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- Inizia con una sospensione di cellule leucemiche contenente la densità cellulare desiderata. Centrifugare e risospendere le cellule in un terreno di coltura contenente siero. L'aggiunta di siero favorisce la crescita continua delle cellule e il movimento delle cellule attraverso le diverse fasi del ciclo cellulare. Diluire le cellule in una soluzione di marcatura della bromodeossiuridina, o BrdU, e farle crescere in condizioni fisiologiche per la durata richiesta.
Le cellule in fase di sintesi o fase S assorbono BrdU, un analogo della timidina, che sostituisce la timidina durante il processo di replicazione del DNA. Centrifugare le cellule per rimuovere il BrdU in eccesso e risospendere le cellule in un terreno adatto. Trasferire le cellule in una piastra a pozzetti multipli. Consentire alle cellule di crescere in condizioni fisiologiche per diversi periodi di tempo.
In vari periodi di tempo, le cellule progrediscono attraverso il resto delle fasi S, G2, mitosi e G1 ed entrano nel ciclo cellulare successivo, consentendo la stima della proliferazione cellulare. Eseguire la colorazione degli anticorpi per marcare BrdU con l'anticorpo fluorocromo e misurare la proliferazione cellulare utilizzando la citometria a flusso.
All'interno del citometro a flusso, i fluorocromi assorbono l'energia laser e emettono fluorescenza. Il numero di cellule proliferanti è direttamente correlato alla fluorescenza osservata. Nel protocollo di esempio, dimostreremo la marcatura dell'impulso delle cellule di leucemia linfoblastica acuta.
- Questo protocollo utilizza la linea cellulare di leucemia linfoblastica acuta, NALM6, ma può essere applicato a qualsiasi linea cellulare non aderente. Mantenere le cellule NALM6 in fiasche di coltura T-75 in RPMI completo a 37 gradi Celsius in anidride carbonica al 5% nell'aria. Dopo aver raccolto le cellule ed eseguito un conteggio delle cellule, risospendere le cellule in RPMI completo a 2 volte 10 per 6 celle per millilitro.
Diluire le cellule 1 in 2 con BrdU Complete RPMI per produrre una concentrazione finale di cellule da 1 x 10 a 6 cellule per millilitro. Maneggiare BrdU con cura in quanto è un potenziale mutageno e teratogeno. Incubare a 37 gradi Celsius con il 5% di anidride carbonica per 45 minuti.
Quindi, diluire le cellule 1 su 10 con Complete RPMI. Centrifugare a 150 volte G per cinque minuti ed eliminare con cura tutto il surnatante. Risospendere le cellule in un piccolo volume di RPMI completo, eseguire un conteggio delle cellule e regolare la concentrazione delle cellule da 1 x 10 a 6 cellule per millilitro. Pipettare 1 millilitro di cellule in ciascun pozzetto di una piastra a 48 pozzetti.
Pipettare 1 millilitro di DPBS in tutti i pozzetti non occupati per ottenere risultati più riproducibili. Incubare a 37 gradi Celsius in anidride carbonica al 5% nell'aria per i punti temporali desiderati, a seconda di ciò che il disegno sperimentale mira a misurare. Al termine dell'incubazione, trasferire tutte le cellule in provette FACS.
Sciacquare ogni pozzetto in sequenza con volumi da 1 millilitro di PBS fino a un volume totale finale di 5 millilitri. Centrifugare a 150 volte G per cinque minuti e rimuovere con cura tutto il surnatante. Le cellule sono ora pronte per la colorazione, che deve essere eseguita immediatamente. Se è necessaria una colorazione superficiale, deve essere eseguita ora, prima del fissaggio.