie tagliate a striscioline e si dividono equamente in due tessuti 50 ml, tubi di plastica sterile. Preparare 1x miscela digestione foglia aggiungendo 5 ml aliquota di 10x soluzione madre digestione foglia (10x digestione soluzione foglia magazzino: sciogliere 2% w / v Macerozyme R-10, 4% w / v Cellulase "Onozuka" R-10 nel TEX buffer, sterilizzare con filtro 0,2 micron filtro e blocco 5 aliquote ml a -80 ° C) a 45 ml di tampone fresco TEX. Aggiungi ~ 25 ml di 1x mix digestione foglia per tubo da 50 ml per coprire tutto il tessuto fogliare. </li><li> Vuoto infiltrarsi nel tessuto di foglie miscela digestione in tubi aperti per 1 ora a temperatura ambiente utilizzando un essiccatore a vuoto collegata ad una pompa d'acqua seguita da 3-ore di incubazione a temperatura ambiente su una sedia a dondolo agitando delicatamente. Tubi ricoperto con foglia in tessuto misto 1x digestione foglia sono tenuti avvolti in carta stagnola durante questo processo per evitare l'esposizione alla luce. </li><li> Dopo 3 ore, aumentare la velocità rocker per circa 2 minuti per rilasciare protoplasti. Filtrare la sospensione greggio protoplasti attraverso due strati di telo sterile per rimuovere i detriti e raccogliere il filtrato in un bicchiere di vetro sterile. Filtrare il filtrato attraverso una sterile da 100 micron mesh di nylon in una piastra di Petri sterile. Raccogliere il flusso attraverso e trasferirlo ad un nuovo sterile tubo da 50 ml. Usa circa 15-20 ml di tampone fresco TEX a lavare i piastra di Petri sterile e raccogliere qualsiasi protoplasti aderire alla superficie. </li><li> Centrifugare il flusso attraverso usando un rotore a rotazione 100xg a 10 ° C per 15 minuti (6 accelerazione, decelerazione 0). </li><li> Rimuovere ~ 25 - 30 ml di liquido al di sotto dello strato protoplasti fluttuante, che contiene residui e pellet, con una sterile 9 "pipetta Pasteur di vetro collegata ad una pompa peristaltica senza disturbare il livello fluttuante protoplasti e lasciando ~ 10-15 ml. </li><li> Aggiungi nuovo tampone TEX per un volume finale di 40 ml, mentre delicatamente risospendere l'protoplasti. </li><li> Ripetere i passaggi 2,5-2,7 due volte per rimuovere il più possibile di detriti cellulari. Il tempo di centrifugazione è ridotto a 10 minuti nella prima ripetizione ed a 5 minuti nella ripetizione finale. </li><li> Aspirare protoplasti galleggiante con un taglio, 1 pipetta sterile trasferire ml in un nuovo tubo 15 ml. Procedere direttamente alla cernita o conservare al buio per un massimo di 2 ore a 4 ° C fino ordinamento. </li></ol> 3. Ordinamento protoplasti da Fluorescence-Activated ordinamento Cell (FACS) <ol><li> Prima di smistamento, esaminare protoplasti da microscopia confocale a scansione laser (CLSM) utilizzando un laser a 488-nm per l'eccitazione per confermare l'integrità protoplasti e la presenza di fluorescenza GFP in piscina protoplasti. Detriti minimo è necessario per evitare l'intasamento l'ordinamento FACS ugello. </li><li> Protoplasti sorta isolato in TEX tampone tramite FACS (BD FACSVantage SE, BD Biosciences) con un 200-micron ugello su una testa tipo macro a tassi di eventi tra 6.000 e 15.000, con una pressione del sistema di circa 9 psi a seguito di un adeguato protocollo 10. </li><li> Wild-type non GFP protoplasti vengono utilizzati per determinare le soglie di autofluorescenza. </li><li> Per raccogliere GFP-positive protoplasti, le cellule utilizzando un tipo