Name: Testing Protozoacidal di Ligand-litica Peptidi Contro Gut Termite protozoi In vitro (Cultura protozoi) e In vivo (Microiniezione in Termite hindgut) (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2010-12-29T17:30:00.000+00:00
Duration: 17 min 36 s
Description: Scopri come i peptidi litici coniugati a ligandi uccidono i protozoi del tratto intestinale delle termiti in vitro e in vivo. Questo metodo offre nuove strategie per il controllo delle termiti sotterranee.

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Ringraziamo il Dr. Allison Richard, ex direttore della struttura peptide LSU per la sintesi ligando fluorescente, il Centro per la Ricerca Interdisciplinaray Biotecnologie, UF per il ligando-litica sintesi del peptide, e l&#39;impianto Microscopio Socolovsky per dare accesso al microscopio a fluorescenza. Il finanziamento è stato fornito dal Programma di Sviluppo SERDP esplorativi (SEED) del Dipartimento della Difesa, Dipartimento di Energia e Agenzia di Protezione Ambientale, il Programma AgCenter squadra Biotecnologie interdisciplinare e lo stato della Louisiana.

Esperimento 1: Estrazione del budello termiti protozoi in condizioni anaerobiche <ol><li> Utilizzare una casella di fan (Laboratori Coy) in un vano portaoggetti per far circolare sempre aria attraverso un disseccante e il tipo D catalizzatore Stak-Paks per controllare l'umidità ei livelli di ossigeno e di eliminare le temperature irregolari. Riempire il vano portaoggetti con un flusso continuo di azoto per 20 a 30 min. Monitorare i livelli di ossigeno con un sensore di ossigeno (C-squared, Inc.) per 1 h. Utilizzare l'azoto per raggiungere e mantenere condizioni anaerobiche, quando necessario. </li><li> Preparare Trager U media (Trager 1934) e aggiustare il pH a 7,0. Sparge il setto filtrante sterilizzati nel vano portaoggetti con una miscela di 2,5% di idrogeno, anidride carbonica del 5% e del 92,5% di azoto per 1 ora per rimuovere residui di ossigeno. </li><li> Silanize tutti i materiali tra cui vetrini da microscopio, tubi microcentrifuga, pipette, vetreria, ecc utilizzati negli esperimenti utilizzando Sigmacote per prevenire l'assorbimento di protozoi o peptidi alle superfici (Sigmacote, Sigma, # SL-2, http://www.sigmaaldrich.com/ etc / mediaLib / docs / Sigma/Product_Information_Sheet/1/sl2pis.Par.0001.File.tmp/sl2pis.pdf). </li><li> Dal intestino termite protozoi sono organismi strettamente anaerobici non devono essere esposti all'ossigeno. Pertanto le seguenti operazioni vengono eseguite in condizioni anaerobiche in una scatola di guanti (vedi 1.1). Con una pinza immergere tutto il corpo di un lavoratore termiti nel 70% di etanolo e ruotare lentamente per circa 10 s per rimuovere i contaminanti di superficie. </li><li> Rimuovere il lavoratore dal etanolo e lasciare asciugare su un Kimwipe pulita per circa 20 s. Utilizzare una sterile punta sottile pinza per tenere l'addome lavoratore e afferrare la punta del ventre con un altro paio di pinze per tirare dolcemente l'intestino verso l'alto o verso il basso in un angolo di 45 gradi. Se l'intestino è tirato in un angolo retto e con troppa forza si rischia di spezzarsi. Place 10 coraggio in una goccia di 100 ul Trager supporti a U su un vetrino da microscopio. </li><li> Pierce il coraggio con un paio di sterili sonde multa dissezione per rilasciare il protozoi e delicatamente trasferire il contenuto intestinale con una pipetta 200 ul in una provetta 1 ml contenente 900 microlitri Trager U media. Dopo aver lasciato per la sedimentazione di frammenti di parete intestinale (5 s), il trasferimento di 900 l di supernatante in una nuova provetta. </li><li> Trasferire 10 ml di cultura protozoi di un vetrino da microscopio sigmacoted e verificare lo stato di protozoi sotto un microscopio a 200 ingrandimenti X. </li><li> Preparare colture di controllo del pyriformis aerobica Tetrahymena protozoi, Amoeba sp., Euglena sp. E Paramecium sp. (Supply Company Carolina biologica, Burlington, Carolina del Nord), così come una cultura durante la notte di Escherichia coli nei terreni di coltura raccomandato dal fornitore. </li></ol> Esperimento 2: ligando Aggiungi accoppiato con un colorante fluorescente per i protozoi ei batteri culture di prova per il legame alla superficie di membrane e pareti cellulari In precedenza avevamo usato librerie phage display (New England