Generazione di mammosfere primarie: una tecnica per determinare la potenza cellulare

0 visualizzazioni5:07 min • April 30th, 2023

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Una singola cellula staminale del cancro al seno dà origine a un gruppo di cellule chiamato mammosfera primaria. Per ottenerli, prima coltiva una linea cellulare di cancro al seno fino al 70% all'80% confluente, per garantire che le cellule siano nella loro fase di crescita. Aggiungere Tripsina-EDTA per staccare le cellule dal pallone e aggiungere un terreno con siero per fermare l'azione della tripsina.

Ora, prendete le celle in una provetta e centrifugatele per ottenere il pellet cellulare. Risospendere il pellet nel terreno della mammosfera senza siero e far passare la sospensione attraverso un filtro a cappello cellulare, per ottenere una sospensione a singola cellula. Questa sospensione è costituita da cellule staminali, cellule progenitrici e cellule differenziate che mostrano diverse espressioni proteiche.

CD44 e CD24 sono proteine della superficie cellulare caratteristiche delle cellule staminali del cancro al seno. Sono positivi per l'espressione di CD44 e negativi per CD24. Isolare le cellule dalla sospensione cellulare utilizzando la fluorescenza o la selezione cellulare attivata magneticamente. Quindi, prendi un'aliquota e una colorazione blu ad tripano sulle cellule e calcola il numero di cellule vitali per millilitro utilizzando un vetrino dell'emocitometro per trovare la densità di semina.

Infine, seminare le cellule in una piastra aderente ultra bassa a sei pozzetti, in modo che le cellule rimangano sospese. Incubare la piastra per 5-10 giorni senza disturbare la piastra fino a quando le sfere non hanno un diametro di 40 micron. Nel seguente protocollo, genereremo mammosfere primarie da una linea cellulare di cancro al seno.

- Lavorando sotto una cappa di coltura sterile, iniziare questa procedura con cellule MCF7 o MDA-MB-231 che sono confluenti dal 70% all'80%. Aspirare il fluido dal pallone. Lavare le cellule due volte con PBS, quindi aggiungere Tripsina-EDTA e incubare per due-sei minuti. Dopo il distacco, estinguere aggiungendo un terreno mammoferico contenente il 10% di FBS.

Una volta che le cellule si sono staccate, trasferirle in una provetta da centrifuga conica da 15 millilitri e farla girare 200 volte g a temperatura ambiente per cinque minuti. Dopo questa centrifugazione, decantare il surnatante, quindi risospendere le cellule in mezzo mammostatico da uno a cinque millilitri. Pipettare su e giù 10 volte per rompere il pellet della cella.

Quindi, trasferire la sospensione cellulare in un filtro con tappo filtrante da 40 micron e raccogliere il flusso nel tubo collegato per ottenere una sospensione a cella singola. Pipettare un'aliquota di 20 microlitri di cellule risospese su un emocitometro e utilizzare un microscopio per esaminarla. Se si osservano gruppi di cellule come si vede qui, utilizzare una siringa per far uscire la sospensione dentro e fuori da un ago da 25 gauge una o due volte.

Una volta che le cellule sono state disperse in una singola sospensione cellulare come mostrato qui, procedere all'isolamento di sottogruppi cellulari CD44 positivi e CD24 negativi tramite smistamento cellulare attivato a fluorescenza o smistamento cellulare attivato magneticamente utilizzando la colonna LS per selezionare positivamente le cellule CD44 positive. Poiché le celle desiderate si attaccano alle pareti della colonna LS, scartare il flusso, quindi rimuovere le cellule dalla colonna, applicare cinque millilitri di tampone e applicare e premere lo stantuffo fornito con la colonna per eliminare le celle desiderate.

Successivamente, utilizzare una colonna LD per purificare ulteriormente la popolazione mediante selezione negativa. Qui, le cellule CD24 positive si attaccano alle colonne LD. Raccogli il flusso che contiene le cellule CD24 negative. Successivamente, utilizzando la citometria a flusso, confermare i fenotipi di tutte le cellule isolate. Utilizzando il metodo di esclusione del blu di tripano, calcolare la densità delle cellule vitali.

Dopo aver opportunamente diluito la sospensione cellulare, seminare ogni pozzetto di una piastra di attacco ultrabassa a sei pozzetti con 500-4.000 cellule per centimetro quadrato in 2 millilitri di terreno mammostatico completo. Incubare le piastre facendo attenzione a non disturbarle per 5-10 giorni fino a quando non si osservano le sfere. Continuare la coltura fino a quando le sfere non hanno raggiunto un diametro di almeno 40 micron ma non hanno ancora iniziato a diventare apoptotiche.

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Ultimo aggiornamento: 15 agosto 2026