raffreddato ad aria, argon laser (Spectra Physics Modello 177, Newport Corporation, Irvine, CA), gestito a 100 mW a 488-nm linea argon per identificare GFP fluorescenza mediante una band 530/30 filtro passa. </li><li> Dopo la raccolta di GFP-positive protoplasti, esaminare protoplasti ordinati per CLSM come descritto al punto 3.1. </li><li> Estrarre l'RNA totale da protoplasti ordinati utilizzando un impianto di Qiagen RNeasy Mini kit. cDNA possono quindi essere pronti per l'ibridazione, come descritto nella Affymetrix GeneChip Expressione manuale analisi tecnica e poi ibridato a ATH1 Arabidopsis array Affymetrix intero genoma. </li></ol> Rappresentante Risultati Abbiamo rilevato un numero significativo di cellule GFP-positive nel canale GFP da FACS (Fig. 2). Nei test di ottimizzazione usando GFP enhancer-trap genitori, la GFP che esprimono costitutivamente linea, J0571, visualizzati ~ 17% al 24% GFP-positive protoplasti, mentre la linea con l'espressione vascolare e cutaneo, J1071, aveva ~ 1,4% GFP-positive protoplasti (Tabella 1). Ordinamento di 3 x 500 microlitri (~ 1,5 ml di sospensione totale di protoplasti) di J0571 protoplasti per 1 ora ha dato ~ 100.000 GFP-positive protoplasti. Ordinamento di 3 x 500 microlitri (~ 1,5 ml sospensione di protoplasti totale) di J1071 protoplasti per 1,5 h dato ~ 3.000 GFP-positive protoplasti. Immagini confocale indicato un rendimento molto elevato di protoplasti per campioni sia J0571 e J1071 prima di ordinare è stata effettuata (Fig. 3C e 3E), e le frazioni ordinati conteneva solo luminoso fluorescente GFP-protoplasti (Fig. 3G e dati non riportati). Questa scoperta conferma che intatti GFP-positive protoplasti possono essere ordinati tramite FACS. La non-GFP protoplasti possono anche essere ordinati e raccolti in un canale separato. La non-GFP protoplasti servire come controllo negativo ideale per analisi microarray successive per rilevare i cambiamenti specifici nell'espressione genica con la riduzione dei livelli holophytochrome. Estrazione di RNA da protoplasti isolati (1 ml) RNA produce in quantità sufficiente per il rilevamento da parte fluorospectrometry (Fig. 4). Isolato l'RNA è stata valutata utilizzando uno strumento NanoDrop (NanoDrop 1000, Thermo Scientific) e quantificato NanoDrop 3.7.1 del software quantificazione RNA. Rendimenti RNA da pre-ordinati C24 wild-type protoplasti o FACS-ordinati, GFP-positive protoplasti trappola enhancer superato il minimo di 20 ng necessaria per l'utilizzo in RNA di etichettatura per i test microarray (Tabella 2). <table border="1" cellspacing="0" cellpadding="0"><tbody><tr><td> Enhancer Trappola di linea </td><td> % Di GFP-positive protoplasti </td><td> Numero di protoplasti GFP ordinati </td></tr><tr><td> J0571 </td><td> 17,18% ~ 24,06% </td><td> 26.400 ~ 36.000 </td></tr><tr><td> J1071 </td><td> ~ 1,43% </td><td> 1000 ~ 1300 </td></tr></tbody></table> Tabella 1. Percentuale di GFP-positive protoplasti da due linee trappola potenziatore prima selezione e il numero di GFP-positive protoplasti raccolti eseguendo 500 microlitri di sospensione di protoplasti attraverso l'Ordine fluorescenza cellulare attivato (FACSVantage, BD). <table border="1" cellspacing="0" cellpadding="0"><tbody><tr><td> Impianti di linea </td><td> RNA rendimento (ng) </td></tr><tr><td> C24 WT </td><td> 12486,5 </td></tr><tr><td> J0571 </td><td> 60 </td></tr><tr><td> J1071 </td><td> 71,5 </td></tr></tbody></table> Tabella 