Biolabs Inc, Ipswich, MA) per identificare 19 eptapeptide sequenze che si legano ai protozoi (protocolli disponibili http://www.neb.com/nebecomm/ManualFiles/manualE8110.pdf). Un ligando con una sequenza di peptidi (ALNLTLH) che ha mostrato somiglianze con glicoproteine ​​putativo noto dalla membrana Trypanosoma brucei è stato sintetizzato e accoppiato ad un C-terminale sonda fluorescente (EDANS, 5 - ((2-amminoetil) ammino) naftalen-1-solfonico acido, λmax = 341 nm, λem = 471 nm) mediante sintesi del peptide stato solido (SSP), utilizzando la resina EDANS NovaTag (EMD Biosciences). Qui mostriamo che il ligando si lega al protozoi, che sono stati isolati da nell'intestino delle termiti e altri protozoi a vita libera, ma non ai batteri. <ol><li> Cultura protozoi come descritto nella Exp. 1. Fissare i protozoi con il 10% di formaldeide a 4 ° C per 12 h. </li><li> Centrifugare la soluzione protozoi (30 xg, 10 min), scartare il surnatante e lavare il pellet contenente i protozoi fissa due volte in 1 ml Trager U media. Risospendere il pellet in 1 ml Trager U media. Inoltre, fissare altri protozoi, ed E. coli per i controlli. </li><li> Incubare i microrganismi fissata per 1-2 ore con una soluzione di legante sintetizzato accoppiato al EDANS colorante fluorescente (preparato in acqua) ad una concentrazione finale di 50 micron. Il ligando si scioglie meglio in acqua di Trager U media. </li><li> Osservare i microrganismi al microscopio a fluorescenza a 400 ingrandimenti X ad un massimo di assorbanza a 341 nm e una emissione nella regione blu a 471 nm. </li></ol> Esperimento 3: Test attività protozoacidal del ligando accoppiato ad un peptide litica in vitro (cultura protozoi) Un coniugato del ligando e il peptide litiche Ecate (Mutwiri et al. 2000) è stato sintetizzato in precedenza presso l'impianto di proteine ​​LSU. <ol><li> Silanize materiali e la preparazione dell'intestino cultura termite protozoi nel vano portaoggetti anaerobica unos descritto nel Exp. 1. </li><li> Preparare le culture di microrganismi aerobi controllo (ad esempio, E. coli e le specie protozoi a vita libera pyriformis T.). </li><li> In ambiente anaerobico del vano portaoggetti, pipetta 6 aliquote di 198 ml di cultura protozoi in provette Eppendorf da 0,5 ml. Aggiungere 2 ml di una soluzione 100 mM di ligando-litici peptide alla metà delle aliquote (concentrazione finale 1 micron) della cultura intestino termite protozoi. Aggiungere 2 ml di acqua per l'altra metà delle aliquote (controlli). </li><li> Sul bancone, preparare aliquote simili di E. coli e T. pyriformis con 1 litici peptide microM, ligando-litica peptide o acqua. </li><li> Dopo 1 ora, trasferire 10 ml di ogni cultura protozoi alle diapositive. Confrontare la sopravvivenza dei trattati protozoi a quella dei controlli al microscopio a 200 ingrandimenti X. </li><li> Dopo 1 ora, piatto 100 l di ca. Diluizione 10 -4 della E. culture coli su BHI e incubare a 37 ° C durante la notte. Confrontare il numero di unità formanti colonie sulle piastre. </li></ol> Esperimento 4: L'iniezione del ligando accoppiato ad un colorante fluorescente nel hindgut termite <ol><li> Tirare aghi (modello GD-1, 1 x 900 mm) utilizzando un PC-10 di vetro Narishige estrattore micropipetta con un livello di calore a doppio stadio (65 e 48) per ottenere una dimensione di punta di 20-30 micron. Confermare la dimensione punta misurando sotto un microscopio con un micrometro. </li><li> Riempire un ago con ca. 30 ml di 50 micron di ligando fluorescente segnato in sospensione in acqua tramite una siringa collegata. Riempire un altro ago con acqua per il controllo. Allega una micropipetta (0,5 microlitri e 32 mm di lunghezza, Drummond Azienda scientifico) ad un titolare di un micromanipolatore. Inserire un ago al titolare del sistema di iniezione in un micromanipolatore secondo. Impostare i parametri di iniezione iniziale di circa 1 s lunghezza dell'impulso e 10-12 iniezione psi. Avanzare l'ago lentamente nella micropipetta e iniettare la soluzione con un pedale-driven ad alta velocità, sistema di iniezione elettronica con un controllo lunghezza dell'impulso collegato a un flusso controllato di gas di azoto, che assicura un volume costante è riproducibile iniettato. Dopo l'iniezione, rimuovere la micropipetta e registrare la lunghezza della soluzione iniettata utilizzando un calibro a corsoio. Calcolare