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Biologia
0 visualizzazioni • 3:34 min • April 30th, 2023
- Quando si visualizzano le goccioline lipidiche, gli organelli di stoccaggio intracellulare per i lipidi neutri, iniziano aggiungendo al campione una soluzione detergente, come quella contenente Triton X-100. Questo permeabilizzerà le cellule del verme. Quindi, fissare il campione nella concentrazione appropriata di isopropanolo, ad esempio il 40%.
Quindi, aggiungi il rosso del Nilo al campione e proteggilo dalla luce, poiché il colorante è sensibile alla luce. La fissazione consente al colorante di accedere alle goccioline lipidiche in tutto l'animale. Il rosso del Nilo è un colorante lipofilo il cui spettro di emissione della fluorescenza dipende dalla polarità dell'ambiente lipidico locale.
Se esposto a lipidi polari, come i fosfolipidi, lo spettro di emissione del rosso Nilo si trova nelle lunghezze d'onda rosse più elevate. Se esposto a lipidi neutri, come i triacilgliceroli e gli esteri sterolici nel nucleo neutro delle goccioline lipidiche, lo spettro di emissione del rosso Nilo si sposta verso le lunghezze d'onda più basse, quelle giallo-oro.
Pertanto, utilizzare il canale verde di un microscopio a fluorescenza, che raccoglierà le emissioni di lunghezza d'onda giallo-oro, per visualizzare la colorazione con rosso Nilo delle goccioline lipidiche in tutto l'animale. Nel protocollo di esempio, vedremo una procedura di colorazione del rosso del Nilo e l'imaging di goccioline lipidiche in campioni fissati.
- Per eseguire la colorazione lipidica del rosso del Nilo, placcare i vermi sul terreno di crescita dei nematodi, o NGM, seminare con il tronco tardivo OP50 E. coli, e far crescere i vermi a 20 gradi Celsius fino allo stadio L4 iniziale. Lavare i vermi con 1 millilitro di soluzione PBST e trasferire la sospensione di vermi in un tubo per microfughe da 1,5 millilitri.
Centrifugare i vermi a 560 volte la gravità per un minuto, quindi rimuovere il surnatante e ripetere il lavaggio PBST fino a quando l'E. coli non viene eliminato dalla sospensione. Successivamente, al pellet di verme, aggiungere 100 microlitri di isopropanolo al 40%, o al 60% per la colorazione ORO, e incubare il campione a temperatura ambiente per tre minuti.
- L'aggiunta di isopropanolo è fondamentale per una corretta permeabilizzazione dei vermi prima della colorazione.
- Centrifugare i vermi a 560 volte la gravità per un minuto e rimuovere il surnatante senza rompere il pellet del verme.
- È importante ridurre al minimo l'esposizione alla luce durante le fasi di centrifugazione.
- Ora, mentre si è al buio, aggiungere 600 microlitri di soluzione di lavoro NR precedentemente preparata a ciascun campione. Capovolgere le provette tre volte e mescolare completamente le viti senza fine e la soluzione. Quindi incubare il campione al buio a temperatura ambiente per due ore.
Dopo l'incubazione, centrifugare i vermi e rimuovere il surnatante. Quindi aggiungere 600 microlitri di PBST e incubare i campioni al buio per 30 minuti per rimuovere la colorazione NR in eccesso. Dopo aver centrifugato nuovamente i campioni come prima, rimuovere tutti i microlitri di surnatante tranne circa 50 microlitri.
In questo articolo viene descritto un protocollo per la visualizzazione delle goccioline lipidiche nei nematodi mediante colorazione con Rosso Nilo. Il metodo prevede la permeabilizzazione delle cellule, la fissazione dei campioni e l'uso della microscopia a fluorescenza per osservare le goccioline lipidiche.
La colorazione con Rosso Nilo permette la visualizzazione delle goccioline lipidiche in organismi modello, supportando la validazione degli obiettivi nella ricerca sulle malattie metaboliche. Il metodo fornisce dati quantitativi sulla distribuzione dei lipidi che aiutano a ridurre i rischi meccanicistici delle ipotesi terapeutiche. Questo approccio aumenta la fiducia predittiva nella fase iniziale di scoperta, collegando le variazioni fenotipiche dei lipidi alla modulazione del percorso metabolico.
Il metodo si integra nei flussi di lavoro della scoperta precoce fornendo letture fenotipiche dei lipidi che informano le fasi di validazione dell'obiettivo e di identificazione dei composti promettenti.
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Ultimo aggiornamento: 29 agosto 2026