2. Resa dall'isolamento RNA da protoplasti. L'RNA è stato isolato da pre-ordinati C24 wild-type o ordinati GFP-positive protoplasti da due linee trappola potenziatore e quantificati. <img src="/files/ftp_upload/1925/1925fig1.jpg" alt="Figura 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 1"> Figura 1. GAL4 enhancer-trap a base di induzione della biliverdina reduttasi (BVR) espressione in piante transgeniche di Arabidopsis thaliana. (A). Un individuo selezionato da una libreria di GAL4 trappola a base di linee enhancer, che contengono un GAL4-reattiva gene marcatore GFP, può essere attraversata con una linea contenente un GAL4-reattiva gene bersaglio di indurre l'espressione del gene bersaglio in GAL4 contenenti cellule segnato fluorescenza di GFP. Sulla base di una figura del Dr. Jim Haseloff (http://www.plantsci.cam.ac.uk/Haseloff/geneControl/GAL4Frame.html). (B) Produzione di fitocromo cromoforo, phytochromobilin (PΦB) e holophytochrome in linee parentali. (C) Sinistra, Riduzione della biliverdina IXα (BV IXα) e PΦB da biliverdina reduttasi (BVR) attività di BR e PΦR, rispettivamente. Risultati dell'attività BVR a esaurimento delle PΦB e porta ad una riduzione nella produzione di fotoattivi holophytochrome. A destra, la reazione catalizzata da BVR è mostrato. <img src="/files/ftp_upload/1925/1925fig2.jpg" alt="Figura 2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 2"> Figura 2. Fluorescenza separazione delle cellule attivate (FACS) appezzamenti punto di acquisizione. Confronto di celle protoplasti di ordinamento per C24 di tipo selvatico (A), J0571 (B) e J1071 (C). (A) Acquisizione di dot plot non-C24 fluorescente GFP wild-type protoplasti eccitati da un 488-nm argon laser e utilizzato per determinare la soglia autofluorescenza. (B) e (C) appezzamenti dot acquisizione mostrano proporzioni di protoplasti che sono GFP positive in risposta ad eccitazione di un 488-nm laser. R3 cancelli ordinamento in B e C delimitano la GFP-positive obiettivi che sono stati ordinati per Fluorescence-Activated cell sorter (FACSVantage, BD) e raccolti. Canale rosso indica vALORI per autofluorescenza clorofilla da protoplasti e il canale verde indica valori di fluorescenza GFP. <img src="/files/ftp_upload/1925/1925fig3.jpg" alt="Figura 3" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 3"> Figura 3. Microscopia confocale di protoplasti pianta usata per l'ordinamento delle cellule. Confocale a scansione laser immagini di protoplasti prima (A, C, E) e dopo (G) ordinamento tramite fluorescenza-Activated cell sorter (FACS). B, D, F e H sono immagini DIC. Protoplasti di C24 wild-type (A, B), J1071 (C, D) e J0571 (E, F, G, H) sono mostrati. Immagini C, E e G si fondono immagini di fluorescenza GFP (BP 505 nm - 575 nm) e autofluorescenza (LP 650 nm) ottenuti da eccitazione con un 488-nm laser. Da A ad H sono nella media di 4 scansioni sott'olio 63x. Bar = 10 micron. <img src="/files/ftp_upload/1925/1925fig4.jpg" alt="Figura 4" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 4"> Figura 4. Quantificazione di RNA isolati da protoplasti da fluorospectrometry. RNA estratto da (A) tipo C24 selvatico, (B) J0571, e (C) J1071. A indica RNA per la pre-ordinati wild-type protoplasti. B e C indicare RNA da GFP-positive protoplasti ordinati per Fluorescence-Activated ordinamento Cell (FACS). RNA software quantificazione, NanoDrop 3.7.1, (NanoDrop 1000, Thermo Scientific).