il volume iniettato dai parametri noti della micropipetta. Regolare la pressione del gas azoto e la lunghezza degli impulsi di espellere 0,3 ul di soluzione in una singola iniezione. </li><li> Stringere la fine di un addome lavoratore termite con una pinza morbido per rimuovere eventuali escrementi presenti nel retto. Immobilizzare lavoratore termite da loro agghiacciante in ghiaccio per 5 min. </li><li> Fai ricevitori per tenere i lavoratori termite, tagliando 100 puntali microlitri utilizzando un bisturi. Tagliare la punta ad una lunghezza di 10 - 12 mm e utilizzare in base alle dimensioni delle termiti. </li><li> Collegare il ricevitore al micromanipolatore. Mettere un lavoratore in una capsula di Petri sul lato dorsale e aspirare il primo operaio in testa il destinatario utilizzando una pompa di aspirazione di azoto in modo che il capolinea del lavoratore sporge dal ricevitore. </li><li> Tenendo il termite nel ricevitore, con attenzione avanzare l'ago riempito con il micromanipolatore per inserirla nel ano lavoratore. Iniettare 0,3 ml di soluzione (ligando marcato fluorescente o acqua per i controlli). </li><li> Luogo i lavoratori iniettati con legante o acqua in tre diverse capsule di Petri con carta da filtro umida e tenerli a 26 ± 2 ° C con il 78% di umidità relativa </li><li> Estirpare coraggio da termiti iniettato e raccogliere i protozoi dopo 24 ore, come indicato sopra nella Exp. 1. Fissare e osservare i protozoi come mostrato in Esp. 2. </li></ol> Esperimento 5: Test attività protozoacidal del ligando accoppiato ad un peptide litica in vivo (iniezione in termite hindgut) <ol><li> Silanize materiali come descritto nella Exp. 1. </li><li> Preparare una soluzione 500 mM del ligando-litica peptide in acqua. </li><li> Seguire i punti 3,1) attraverso 3,4) per preparare gli aghi di vetro, ricevitori e lavoratori termite. </li><li> Seguendo i metodi descritti in 3.5) iniettare 0,3 ml di soluzione di ligando-litiche peptide (trattamento) o acqua (controllo) nel hindgut di 20 lavoratori termiti. </li><li> Tenere termiti per 24 h, coraggio estirpare dai lavoratori diversi e osservare contenuto intestinale sotto il microscopio, come descritto in 3.6). e 3,7). </li><li> Non appena una morte di protozoi nell'intestino termite è confermata, tenere rimanenti termiti trattati ed i controlli in piastre di Petri con carta da filtro umida e osservare mortalità giornaliera. </li></ol> Rappresentante dei risultati: Esperimento 1: Di solito, foregut, dell'intestino e hindgut sono ottenuti in un unico pezzo, quando la procedura è seguita correttamente (Figura 1a). I protozoi risiedono in alta densità nelle porzioni anaerobica dei hindgut e può essere rilasciato da perforando la hindgut con una pinza (figura 1b 1 &amp; 2). La più grande protospecie Zoa nell'intestino della termite sotterranea Formosa è il mandrino a forma di P. grassii, che è 200-300 micron di lunghezza e 150 micron di larghezza e può essere visto ad occhio nudo. La specie più grande secondo è la pera a forma di H. hartmanni (50-140 micron di lunghezza e 30-80 micron di larghezza). La più piccola specie è il cono a forma di S. leidyi (15-50 micron di lunghezza e 8-30 micron di larghezza;. Lai et al 1983). Le specie di protozoi sono mostrati nella Figura 2. In condizioni ottimali la cultura delle tre specie di protozoi isolati dall'intestino di termiti sotterranee Formosan rimarrà vivo e in salute per almeno 72 h in anaerobica Trager U media (Figura 3a). Tuttavia, se le condizioni non sono ottimali cultura protozoi morirà rapidamente. Se ci sono residui di ossigeno nei media, il movimento di protozoi cesserà immediatamente. Se la pressione osmotica è troppo alta o l'integrità della membrana è compromessa la membrana superficiale del rigonfiamento si protozoi fuori e la rottura delle cellule (Figura 3b). Se la pressione osmotica è troppo bassa o membrane sono compromesse, protozoi si accartocciano e si restringono (Figura 3c). Esperimento 2: Abbiamo confermato che il ligando accoppiato ad una sonda fluorescente legato a tutte e tre le specie di protozoi dal hindgut di Formosa termiti sotterranee a densità rilevabile. Legame con il ligando si verifica sulla superficie della cellula intera (Figura 4). Siti di legame sono concentrati nella regione anteriore del protozoi sulla axostyle (un foglio di microtubuli) e nucleo in P. grassii. Abbiamo