Name: Microdissezione dei tessuti oculari Zebrafish embrionali (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2010-06-27T23:34:00.000+00:00
Duration: 9 min 1 s
Description: Impara la microdissezione della retina e dell'epitelio pigmentato retinico da embrioni di Danio rerio. Questa tecnica consente di isolare tessuti intatti per studiare l'espressione genica specifica dei tessuti oculari.

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Questo lavoro è sostenuto da un fondo di avvio del Dipartimento di Scienze Biologiche presso la Purdue University.

Parte 1: Preparativi prima di microdissezione <ol><li> Soluzioni <ol class="lalpha"><li> E3 media 4 (5 mM NaCl, 0,17 mM KCl, 0,33 mM CaCl 2 e 0,33 mM MgSO 4). </li><li> Soluzione di Ringer 1, 5 (116 mM NaCl, 2.9 mM KCl, 1,8 mM CaCl 2, 5 mM HEPES, pH7.2), filtro sterilizzato. </li><li> 5N NaOH. </li></ol></li><li> Attacco chimico di aghi di tungsteno <ol class="lalpha"><li> Fissare un piccolo becher contenente NaOH 5N su una piastra di Petri di argilla. </li><li> Fissare una graffetta sul lato del bicchiere, in modo che viene a contatto con la soluzione di NaOH. </li><li> Collegare l'elettrodo negativo di un alimentatore DC per la graffetta e l'elettrodo positivo ad una estremità di un pezzo breve (~ 2 cm) di filo di tungsteno. </li><li> Avvolgere l'altra estremità del filo di tungsteno con una palla di terracotta e tuffo tal fine nella soluzione di NaOH. </li><li> Aumentare la tensione di circa 3V e immergere il filo su e giù per la soluzione di NaOH fino a una velocità di incisione buona è raggiunto. Un ago in buona qualità di solito può essere inciso in 10 minuti. </li><li> Il filo di tungsteno esposti alla soluzione diventerà gradualmente più sottili. Quando la palla cade fuori terra, dall'altra parte del filo che è ancora attaccato l'elettrodo positivo avrà una forma tagliente ago. </li><li> Sciacquare l'ago tagliente con la soluzione di Ringer o E3 per rimuovere i depositi di sale. </li><li> Applicare l'ago di un applicatore di legno con nastro adesivo o un porta aghi per una maggiore maneggevolezza. </li></ol></li><li> Piastre di coltura <ol class="lalpha"><li> Il Falcon 60 x 15 mm, piastre di coltura in polistirolo sono pronti da usare per microdissezione della retina. </li><li> Per dissezione RPE-attached retina, schiacciare due embrioni completamente in una piastra di coltura contenente la soluzione di Ringer per sbarazzarsi della adesività della superficie 30 minuti prima dissezione. Poco prima della dissezione, lavare la piastra a lungo con soluzione di Ringer fresco. </li></ol></li><li> Embrioni di raccolta e messa in scena <ol class="lalpha"><li> Zebrafish adulti sono mantenuti come descritto 4, 5. </li><li> Separare il pesce padre in vasche di allevamento statico a coppie da un divisore la sera prima di allevamento. </li><li> Rimuovere il divisore dopo la luce della stanza si accende la mattina successiva. Permettere ai genitori di attraversare a intervalli di 10 minuti ogni mezz'ora. Separare il pesce dopo ogni incrocio. </li><li> Mantenere gli embrioni raccolti da ogni incrocio in media E3 separatamente a 28 ° C. </li><li> Embrioni stadio da 10 a 12 Messaggio fecondazione ore (HPF) e restage immediatamente prima della dissezione in corrispondenza dei punti di tempo specifico, secondo i criteri stabiliti 1, 6. </li></ol></li></ol> Parte 2: Dissection - rimozione del cervello e l'esposizione agli occhi 1 <ul><li> Le procedure descritte in questa sezione sono comuni per dissezione retina (3A Parte) e RPE-attached retina (parte 3B). </li><li> Tutte le dissezioni fini sono fatto da un punta della pinza Dumont e assistito da un altro paio di Dumont pinze per il posizionamento del tessuto. Un inciso chimicamente l'ago di tungsteno può essere utilizzato per le manipolazioni più fine, se necessario. </li><li> Tutte le dissezioni fini sono eseguite con ingrandimento ~ 5-8x con un microscopio Olympus SZX16 dotata di un obiettivo 1X o equivalente. </li><li> Mantenere gli embrioni in media E3 in un banco incubatore a 28 ° C vicino al microscopio per un facile accesso embrione durante la dissezione. </li><li> La fase di microscopio viene riscaldato a 28 ° C da una piastra termica per minimizzare l'influenza delle fluttuazioni di temperatura sull'espressione genica. </li></ul><ol><li> Trasferimento di un embrione in uno stadio di sviluppo specifici per la soluzione di Ringer in un Falcon 60 X 15 mm Piastra cultura preparato come descritto nella parte 1 # 3. </li><li> Tagliare la testa con la parte anteriore del tronco velocemente dal corpo. </li><li> Perno la fine posteriore di questo tessuto su piastra di coltura con le pinze assistere. </li><li> Aprire