Microiniezione di embrioni: una tecnica per somministrare un composto nel tuorlo di pesce zebra

0 visualizzazioni3:58 min • April 30th, 2023

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- Metti due pesci femmina e due maschi in una vasca di riproduzione divisa una notte prima dell'iniezione. La mattina seguente, togliete il divisorio e lasciate che i pesci si riproducano fino a quando non osserverete le uova sul fondo della vasca. Raccogli le uova e lavale con un terreno E3 contenente blu di metilene, un fungicida. Osserva le uova al microscopio e rimuovi le uova non fecondate. Le uova non fecondate hanno una membrana del tuorlo chiara, mentre le uova fecondate hanno una membrana del tuorlo scura.

Tenere 10 embrioni in una capsula di Petri separata come controlli non iniettati. Utilizzando una pipetta di trasferimento, allineare gli embrioni nella vasca di una piastra per microiniezione a temperatura ambiente e posizionarla al microscopio. Spingere delicatamente l'ago per microiniezione attraverso il corion nel tuorlo e iniettare lentamente un composto di interesse contenente un marcatore come il rosso fenolo. Il flusso citoplasmatico consente al composto di diffondersi nelle cellule embrionali.

Dopo l'iniezione, far crescere gli embrioni in terreno E3 con blu di metilene a 28 gradi Celsius. Continua a controllare la salute degli embrioni. Rimuovi gli embrioni morti o in sviluppo anomalo e cambia il terreno ogni giorno. Nel seguente protocollo, utilizzeremo la microiniezione per fornire una ribonucleoproteina, o complesso RNP, in embrioni di zebrafish.

- Per prima cosa, preparare i soggetti zebrafish per la riproduzione la notte prima di eseguire le iniezioni come descritto nel protocollo di testo. Quindi combina la proteina Cas9 e l'sgRNA in un rapporto di due a uno. Incubare la soluzione a temperatura ambiente per cinque minuti mentre il Cas9 e l'sgRNA formano un complesso ribonucleoproteico. Quindi aggiungere 0,5 microlitri di soluzioni di rosso fenolo al 2,5% in una quantità sufficiente di acqua priva di RNasi per ottenere un volume finale di cinque microlitri.

Per preparare l'ago per iniezione, utilizzare un estrattore per micropipette per estrarre un capillare di vetro da un millimetro. Quindi tagliare la punta dell'ago di vetro risultante con una lama di rasoio per ottenere un'apertura angolata. Posizionare l'ago in un micromanipolatore collegato a un microiniettore. Utilizzando un microscopio ottico, regolare la pressione di iniezione fino a quando l'ago non inietta costantemente un nanolitro di soluzione nella capsula di Petri.

- Prima di eseguire la microiniezione di embrioni, esercitarsi a preparare gli aghi e iniettare gli embrioni di controllo utilizzando una soluzione di solo colorante e registrare la sopravvivenza dopo 24 ore di sviluppo. Dovrebbe essere in grado di ottenere una sopravvivenza superiore al 90% rispetto a un controllo non iniettato.

- Successivamente, seleziona da 10 a 15 embrioni come popolazione di controllo e mettili in una capsula di Petri etichettata separata. Utilizzando una pipetta di trasferimento, allineare con cura gli embrioni rimanenti su una piastra di iniezione a temperatura ambiente. Sotto un microscopio da dissezione, iniettare un nanolitro di soluzione nel sacco vitellino di ciascun embrione. Quindi rimetti gli embrioni iniettati in una capsula di Petri etichettata e coprili con terreno 1X E3 con blu di metilene. Metti gli embrioni iniettati in un'incubatrice a 28 gradi Celsius per 24 ore. Quindi ispezionare gli embrioni iniettati per rimuovere gli individui morti o in sviluppo anomalo.

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Ultimo aggiornamento: 15 agosto 2026