osservato alcuni autofluorescenza irregolare di particelle di legno ingerito dai protozoi. Tuttavia, autofluorescenza è di solito facile da discernere dal legame specifico del ligando, poiché non vi è autofluorescenza della superficie, la axostyle e il nucleo (Figura 4). Abbiamo anche rilevato fluorescenza in tutte le specie testate aerobica protozoi a vita libera (Figura 5), ​​il che suggerisce che il ligando si lega alle strutture generiche ai protozoi. Tuttavia, nessun legame con il ligando è stato osservato per E. coli. Esperimento 3: Un mM di ligando-litica peptide ucciso tutti e tre specie di protozoi dall'intestino dei lavoratori Formosan termiti sotterranee e la vita libera T. pyriformis in vitro in meno di 10 minuti, mentre i controlli rimasto in vita. La Figura 6 mostra la progressiva perdita dell'integrità della membrana dell'intestino termite protozoi trattati con ligando-litica peptide. Membrane rigonfiamento e rottura, avvizzire e morire protozoi. Nessuna differenza è stata osservata nel numero di E. colonie di Escherichia tra i trattamenti di ligando-litica peptide e acqua. Peptide litica senza ligando, tuttavia, ha ridotto il numero di E. colonie di Escherichia notevolmente (Figura 7). Ciò suggerisce che l'attaccamento del ligando in qualche modo protegge i microrganismi non bersaglio da lisi. Esperimento 4: Quando 0,3 microlitri 50 micron del ligando fluorescente marcato è stato iniettato nel hindgut dei lavoratori termiti, l'associazione a P. grassii, S. leidyi e H. hartmanni è stata confermata tramite microscopia a fluorescenza simile a Exp. 2 (Figura 4). Tessuto intestinale termite non ha mostrato fluorescenza. Esperimento 5: Iniezione di 0,3 microlitri 500 micron ligando-litica peptide ucciso tutti e tre specie di protozoi nell'intestino di Formosa termiti sotterranee entro 24 ore. Le termiti sono morti entro 10 giorni dopo la perdita del loro protozoi simbiotica. In precedenza, Husseneder e Collier (2009) iniettato la stessa concentrazione di peptidi litici in budella delle termiti. Senza il ligando attaccato, ha preso più tempo prima che i protozoi nell'intestino (72 h) e le termiti erano morti (sei settimane). Ciò suggerisce che il ligando aumenta l'efficienza protozoacidal di peptidi litici, molto probabilmente legando i peptidi litici ai protozoi. <img src="/files/ftp_upload/2190/2190fig1.jpg" alt="Figura 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 1"> Figura 1. a: Formosa intestino termite sotterranea di una diapositiva che mostra le principali sezioni dell'intestino (anteriore, medio, hindgut), b 1 e 2: hindgut è trafitto con una pinza per liberare il contenuto dell'intestino che contiene il protozoi. <img src="/files/ftp_upload/2190/2190fig2.jpg" alt="Figura 2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 2"> Figura 2. Le tre specie di protozoi flagellati trovato nel hindgut delle termiti di Formosa sotterraneo: a) Pseudotrichonympha grassii, b) Holomastigotoides hartmanni, ec) Spirotrichonympha leidyi. <img src="/files/ftp_upload/2190/2190fig3.jpg" alt="Figura 3" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 3"> Figura 3. Protozoi nella cultura, a) sana protozoi, b) con membrane protozoi sporgenti, c) avvizzite protozoi. <img src="/files/ftp_upload/2190/2190fig4.jpg" alt="Figura 4" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 4"> Figura 4. La conferma del legame del ligando accoppiato ad una sonda fluorescente per termite intestinoprotozoi (dall'alto verso il basso: P. grassii, H. hartmanni, S. Leydi), trattati con ligando fluorescente marcata e controlli non trattati (mostrando autofluorescenza). <img src="/files/ftp_upload/2190/2190fig5.jpg" alt="Figura 5" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 5"> Figura 5. Di legame a vita libera protozoi aerobica, a) Tetrahymena, b) Amoeba, c) Euglena, e d) Paramecium. <img src="/files/ftp_upload/2190/2190fig6.jpg" alt="Figura 6" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 6"> Figura 6. Il trattamento di protozoi con a) acqua (controllo) e b) 1 mM ligando-litica peptide. <img src="/files/ftp_upload/2190/2190fig7.jpg" alt="Figura 7" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 7"> Figura 7. E. coli colonie su piastre (10 diluizione -4): a) trattati con acqua (controllo), b) trattate con 1 mM ligando-litica peptide, c) trattati con 1 mM peptide litica.