la testa sul lato dorsale a partire dal fronte anteriore. </li><li> Togliere il cervello in modo che il lato mediale degli occhi è esposto ed è rivolto verso l'alto per ulteriori manipolazioni. </li></ol> Parte 3A: Retinal dissezione 1 <ol><li> Preparare l'embrione come descritto nella parte 2. </li><li> Spazzolare con cura la RPE esposta sul lato mediale del bulbo oculare che è rivolta verso l'alto dalla punta della pinza fino ad una piccola apertura per la retina è visto. </li><li> Continuare la spazzolatura e peeling azione fino alla parte mediale della retina è quasi tutta a vista. Evitare graffi e pugni la retina esposti. </li><li> Per rimuovere l'RPE laterale sulla retina che ora è rivolto verso il basso, l'approccio che e pennello con un angolo di circa 45 ° dalla superficie piastra di coltura. </li><li> Rimuovere la RPE che è collegato relativamente saldamente al serrata da appuntare la parte staccata del RPE al cPiastra ultura per la dissezione, quindi sollevare delicatamente la retina. </li><li> Stendere la retina sul fondo del piatto cultura per ripulire il RPE residuo. <ol class="lalpha"><li> Abbiamo notato che questa particolare piastra di polistirolo Falcon cultura ha una aderenza preferenziale di RPE per circa 20 minuti una volta che un embrione è schiacciato. Questa proprietà è utilizzata per la rimozione di residui di RPE. Tuttavia, le cellule della retina si attaccano alla superficie, in misura minore, che può essere ispezionato da vicino in alto ingrandimento. Bisogna trovare un equilibrio tra la completezza di rimozione RPE e l'integrità della retina. </li><li> La lente aderisce spesso alla piastra di coltura e si stacca dalla retina durante il processo di laminazione. Occasionalmente, è necessario staccare l'obiettivo da un ago di tungsteno inciso con una azione vorticosa sulla superficie della lente. </li></ol></li><li> Queste procedure possono rimuovere con successo RPE dalla retina senza compromettere l'integrità del tessuto. Questo è indicato da una buona morfologia complessiva (Figura 1B e B ') e istologia (Figura 1B "), freccia In particolare, la conservazione della matrice extracellulare tra lo strato dei fotorecettori e la RPE è eccezionalmente buono (Figura 1B."; confrontare con l'istologia dall'embrione suo complesso (Figura 1A ")). </li></ol> Parte 3B: RPE-attached retina dissezione 3 <ol><li> Preparare l'embrione come descritto nella parte 2. </li><li> Pin testa alla piastra di coltura per le pinze assistente. Sollevare lo sguardo dolcemente dal lato posteriore laterale e rotolare verso il lato anteriore. <ol class="lalpha"><li> La coroide presuntiva e il tessuto sclerale sulla parte esterna dello strato di RPE sono collegati strettamente relativamente alla pelle e può essere per lo più staccata tirando l'occhio con attenzione al lato anteriore. </li></ol></li><li> Rimuovere l'obiettivo con un ago di tungsteno dopo la parte laterale degli occhi è esposto e quando l'occhio è ancora attaccato alla pelle. </li><li> Queste procedure possono preservare con successo l'intero livello RPE con la retina. Coroide presuntiva e il tessuto sclerale può essere in gran parte rimosso (Figura 1C, C 'e C "). </li></ol> Parte 4: raccolta dei campioni del tessuto per il lavoro dell'RNA <ol><li> I campioni sezionato possono essere raccolti in TRIzol in un RNasi-free provetta da microcentrifuga per la caratterizzazione a valle RNA come descritto in precedenza 1. </li></ol> Rappresentante Risultati <img src="/files/ftp_upload/2028/2028fig1.jpg" alt="Figura 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 1"> Figura 1. (A) e laterale (A ') vista dorsale di una testa di pesce zebra larvale a 52 hpf prima della dissezione. (A ") la corrispondente sezione istologica della testa larvale in (A) e (A '). (B) e laterale (B') vista dorsale di una retina sezionato a 54 HPF. La superficie della retina era intatto da entrambi i laterali e vista dorsale. (B ") La sezione corrispondente istologica della retina sezionato in (B) e (B '). La struttura della retina e laminazione della retina era intatto. In particolare, la matrice extracellulare tra lo strato dei fotorecettori e RPE (A ", frecce) è stato ben conservato nella retina sezionato (B", frecce). (C) e laterale (C ') vista mediale di un sezionato RPE-attached retina a 52 HPF. RPE strato era intatto e continuo, che è stata indicata anche dalla sezione istologica del tessuto sezionato (C "). L'area bianca in C 'è il nervo ottico (freccia). Per istologia, campioni di tessuto sono stati raccolti e fissati in 4% paraformaldeide. Plastica inclusione e il sezionamento di questi campioni sono state eseguite come descritto 3. barra di scala = 50 micron.