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</ol>

Profili di espressione genica attraverso microarray (1) ha indicato che oltre il 30% dei geni in piantine di Arabidopsis sono regolati luce 11 e (2) ha identificato un vasto gruppo di geni che codificano le proteine ​​luce di trasduzione del segnale coinvolte nella cascata di segnalazione fitocromo 12, 13 . Tali esperimenti suggeriscono che la luce induce cambiamenti rapidi e lungo termine espressione genica. Ogni pool di fitocromi può controllare solo un sottoinsieme di risposte di sviluppo e di a...

<table><tbody><tr><td>Anticorpo anti-BVR</td><td>QED Bioscience Inc.</td><td>56257-100</td><td></td></tr><tr><td>Cellulasi &amp;#8220;Onozuka&amp;#8221; R-10</td><td>SERVA Electrophoresis</td><td>MSPC 0930</td><td></td></tr><tr><td>Miscela salina basale B5 di Gamborg&amp;rsquo;s</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>G5768</td><td></td></tr><tr><td>Macerozima R-10</td><td>SERVA Electrophoresis</td><td>PTC 001</td><td></td></tr><tr><td>MES, contenuto ridotto di umidità</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>M3671</td><td></td></tr><tr><td>Sali di Murashige e Skoog</td><td>Caisson Laboratories</td><td>74904</td><td></td></tr><tr><td>Phytablend</td><td>Caisson Laboratories</td><td>28302</td><td></td></tr><tr><td>RNeasy Plant Minikit</td><td>Qiagen</td><td>16419</td><td></td></tr></tbody></table>

indagare tessuti e risposte fitocromo organo-specifici utilizzando facs-cell-assistita di tipo profili specifici di espressione in arabidopsis thaliana</em

Investigating Tissue- and Organ-specific Phytochrome Responses using FACS-assisted Cell-type Specific Expression Profiling in Arabidopsis thaliana

Media luce una serie di processi evolutivi e adattativi per tutto il ciclo di vita di una pianta. Le piante utilizzano la luce di assorbimento delle molecole chiamate fotorecettori di senso e di adattarsi alla luce. Il rosso / lontano-rosso che assorbono la luce fotorecettori fitocromo sono stati studiati ampiamente. Fitocromi esistere come una famiglia di proteine ​​con funzioni diverse e sovrapposte in tutti i sistemi vegetali superiori in cui sono stati studiati<sup&gt; 1</sup&gt;. Fitocromo-mediata risposte luce, che vanno dalla germinazione del seme attraverso la fioritura e la senescenza, sono spesso localizzate a specifici tessuti vegetali o organi<sup&gt; 2</sup&gt;. Nonostante la scoperta e la spiegazione delle funzioni individuali e fitocromo in esubero mediante analisi mutazionale, report conclusivi su siti distinti photoperception e dei meccanismi molecolari di piscine localizzata di fitocromi che mediano le risposte fitocromo spazio-specifici sono limitati. Abbiamo progettato esperimenti basati su ipotesi che i siti specifici di photoperception fitocromo regolano tessuti e organi specifici aspetti della fotomorfogenesi, e che le piscine localizzato fitocromo impegnarsi distinti sottoinsiemi di geni bersaglio a valle in cellula-segnalazione cellulare. Abbiamo sviluppato un approccio biochimico per ridurre selettivamente fitocromi funzionale in un organo o tessuto-specifica all&#39;interno di piante transgeniche. I nostri studi si basano su un bipartito enhancer-trap approccio che si traduce in transattivazione dell&#39;espressione di un gene sotto il controllo della sequenza di attivazione a monte (UAS) elemento dal attivatore trascrizionale GAL4<sup&gt; 3</sup&gt;. La biliverdina reduttasi (<em&gt; BVR</em&gt; Gene) sotto il controllo delle scuole universitarie professionali è mantenuto in silenzio, in assenza di GAL4 transattivazione nella UAS-BVR genitore<sup&gt; 4</sup&gt;. Incroci genetici tra un UAS-BVR linea transgenica e un GAL4-GFP risultato trappola enhancer linea in un&#39;espressione specifica del<em&gt; BVR</emGene&gt; nelle cellule segnato da<em&gt; GFP</em&gt; Espressione<sup&gt; 4</sup&gt;. Accumulo BVR in Arabidopsis risultati piante in carenza cromoforo fitocromo<em&gt; In planta</em<sup&gt; 5-7</sup&gt;. Così, piante transgeniche che abbiamo prodotto mostra GAL4-dipendente l&#39;attivazione del<em&gt; BVR</em&gt; Gene, con conseguente inattivazione della biochimica fitocromo, così come GAL4-dipendente<em&gt; GFP</em&gt; Espressione. Fotobiologiche analisi genetiche e molecolari<em&gt; BVR</em&gt; Linee transgeniche stanno dando comprensione tessuto e organo-specifiche fitocromo-mediata risposte che sono state associate con siti corrispondenti di photoperception<sup&gt; 4, 7, 8</sup&gt;. Fluorescenza separazione delle cellule attivate (FACS) di GFP-positive, enhancer-trap-indotta<em&gt; BVR</em&gt; Che esprimono protoplasti impianto accoppiato con cellula-tipo-specifici profili di espressione genica attraverso l&#39;analisi microarray viene utilizzato per identificare i putativi geni target a valle coinvolti nella mediazione risposte fitocromo spazio-specifiche. Questa ricerca sta ampliando la nostra comprensione dei siti di percezione della luce, i meccanismi attraverso i quali diversi tessuti o organi cooperare in luce regolata la crescita delle piante e lo sviluppo, e avanzando la dissezione molecolare dei complessi fitocromo-mediata cellula-cellula cascate di segnalazione.