<ol><li>Hansel, W., Leuschner, C., Enright, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Conjugates+of+lytic+peptides+and+LHRH+or+%CE%B2CG+target+and+cause+necrosis+of+prostate+cancers+and+metastases%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Cell.+Endocrinol%22%5BJournal%5D)">Conjugates of lytic peptides and LHRH or βCG target and cause necrosis of prostate cancers and metastases.</a> Mol. Cell. Endocrinol. 269, 26-33 (2007).</li>
<li>Husseneder, C., Collier, R. E. Paratransgenesis for termite control. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aHusseneder%2C+C+%22Insect+Symbiosis%22">Insect Symbiosis</a>. Bourtzis, K., Miller, T. A. 3, CRC Press LLC. Boca Raton, Florida. Volume 3 361-376 (2009).</li>
<li>Husseneder, C., Grace, J. K., Oishi, D. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Use+of+genetically+engineered+bacteria+%28Escherichia+coli%29+to+monitor+ingestion%2C+loss+and+transfer+of+bacteria+in+termites%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Use of genetically engineered bacteria (Escherichia coli) to monitor ingestion, loss and transfer of bacteria in termites.</a> Curr. Microbiol. 50, 119-123 (2005).</li>
<li>Husseneder, C., Grace, J. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genetically+engineered+termite+gut+bacteria+deliver+and+spread+foreign+genes+in+termite+colonies%5BTitle%5D)+AND+%22Appl.+Microbiol.+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">Genetically engineered termite gut bacteria deliver and spread foreign genes in termite colonies.</a> Appl. Microbiol. Biotechnol. 68, 360-367 (2005).</li>
<li>Javadpour, M. M., Juban, M. M., Lo, W. C., Bishop, S. M., Alberty, J. B., Cowell, S. M., Becker, C. L., Mc Laughlin, M. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((De+novo+antimicrobial+peptides+with+low+mammalian+cell+toxicity%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Med.+Chem%22%5BJournal%5D)">De novo antimicrobial peptides with low mammalian cell toxicity.</a> J. Med. Chem. 39, 3107-3113 (1996).</li>
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<li>Trager, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+cultivation+of+a+cellulose-digesting+flagellate%2C+Trichomonas+termopsidis%2C+and+of+certain+other+termite+protozoa%5BTitle%5D)+AND+%22Biol.+Bull%22%5BJournal%5D)">The cultivation of a cellulose-digesting flagellate, Trichomonas termopsidis, and of certain other termite protozoa.</a> Biol. Bull. 66, 182-190 (1934).</li>
</ol>