<ol><li>Leung, Y. F., Dowling, J. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gene+expression+profiling+of+zebrafish+embryonic+retina%5BTitle%5D)+AND+%22Zebrafish%22%5BJournal%5D)">Gene expression profiling of zebrafish embryonic retina.</a> Zebrafish. 2, 269-283 (2005).</li>
<li>Leung, Y. F., Ma, P., Link, B. A., Dowling, J. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Factorial+microarray+analysis+of+zebrafish+retinal+development%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Factorial microarray analysis of zebrafish retinal development.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 105, 12909-12914 (2008).</li>
<li>Leung, Y. F., Ma, P., Dowling, J. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gene+expression+profiling+of+zebrafish+embryonic+retinal+pigment+epithelium+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22Invest+Ophthalmol+Vis+Sci%22%5BJournal%5D)">Gene expression profiling of zebrafish embryonic retinal pigment epithelium in vivo.</a> Invest Ophthalmol Vis Sci. 48, 881-890 (2007).</li>
<li>Nusslein-Volhard, C., Dahm, R. Zebrafish : a practical approach. , 1st ed, Oxford University Press. Oxford ; New York. (2002).</li>
<li>Westerfield, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+zebrafish+book+%3A+a+guide+for+the+laboratory+use+of+zebrafish+%28Danio+rerio%29%5BTitle%5D)+AND+%22%22%5BJournal%5D)">The zebrafish book : a guide for the laboratory use of zebrafish (Danio rerio).</a> , 4th ed, University of Oregon Press. Eugene, OR. (2000).</li>
<li>Kimmel, C. B., Ballard, W. W., Kimmel, S. R., Ullmann, B., Schilling, T. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Stages+of+embryonic+development+of+the+zebrafish%5BTitle%5D)+AND+%22Dev+Dyn%22%5BJournal%5D)">Stages of embryonic development of the zebrafish.</a> Dev Dyn. 203, 253-310 (1995).</li>
<li>Fadool, J. M., Dowling, J. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Zebrafish%3A+a+model+system+for+the+study+of+eye+genetics%5BTitle%5D)+AND+%22Prog+Retin+Eye+Res%22%5BJournal%5D)">Zebrafish: a model system for the study of eye genetics.</a> Prog Retin Eye Res. 27, 89-110 (2008).</li>
</ol>

Gli esperimenti sugli animali sono stati eseguiti secondo le linee guida e regolamenti stabiliti dalla cura degli animali Purdue e del Comitato Usa.