Le basi molecolari delle risposte fitocromo spazio-specifica è indagato con le piante transgeniche che presentano tessuti e carenze fitocromo organo-specifiche. L&#39;isolamento di cellule specifiche esporre indotte esaurimento fitocromo cromoforo da Fluorescence-Activated cella Ordinamento seguita da analisi di microarray viene utilizzata per identificare i geni coinvolti nello spazio-risposte specifiche fitocromo.

Indagare tessuti e risposte fitocromo organo-specifici utilizzando FACS-Cell-assistita di tipo profili specifici di espressione in Arabidopsis thaliana</em

La luce media una serie di processi evolutivi e adattivi durante l'intero ciclo vitale di una pianta. Le piante utilizzano molecole assorbenti la luce chiamate...

Per esaminare le risposte della fitocromina in specifici tipi cellulari vegetali. GAL 4G FP enhancer trap e linee transgeniche U-A-S-B-V-R vengono incrociate per produrre piante carenti di fitocromina. I protoplasti fogliari della progenie U-A-S-B-V-R incrociata con GA 4G FP vengono isolati dalle piante.Successivamente, i protoplasti vengono separati mediante FACS per isolare protoplasti GFP negativi e protoplasti GFP positivi in campioni separati; i protoplasti isolati vengono analizzati mediante microscopia confocale a scansione laser. Per confermare il recupero di protoplasti GFP positivi, l'RNA viene estratto dai protoplasti e analizzato in modo spettrale. Ciao, sono Sanka Pivar del laboratorio di BARDA Montgomery presso il Dipartimento di Ricerca sulle Piante del Laboratorio di Ricerca sulle Energie a Stato Libero della Michigan State University.Oggi vi mostreremo un procedimento per isolare protoplasti fogliari da una pianta ANA per l'analisi dell'espressione genica specifica per tipo cellulare mediante cell sorting assistito da fluorescenza. Utilizziamo questo procedimento nel nostro laboratorio per studiare risposte dipendenti dai fitocromi specifiche per tessuti e organi.

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Biologia

Un metodo per isolare specifici tipi cellulari da materiale vegetale è dimostrata. Questa tecnica utilizza le linee marcatore transgenici che esprimono proteine ​​fluorescenti in particolari tipi di cellule, cellulari dissociazione e fluorescenza separazione delle cellule attivate. Inoltre, una configurazione di crescita è stabilito qui che facilita il trattamento...

Fluorescenza separazione delle cellule attivate delle protoplasti impianto

Abbiamo sviluppato una tecnica per testare interazioni proteina-proteina in pianta. Una proteina fluorescente gialla (YFP) è divisa in due frammenti non si sovrappongono. Ogni frammento viene clonato in-frame ad un gene di interesse attraverso il sistema Gateway, consentendo l'espressione di proteine ​​di fusione. Ricostituzione del segnale YFP si verifica solo quando le proteine ​​interagiscono inchiesta.

Rilevamento delle interazioni proteiche in pianta utilizzando un gateway compatibile complementazione fluorescenza biomolecolare (BiFC) Sistema

Cella di analisi specifica di<em&gt; Arabidopsis</em&gt; Foglie usando fluorescenza activated cell sorting

Descriviamo un protocollo mediante diapositive da camera e media per immobilizzare cotiledoni di impianto per l'imaging confocale dell'epidermide più giorni di sviluppo, documentazione differenziazione stomatica. Proteine ​​fluoroforo-tag possono essere monitorati in modo dinamico attraverso l'espressione e la localizzazione subcellulare, aumentare la comprensione dei ruoli possibili durante la divisione cellulare e la differenziazione delle cellule-tipo.