Nessun conflitto di interessi dichiarati.

Ligando-litica peptidi sono stati utilizzati con successo per raggiungere in modo efficace e distruggere le cellule tumorali (Hansel e Leuschner 2004, Hansel et al. 2007). Sulla base di questo concetto, abbiamo sviluppato un ligando eptapeptide che si lega alla superficie di protozoi nell&#39;intestino delle termiti di Formosa sotterranee e accoppiato a un peptide litica con l&#39;obiettivo di distruggere queste obbligare cellulosa digerire simbionti nell&#39;intestino delle termiti per raggiungere termite cont...

<table><tbody><tr><td>Sigmacote</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>SL-2</td><td></td></tr><tr><td>EDANS</td><td>Novabiochem, EMD Millipore</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Camera anaerobica a guanto</td><td>Coy Laboratories, Inc.</td><td>Personalizzata</td><td></td></tr><tr><td>Controllore ambientale Intellus</td><td>Percival Scientific, Inc.</td><td>I36NL</td><td></td></tr><tr><td>Trattore per micropipette in vetro PC-10</td><td>Narishige International</td><td>PC-10</td><td></td></tr><tr><td>Aghi di vetro (Modello GD-1, 1 X 900 mm)</td><td>Narishige International</td><td>GD-1</td><td></td></tr><tr><td>Micromanipolatori Leitz</td><td>Vermont Optechs, Inc.</td><td>ACS01</td><td></td></tr><tr><td>Micoiniettore</td><td>Tritech Research, Inc.</td><td>MINJ-1</td><td></td></tr><tr><td>Microcaps</td><td>Drummond Scientific</td><td>1-000-0005</td><td></td></tr><tr><td>Sistema di imaging a fluorescenza LEICA</td><td>Leica Microsystems</td><td>DMRxA2</td><td></td></tr><tr><td>Microscopio stereoscopico LEICA</td><td>Leica Microsystems</td><td>MZ16</td><td></td></tr><tr><td>Microscopio LEICA</td><td>Leica Microsystems</td><td>DMLB</td><td></td></tr><tr><td>Microscopio stereoscopico Olympus</td><td>Olympus Corporation</td><td>SZ61</td><td></td></tr></tbody></table>

testing protozoacidal di ligand-litica peptidi contro gut termite protozoi in vitro (cultura protozoi) e in vivo (microiniezione in termite hindgut)

Testing Protozoacidal Activity of Ligand-lytic Peptides Against Termite Gut Protozoa in vitro (Protozoa Culture) and in vivo (Microinjection into Termite Hindgut)