Microdissezione dei tessuti dell&#39;occhio zebrafish può effettivamente ottenere retine intatte e RPE-attached retine. Questo aiuta notevolmente studi di espressione relativi a un tessuto oculare specifico (retina o alla RPE). In effetti, abbiamo utilizzato con successo queste procedure per ottenere profili di espressione di RNA della retina tutto RPE 1 e 3. L&#39;utilità di questi profili è fortemente sostenuta dal nostro recente identificazione di percorsi e di famiglie di geni che sono perturba...

<table><tbody><tr><td>Motore per pestello senza fili</td><td>VWR international</td><td>47747-370</td><td></td></tr><tr><td>Alimentatore in corrente continua</td><td>Lascar</td><td>PSU130</td><td>Qualsiasi alimentatore in corrente continua funzionerà. La tensione specifica di una macchina diversa richiederà un'ulteriore ottimizzazione.</td></tr><tr><td>Pestello monouso &amp;amp; microtubo, 1,5 mL (privi di DNasi, RNasi e pirogeni)</td><td>VWR international</td><td>47747-366</td><td>Questi vengono utilizzati per il prelievo di tessuti in TRIzol per l'analisi dell'espressione genica.</td></tr><tr><td>Pinzette Dumont n. 5, punte: 0,05 x 0,01 mm, in acciaio inossidabile</td><td>World Precision Instruments, Inc.</td><td>500341</td><td>La dimensione della punta fine è desiderabile ma non è rigida, poiché può essere necessario affilare la punta di tanto in tanto.</td></tr><tr><td>Pinzette Dumont #5SF, punte: 0,025 x 0,005 mm, inox</td><td>Fine Science Tools</td><td>11252-00</td><td>La dimensione della punta fine è desiderabile ma non rigida, poiché può essere necessario affilare la punta di tanto in tanto.</td></tr><tr><td>Piastre per coltura in polistirene Falcon, 60 X 15 mm</td><td>BD Biosciences</td><td>351007</td><td>Queste piastre vengono utilizzate come piastre per dissezione.</td></tr><tr><td>Olympus SZX16 Microscopio stereoscopico</td><td>Olympus Corporation</td><td>SZX16</td><td>Qualsiasi stereomicroscopio è adatto. Negli studi precedenti abbiamo utilizzato uno stereomicroscopio Leica&lt;sup&gt;1-3&lt;/sup&gt; senza alcun problema. Utilizziamo inoltre esclusivamente l'obiettivo 1X per la dissezione, anche se abbiamo installato un obiettivo 2X. </td></tr><tr><td>Pietra per affilare</td><td>Fine Science Tools</td><td>29008-01</td><td>Usare questo per affilare la punta della pinzetta, se necessario</td></tr><tr><td>piatto termico</td><td>Tokai Hit</td><td>MATS-U55SZX2B</td><td>Questo è utilizzato per mantenere costante la temperatura del tessuto durante la dissezione e per minimizzare l'influenza delle fluttuazioni termiche sull'espressione genica. Inoltre, collochiamo l'intero microscopio in una stanza con condizioni ambientali controllate a 28&amp;#x00B0;C durante la dissezione in studi precedenti&lt;sup&gt;1-3&lt;/sup&gt; con buon successo.</td></tr><tr><td>Trizol, 100 mL</td><td>Invitrogen</td><td>15596-026</td><td></td></tr><tr><td>filo di tungsteno, diametro 0,015 pollici</td><td>World Precision Instruments, Inc.</td><td>TGW1510</td><td></td></tr><tr><td>Applicatore di legno</td><td>Puritan</td><td>807</td><td>Viene utilizzato per tenere l'ago di tungsteno inciso chimicamente.</td></tr></tbody></table>