A lungo termine, ad alta risoluzione confocale Lapse Imaging Tempo di<em&gt; Cotyledon Arabidopsis</emEpidermide&gt; durante la germinazione

Segnalazione Ca 2 + regola diversi processi biologici nelle piante. Qui vi presentiamo approcci per il monitoraggio di stress abiotico indotto Ca spaziale e temporale 2+ segnali nelle cellule e tessuti utilizzando le geneticamente codificati Ca 2 + indicatori aequorina o Case12 Arabidopsis.

Misurazione spaziale e temporale Ca 2 + Segnali in Arabidopsis Piante

Cromatina immunoprecipitazione è una tecnica potente per l'identificazione di DNA siti di Arabidopsis proteine ​​in vivo vincolante. Questa procedura include cromatina reticolazione e frammentazione, immunoprecipitazione con anticorpi selettivi contro la proteina di interesse, e l'analisi qPCR di DNA legato. Descriviamo un semplice saggio di ChIP ottimizzato per piante di Arabidopsis.

Immunoprecipitazione della cromatina Saggio per la identificazione di Arabidopsis interazioni proteina-DNA<em&gt; In Vivo</em

L'orologio circadiano regola circa un terzo del trascrittoma di Arabidopsis, ma la percentuale di geni che alimentano di nuovo nel cronometraggio rimane sconosciuto. Qui visualizziamo un metodo per valutare rapidamente fenotipi circadiani in qualsiasi linea mutante di Arabidopsis utilizzando immagini luminescenti di un reporter circadiano transitoriamente espresso in protoplasti.

Analisi Rapida di fenotipi circadiani in Arabidopsis protoplasti transfettate con un luminescenti Clock Reporter

Gibberellina percezione sensore 1 (GPS1) è il primo Förster risonanza energia basati su trasferimento biosensore per misurare i livelli cellulari di fitormoni gibberellina con un'alta risoluzione spazio-temporale. Questo protocollo segnala sul metodo per visualizzare e quantificare i livelli cellulari gibberellina utilizzando il biosensore codificato geneticamente nlsGPS1 in Arabidopsis ipocotili e punte delle radici.

Visualizzazione livelli gibberellina cellulare utilizzando l'energia di risonanza di Förster NlsGPS1 Transfer (FRET) biosensore

Segnaliamo un metodo semplice e versatile per l'esecuzione di live-imaging fluorescente di Arabidopsis thaliana foglie per un periodo prolungato di tempo. Usiamo una piante transgeniche di Arabidopsis che esprimono un gene reporter fluorescente sotto il controllo di un promotore di immunità-correlati come esempio per acquisire spatiotemporal comprensione delle risposte immunitarie pianta.

Un metodo Versatile per il montaggio di Arabidopsis lascia per l'Imaging di time-lapse videomicroscopia

Questo protocollo descrive la preparazione di campioni intatti dello strato cellulare dell'endosperma nei semi di Arabidopsis thaliana . Il metodo richiede solo le comuni attrezzature di laboratorio, come un ago per iniezione e una pinza di precisione, e consente l'imaging fluorescente ad alta risoluzione delle cellule dell'endosperma sia nei semi in via di sviluppo che in quelli maturi.

Preparazione del tessuto intatto per l'analisi microscopica dello strato cellulare dell'endosperma nei semi di Arabidopsis in via di sviluppo e maturi

Scopri come analizzare le risposte fitocromo specifiche per tessuto in Arabidopsis thaliana utilizzando la tecnica FACS. Questo metodo consente l'isolamento di protoplasti fluorescenti per profili di espressione genica mirati.

Indagare tessuti e risposte fitocromo organo-specifici utilizzando FACS-Cell-assistita di tipo profili specifici di espressione in Arabidopsis thaliana /em (Video) | JoVE Journal

Indagare tessuti e risposte fitocromo organo-specifici utilizzando FACS-Cell-assistita di tipo profili specifici di espressione in Arabidopsis thaliana

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