Stiamo sviluppando un nuovo approccio per il controllo delle termiti sotterranee che avrebbe portato alla ridotta dipendenza l&#39;uso di pesticidi chimici. Termiti sotterranee dipendono da protozoi del hindguts dei lavoratori di digerire in modo efficiente legno. Peptidi litici hanno dimostrato di uccidere una varietà di protozoi parassiti (Mutwiri et al. 2000) e anche protozoi nell&#39;intestino della termite Formosa sotterraneo, Coptotermes formosanus (Husseneder e Collier 2009). Peptidi litici sono parte del sistema immunitario aspecifico degli eucarioti, e distruggere le membrane di microrganismi (Leuschner e Hansel 2004). La maggior parte dei peptidi litici non sono suscettibili di nuocere eucarioti superiori, perché non influiscono sul elettricamente neutro colesterolo contenenti le membrane delle cellule di eucarioti superiori (Javadpour et al. 1996). Azione del peptide litica può essere mirata a specifici tipi cellulari con l&#39;aggiunta di un legante. Per esempio, Hansel et al. (2007) ha riferito che peptidi litici coniugati con ligandi dei recettori di membrana di cellule di cancro potrebbero essere utilizzati per distruggere le cellule tumorali del seno, mentre peptidi litici da solo o coniugato con non specifici peptidi non sono stati efficaci. Peptidi litici inoltre sono stati coniugati con ormoni umani che si legano ai recettori sulle cellule tumorali per la distruzione mirata delle cellule del cancro alla prostata e ai testicoli (Leuschner e Hansel 2004). In questo articolo presentiamo le tecniche utilizzate per dimostrare l&#39;attività protozoacidal di un peptide litico (Ecate), accoppiato ad un ligando eptapeptide che si lega alla membrana superficiale di protozoi dall&#39;intestino di termiti sotterranee Formosa. Queste tecniche includono estirpazione dell&#39;intestino dai lavoratori delle termiti, la cultura anaerobica di budello protozoi (Pseudotrichonympha grassii, Holomastigotoides hartmanni, Spirotrichonympha leidyi), la conferma microscopici che il legante marcato con un colorante fluorescente si lega l&#39;intestino termite protozoi e altri protozoi a vita libera ma non di batteri o tessuto intestinale. Abbiamo anche dimostrato che il legante stesso accoppiato ad un peptide litici uccide in modo efficiente intestino termite protozoi in vitro (cultura protozoi) e in vivo (microiniezione in hindgut dei lavoratori), ma è meno bacteriacidal che il peptide litica da sola. La perdita di protozoi porta alla morte delle termiti in meno di due settimane. In futuro, saremo geneticamente ingegnere microrganismi che possono sopravvivere nel hindgut termiti e diffondere attraverso una colonia di termiti come &quot;cavalli di Troia&quot; per esprimere ligando-litica peptidi che avrebbero ucciso i protozoi nell&#39;intestino delle termiti e successivamente uccidere le termiti nella colonia . Ligando-litica peptidi potrebbe anche essere utile per lo sviluppo di farmaci contro protozoi parassiti.

Vi presentiamo le procedure per dimostrare che ligandi si legano alla membrana superficiale della cellulosa digestione protozoi nell&#39;intestino delle termiti di Formosa sotterraneo usando la microscopia a fluorescenza e che ligandi accoppiato con peptidi litici uccidere questi protozoi<em&gt; In vitro</em&gt; (Anaerobica cultura protozoi) e<em&gt; In vivo</em&gt; (Iniezione nel hindgut termite).

Testing Protozoacidal di Ligand-litica Peptidi Contro Gut Termite protozoi In vitro (Cultura protozoi) e In vivo (Microiniezione in Termite hindgut)

Stiamo sviluppando un nuovo approccio per il controllo delle termiti sotterranee che porterebbe a una riduzione della dipendenza dall'uso di pesticidi chimici. Le termiti sotterranee...

L'obiettivo generale di questa procedura è dimostrare che un ligando sintetizzato si lega specificamente ai protozoi digerenti la cellulosa nell'intestino delle termiti sotterranee di Formosan, e che il ligando associato a un peptide litico uccide questi protozoi in vitro in colture anaerobiche di protozoi e in vivo mediante iniezione nel proctodeo della termite. Ciò viene ottenuto innanzitutto estraendo i protozoi intestinali delle termiti operaie in condizioni anaerobiche. Il secondo passaggio della procedura consiste nel confermare il legame di un ligando marcato con un fluorocromo ai protozoi intestinali delle termiti in vitro.Il terzo passaggio della procedura consiste nel dimostrare che il peptide litico accoppiato al ligando uccide in vitro i protozoi dell'intestino delle termiti. L'ultimo passaggio della procedura prevede l'iniezione nel retto della termite di un ligando marcato con fluorescenza e di un peptide litico accoppiato al ligando, al fine di confermare il legame e la distruzione dei protozoi intestinali in vivo. Mediante iniezioni di colture di protozoi nel retto della termite e l'utilizzo della microscopia a fluorescenza, dimostriamo che un ligando accoppiato a u

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Questo video illustra la tecnica per estrarre il DNA dalla specie di microbi residenti nel hindgut termite. La preparazione di un vetrino a fresco, che è utile per visualizzare la comunità microbica intestinale è anche illustrato, e un tour attraverso le specie di ambiente ricco di intestino è dato.