microdissezione dei tessuti oculari zebrafish embrionali

Microdissection of Zebrafish Embryonic Eye Tissues

Zebrafish è un modello animale popolare per la ricerca sullo sviluppo degli occhi a causa della sua rapida<em&gt; Ex utero</em&gt; Lo sviluppo e la fecondità bene. Entro 3 giorni dopo la fecondazione (DPF), le larve mostrerà la prima risposta visiva. Molti geni sono stati identificati per controllare un corretto sviluppo degli occhi, ma siamo lontani da una comprensione completa dell&#39;architettura di base genetica. Intero gene profiling genoma espressione è uno strumento utile per chiarire genetica rete normativo per lo sviluppo dell&#39;occhio. Tuttavia, le ridotte dimensioni dell&#39;occhio embrionale in zebrafish lo rende difficile da ottenere tessuti oculari integro e puro per analisi di espressione. Per esempio, la lunghezza antero-posteriore dell&#39;occhio tra il giorno 2 e 3 è di circa 200-300 micron, mentre il diametro della lente è circa 100 micron. Inoltre, l&#39;epitelio pigmentato retinico (RPE) sottostante la retina è solo un singolo strato epitelio. Mentre profili di espressione genica possono essere ottenute da un embrione intero, essi non rappresentano accuratamente l&#39;espressione di questi tessuti. Pertanto tessuto puro deve essere ottenuto per un profilo di espressione genica di successo dello sviluppo dell&#39;occhio. Per risolvere questo problema, abbiamo sviluppato un approccio alla microdissect retina intatta e retina con RPE attaccato da dpf 1-3, che coprono le fasi principali della morfogenesi dell&#39;occhio. Tutte le procedure possono essere fatte con una pinza sottile e materiale di laboratorio, in generale stereomicroscopi standard. Per la dissezione della retina, il monostrato RPE viene rimosso e staccata dalla spazzolatura azione e l&#39;adesione preferenziale dei resti RPE alla superficie della piastra di coltura per la dissezione. Per RPE-attached dissezione della retina, l&#39;adesione di RPE alla piastra dissezione viene rimosso prima che la dissezione in modo che la RPE può essere completamente conservato con la retina. Una attenta azione di sollevamento di questo tessuto può efficacemente separare la coroide presuntivo e nella sclera. L&#39;obiettivo può essere rimosso in entrambi i casi da un ago di tungsteno inciso chimicamente. In breve, il nostro approccio può ottenere tessuti oculari intatto ed è stato utilizzato con successo per lo studio dei tessuti specifici profili di espressione di retina zebrafish<sup&gt; 1, 2</sup&gt; E dell&#39;epitelio pigmentato retinico<sup&gt; 3</sup&gt;.

Questo articolo descrive un approccio alla microdissect retine zebrafish con e senza epitelio pigmentato retinico collegato, da una a tre embrioni postfertilization giorni.

Microdissezione dei tessuti oculari Zebrafish embrionali

Il pesce zebra è un modello animale molto diffuso per la ricerca sullo sviluppo oculare grazie al suo rapido sviluppo ex utero e alla sua elevata fecondità. Entro 3 giorni dopo...

