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- I fattori di trascrizione sono proteine che si legano a un sito specifico del DNA per regolare l'espressione genica. Errori nei fattori di trascrizione alterano questa attività, portando a una sovraespressione dei geni, che causa il cancro. Per comprendere il ruolo dei fattori di trascrizione e della regolazione genica, possiamo eseguire il saggio di immunoprecipitazione della cromatina o CHIP, e il taglio della cromatina è un passo importante nel flusso di lavoro CHIP.
Per il taglio della cromatina, stabilizzare il complesso DNA-proteina aggiungendo formaldeide. La formaldeide lega le proteine alla sequenza di DNA associata formando legami covalenti. Successivamente, utilizzare un tampone di lisi adatto per lisare le cellule per rilasciare la cromatina contenente i complessi DNA-proteina reticolati e centrifugare. Tagliare la cromatina utilizzando l'enzima nucleasi micrococcica. Questo enzima scinde la cromatina tra i nucleosomi e digerisce le estremità libere del DNA. Centrifugare la miscela e raccogliere il surnatante.
Caricare il surnatante su gel di agarosio TBE per analizzare la dimensione appropriata dei frammenti di DNA. Applicare un campo elettrico attraverso il gel, che fa sì che il DNA della cromatina caricato negativamente si muova verso l'anodo. I frammenti più piccoli si spostano più in basso nel gel. La cromatina tranciata appare come una macchia nel gel. Nel seguente protocollo, taglieremo la cromatina di una linea cellulare di leucemia mieloide cronica utilizzando la sonicazione.
- Per iniziare, riempire un tubo da 1,5 millimetri con 1 millilitro di formaldeide al 37%. Quindi, riempire un'altra provetta da 1,5 millilitri con 1 millilitro di glicina molare da 1,25 molari e una provetta da 5 millilitri con 4 millilitri di PBS. Successivamente, dopo la stimolazione delle cellule, far girare le cellule secondo il protocollo di testo, risospendere le cellule in 500 microlitri di PBS e posizionare il tubo in una scatola piena di ghiaccio. Aggiungere il 13,5% di microlitri di formaldeide al 37% alle cellule e mescolare pipettando su e giù.
Quindi, incubare la sospensione a temperatura ambiente. Successivamente, aggiungere 57 microlitri di glicina molare da 1,25 per fermare la fissazione e lasciare incubare questa sospensione a temperatura ambiente per cinque minuti. Subito dopo il periodo di incubazione, porre le cellule sul ghiaccio e centrifugare le cellule a 500 volte g per cinque minuti a 4 gradi Celsius. Quindi aspirare il surnatante. Successivamente, lavare le cellule due volte con 1 millilitro di PBS ghiacciato a 200 volte g per cinque minuti a 4 gradi Celsius e rimuovere il surnatante. Risospendere il pellet cellulare in 5 millilitri di tampone di lisi-1 pipettando su e giù.
Quindi, mettere i campioni sul ghiaccio e incubarli agitandoli per 10 minuti. Successivamente, centrifugare le provette a 500 volte g per cinque minuti a 4 gradi Celsius. Quindi, utilizzare la pipetta per rimuovere con cura il surnatante. Omogeneizzare le cellule in 5 millilitri di tampone di lisi-2 e pipettare su e giù per mescolare. Quindi, incubare le cellule su ghiaccio per 10 minuti agitandole. Trascorso il periodo di incubazione, centrifugare le provette a 500 volte g per cinque minuti a 4 gradi Celsius e rimuovere con cura il surnatante.
Quindi, risospendere il pellet cellulare nel tampone di taglio-1 con l'inibitore della proteasi 1X. Quindi, incubare la sospensione cellulare su ghiaccio per 10 minuti. Trasferire 140 microlitri della sospensione cellulare nelle provette del sonicatore, facendo attenzione a evitare la formazione di bolle d'aria. Posizionare i tubi in un ultrasuonatore focalizzato a 7 gradi Celsius e tagliare per dieci-sette minuti e mezzo. Trasferire la sospensione cellulare in provette da 1,5 millilitri. Centrifugare i campioni a 15.700 volte g per 10 minuti a 4 gradi Celsius e raccogliere il surnatante in una nuova provetta.