Questo video mostra la microdissezione della retina e della retina con pigmento retinico, epitelio o RPE, attaccato da embrioni di zebrafish da uno a tre giorni dopo la fecondazione. Tutte le procedure possono essere eseguite con pinzette fini e materiali di laboratorio comuni. Sotto microscopi stereoscopici standard per la dissezione della retina, lo strato singolo di RPE viene rimosso e staccato mediante un'azione di spazzolamento e l'adesione del RPE alla superficie della piastra di coltura.Per la dissezione della retina con epitelio pigmentato retinico (RPE) aderente, le proprietà adesive della piastra di coltura vengono eliminate mediante schiacciamento embrionale e lavaggio prima della dissezione. Per preservare intatto l'RPE, un sollevamento accurato di questo tessuto separa in modo efficiente coroide e sclera dalla retina con RPE aderente, seguito dalla rimozione del cristallino mediante un ago di tungsteno inciso chimicamente. Questo metodo di dissezione permette di ottenere tessuti retinici integri ed è stato utilizzato con successo per lo studio dell'espressione di RNA specifico per tessuto e dei profili della retina e dell'epitelio pigmentato retinico del pesce zebra.Ciao, sono Li Jang del laboratorio del Professor UFE Leon del Dipartimento di Scienze Biologiche della Purdue University. Oggi vi mostreremo come dissezionare i tessuti oculari embrionali del pesce zebra. Utilizziamo questo procedimento nel nostro laboratorio per studiare la rete genica che regola lo sviluppo dell'occhio.Iniziamo. Otto. Prima della microdissezione, preparare le seguenti soluzioni: e tre, soluzione di ringer sterilizzata mediante filtrazione e idrossido di sodio normale al cinque.Successivamente, incidi chimicamente gli aghi di tungsteno. Posiziona un piccolo becher in una capsula di Petri utilizzando dell'argilla per facilitare la manipolazione del becher e prevenire il versamento dell'idrossido di sodio. Fissa una graffetta standard al lato del becher.Versare cinque idrossidi di sodio normali nel becher finché la graffetta non entra in contatto con l'idrossido di sodio. Collegare l'elettrodo negativo di un'alimentazione in corrente continua alla graffetta e l'elettrodo positivo a un'estremità di un breve pezzo di filo di tungsteno. Avvolgere l'altra estremità del filo di tungsteno con una pallina di argilla dal diametro di quattro millimetri e immergere questa estremità nella soluzione di idrossido di sodio.Aumentare la tensione a circa tre volt e immergere il filo su e gi&ugrave; a intervalli di un secondo nella soluzione di idrossido di sodio per circa 10 minuti. Il filo di tungsteno esposto all'idrossido di sodio diventer&agrave; gradualmente pi&ugrave; sottile; quando la pallina di argilla cade dall'altro lato del filo collegato all'elettrodo positivo, avr&agrave; una forma affusolata simile a un ago. Sciacquare l'ago affilato con soluzione di Ringer o E tre per rimuovere i depositi salini e fissare l'ago a un applicatore di legno con del nastro adesivo o un porta-ago per facilitarne la manipolazione. Preparare gli embrioni per la dissezione.Mantenere i pesci adulti super in base ai protocolli standard la notte precedente l'accoppiamento. Separare i pesci genitori in coppie in vasche statiche per l'accoppiamento utilizzando un divisorio. Rimuovere il divisorio dopo l'accensione della luce della stanza la mattina successiva e permettere ai genitori di accoppiarsi a intervalli di 10 minuti ogni mezz'ora, separando i pesci dopo ogni accoppiamento.Mantenere gli embrioni raccolti da ciascun incrocio in modo separato in mezzo E tre a 28 gradi Celsius. Stadiare gli embrioni a 10-12 ore dalla fecondazione e rivalutare immediatamente lo stadio appena prima della dissezione nei punti temporali specifici. Utilizzare piastre di coltura in polistirene Falcon da 60 per 15 millimetri per la dissezione.Una nuova piastra non utilizzata presenta una proprietà adesiva intrinseca per il tessuto dell'epitelio pigmentato della retina (RPE) fino a circa 20 minuti e può facilitare la rimozione dell'RPE durante le dissezioni retiniche. Se si desidera una retina con RPE aderente, tale proprietà adesiva può essere neutralizzata frantumando completamente due embrioni in una piastra di coltura contenente soluzione di Ringer, lasciandoli a riposo per 30 minuti prima della dissezione, seguiti da un ampio lavaggio con soluzione di Ringer fresca prima della dissezione. Tutte le dissezioni fini vengono eseguite con un ingrandimento compreso tra cinque e otto volte su un microscopio Olympus SC X 16 con un obiettivo da una volta.Utilizzando pinzette di Dumont o un ago di tungsteno inciso chimicamente, si riscalda il piatto del microscopio a 28 gradi Celsius. Per minimizzare l'influenza delle fluttuazioni di temperatura all'inizio della dissezione retinica, trasferire un embrione a uno stadio di sviluppo specifico in cinque millilitri di soluzione di Ringer in una piastra di coltura Falcon da 60 per 15 millimetri preparata come descritto per la dissezione retinica senza RRPE, recidere la testa e una parte del tronco anteriore utilizzando rapidamente la punta affilata delle pinzette per rimuovere il corpo del pesce zebra. Successivamente, fissare l'estremità posteriore della sezione testa-tronco su una piastra di coltura. Con le pinzette ausiliarie, aprire la testa sul lato dorsale a partire dalla fronte anteriore.Rimuovere il cervello in modo che il lato mediale degli occhi sia esposto e rivolto verso l'alto per ulteriori manipolazioni. Per dissezionare la retina, utilizzare la punta della pinzetta per spazzolare delicatamente l'epitelio pigmentato retinico (RPE) esposto sul lato mediale dell'occhio rivolto verso l'alto, fino a quando non si osserva una piccola apertura nella retina. Continuare l'azione di spazzolamento e distacco fino a quando quasi tutto il lato mediale della retina non è esposto.Evitare di graffiare o forare la retina esposta durante la rimozione dell'epitelio pigmentato retinico (RPE) laterale sulla retina dell'occhio rivolto verso il basso rispetto alla piastra di coltura. Mantenere un angolo di circa 45 gradi rispetto alla superficie della piastra e spazzolare l'occhio con la pinzetta. Rimuovere l'RPE che è relativamente ben aderente alla ora serrata fissando la porzione staccata dell'RPE alla piastra di coltura per la dissezione.Quindi sollevare delicatamente la retina per rimuovere il RPE residuo ed eliminare il cristallino sfruttando la proprietà adesiva della piastra di coltura. Prestare attenzione a non danneggiare le cellule retiniche, che aderiranno anch'esse leggermente alla superficie della piastra. Se il cristallino non si stacca con il movimento rotatorio, utilizzare un ago di tungsteno inciso con un movimento circolare sulla superficie del cristallino.Per iniziare la dissezione della retina con epitelio pigmentato della retina (RPE) aderente, utilizzare una piastra per colture Falcon da 60 a 15 millimetri preparata come descritto per la dissezione della retina con RPE aderente. Trasferire un embrione a uno stadio di sviluppo specifico in cinque millilitri di soluzione di Ringer. Rimuovere la testa e una parte del tronco anteriore.Rimozione rapida del corpo del pesce zebra come eseguita in precedenza. Fissare l'estremità posteriore della sezione cefalotoracica su una piastra di coltura. Con le pinzette ausiliarie, aprire il cranio sul lato dorsale partendo dalla fronte anteriore.Rimuovere il cervello in modo che il lato mediale degli occhi sia esposto e rivolto verso l'alto. Per ulteriori manipolazioni con pinzette, sollevare delicatamente l'occhio dal lato lateroposteriore e arrotolarlo verso il lato anteriore. La coroide e il tessuto sclerale all'esterno dello strato di epitelio pigmentato retinico (RPE) sono relativamente saldamente aderenti alla pelle e possono essere in gran parte rimossi arrotolando con attenzione l'occhio verso il lato anteriore.Rimuovere il cristallino con l'ago di tungsteno dopo che il lato laterale dell'occhio è stato esposto e quando l'occhio è ancora attaccato alla pelle per la dissezione della retina. Senza epitelio pigmentato della retina (RPE) e con la retina a cui è attaccato l'RPE, i campioni dissecati possono essere raccolti in triolo in una microtubo per RNA per analisi successive. Caratterizzazione dell'RNA.Qui è mostrata un'esausta dissezione della retina senza epitelio pigmentato retinico (RPE), in cui l'integrità retinica è mantenuta, come indicato dalla superficie retinica intatta. La sezione istologica corrispondente mostra inoltre che l'architettura retinica è molto ben preservata. In particolare, la conservazione della matrice extracellulare tra lo strato dei fotorecettori e l'RPE è eccezionalmente buona.Un'accurata dissezione della retina con epitelio pigmentato della retina (RPE) aderente è indicata da uno strato di RPE integro e continuo. La sezione istologica corrispondente mostra che sia le cellule retiniche che quelle dell'RPE sono in buone condizioni. L'RNA totale estratto dalle retine dissecate è di alta qualità.Questo è indicato dall'elettroferogramma e dall'immagine del gel ottenuti dall'analisi con il bioanalizzatore. La linea di base è piatta e i picchi ribosomiali 18 s e 28 s sono integri. Il numero di integrità dell'RNA è tipicamente superiore a 9,8.Abbiamo appena illustrato le procedure di microdissezione per ottenere la retina di embrione di pesce zebra con e senza epitelio pigmentato retinico (RPE). Durante questa procedura, è importante ricordare che i passaggi più critici nella dissezione della retina sono l'azione di spazzolamento effettuata con la punta delle pinzette e l'arrotolamento del tessuto. Per la rimozione dei residui di RPE, abbiamo scoperto che appoggiare i gomiti sui braccioli regolabili della sedia durante la dissezione può stabilizzare in modo significativo i movimenti della mano.Ecco fatto. Grazie per aver guardato e buona fortuna con i vostri esperimenti.

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Utilizzando tecnica LUCE microscopia a fluorescenza all&#39;Immagine sviluppo Zebrafish Eye

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Microscopia elettronica e correlativo super-risoluzione per risolvere la localizzazione della proteina nella Retina di Zebrafish

Discutiamo qui, un protocollo di metodo che vi permetterà una facile analisi del vasculature retinico adulto tg(fli:EGFP) zebrafish come una lettura veloce nelle impostazioni delle patologie vascolari a lungo termine legate alla neoangiogenesi e cambiamenti strutturali.

Lo studio diabete Through the Eyes of un pesce: Microdissection, visualizzazione e analisi della tg(fli:EGFP) adulto Vasculature retinico Zebrafish

Qui, presentiamo una serie standardizzata dei protocolli per osservare il solco superiore oculare, una struttura recentemente identificato, evolutivamente conservata nell'occhio dei vertebrati. Utilizzando larve di zebrafish, dimostriamo le tecniche necessarie per identificare i fattori che contribuiscono alla formazione e alla chiusura del solco superiore oculare.

Visualizzazione del solco superiore oculare durante l'embriogenesi Danio rerio

Questo protocollo descrive un approccio per l'etichettatura in toto e l'imaging multidimensionale dello sviluppo precoce dell'occhio del pesce zebra. Descriviamo l'etichettatura, l'incorporamento e l'imaging quadridimensionale (4D) utilizzando la microscopia confocale a scansione laser e considerazioni per ottimizzare l'acquisizione di set di dati per sezionare i meccanismi della morfogenesi della coppa ottica.

Imaging a 4 dimensioni della morfogenesi della coppa ottica zebrafish

Qui, viene fornito un protocollo per l'imaging time-lapse della morfogenesi oculare utilizzando un microscopio lightsheet disponibile in commercio e una workstation di elaborazione delle immagini per analizzare i dati risultanti. Questo protocollo descrive in dettaglio le procedure per l'anestesia embrionale, l'incorporamento nell'agarosio a bassa temperatura di fusione, la sospensione nella camera di imaging, l'impostazione dei parametri di imaging e infine l'analisi dei dati di imaging...

Visualizzazione della morfogenesi oculare mediante microscopia Lightsheet utilizzando rx3:GFP Transgenic Zebrafish

L'articolo spiega come rimuovere chirurgicamente gli occhi dalle larve viventi di zebrafish come primo passo verso lo studio di come l'input retinico influenza la crescita e lo sviluppo del tectum ottico. Inoltre, l'articolo fornisce informazioni sull'anestesia larvale, la fissazione e la dissezione cerebrale, seguite da immunoistochimica e imaging confocale.

Rimozione dell'occhio nelle larve di zebrafish viventi per esaminare la crescita dipendente dall'innervazione e lo sviluppo del sistema visivo

Impara la microdissezione della retina e dell'epitelio pigmentato retinico da embrioni di Danio rerio. Questa tecnica consente di isolare tessuti intatti per studiare l'espressione genica specifica dei tessuti oculari.

Microdissezione dei tessuti oculari Zebrafish embrionali

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