Estrazione del DNA da microbi intestinali della Termite (Zootermopsis Angusticollis) e visualizzare microbi intestinali

Jared Leadbetter ci porta per una passeggiata naturalistica attraverso la diversità dei residenti vita nel hindgut termiti - un microambiente contenente 250 specie diverse trovato in nessun altro luogo sulla Terra. Jared rivela che la simbiosi esibito da questo sistema è a più livelli e coinvolge non solo una relazione tra la termite e dei suoi abitanti dell'intestino, ma comporta anche una complessa rete di simbiosi tra i microbi intestinali stessi.

Livelli di simbiosi - Visualizzazione della Comunità hindgut Termite microbica

Viene delineato un metodo semplice e generale per la sintesi di peptidi ciclici utilizzando l'irradiazione a microonde. Questa procedura consente la sintesi di peptidi ciclici della spina dorsale con una raccolta di diverse conformazioni mantenendo le catene laterali e le frazioni farmacoforiche., e quindi, consente lo screening della conformazione bioattiva.

Sviluppo di un Backbone ciclico Peptide Biblioteca come potenziale Antiparassitaria Therapeutics Uso Microonde irradiazione

Viene presentato un protocollo per sintetizzare peptoidi con funzionalità cationica mista nella stessa sequenza (monomeri di tipo lisina e arginina). Viene anche descritto il successivo test di questi composti contro la Leishmania mexicana, i protozoi parassiti che causano la leishmaniosi cutanea.

Un metodo efficiente per la sintesi di peptoids con monomeri misto Lisina-tipo / Arginina-tipo e valutazione della loro attività anti-Leishmania

Qui presentiamo un protocollo basato sul sistema di esca del verme della farina (Tenebrio molitor) che è stato utilizzato per isolare e selezionare funghi entomopatogeni (EPF) da campioni di suolo. Una formula efficace del numero di conidi (ECN) viene utilizzata per selezionare EPF ad alta tolleranza allo stress in base alle caratteristiche fisiologiche per il controllo microbico dei parassiti sul campo.

Isolamento e selezione di funghi entomopatogeni da campioni di suolo e valutazione della virulenza fungina contro gli insetti nocivi

Descriviamo un saggio colorimetrico ad alto rendimento che misura l'attività β-galattosidasi in tre fasi del ciclo di vita di Trypanosoma cruzi, l'agente eziologico della malattia di Chagas. Questo test può essere utilizzato per identificare i composti tripanocidi in modo facile, veloce e riproducibile.

In vitro Screening farmacologico contro tutte le fasi del ciclo di vita di Trypanosoma cruzi utilizzando parassiti che esprimono β-galattosidasi

Le colonie fungine entomopatogene sono isolate da campioni di terreno tropicale utilizzando l'esca Tenebrio , l'esca Galleria e il mezzo artificiale selettivo, cioè l'agar destrosio di patate arricchito con estratto di lievito integrato con cloramfenicolo, tiabendazolo e cicloeximide (mezzo CTC).

Confronto dei metodi per isolare i funghi entomopatogeni da campioni di suolo

I nematodi entomopatogeni vivono in simbiosi con i batteri e insieme infettano con successo gli insetti minando il loro sistema immunitario innato. Per promuovere la ricerca sulle basi genetiche dell'infezione da nematodi, vengono descritti metodi per il mantenimento e la manipolazione genetica dei nematodi entomopatogeni.

Coltivare e manipolare geneticamente i nematodi entomopatogeni

Qui presentiamo una valutazione longitudinale di criceti dorati infettati per via intraperitoneale (IP) o per via intragengivale (IG) con L. infantum-Luc mediante imaging bioluminescente e mediante PCR. I criceti sono stati valutati 1 giorno dopo l'infezione (1 dpi), 1 settimana dopo l'infezione (8 dpi) e 3 settimane dopo l'infezione (22 dpi) e soppressi al 50° dpi e 8 mesi dopo l'infezione.

In vivo Imaging di criceti infetti da Leishmania infantum mediante inoculazione gengivale di amastigoti axenici che esprimono luciferasi

Presentiamo due metodi per gli agricoltori per propagare in massa nematodi entomopatogeni come bio-insetticidi. Il primo metodo utilizza gel di poliacrilammide come substrato per la coltura del nematode, mentre il secondo utilizza il filone rivestito di polimero come substrato di coltura. Entrambi i metodi si basano sulla propagazione in vivo dei nematodi all'interno di cadaveri di insetti.

Propagazione in vivo basata sul coltivatore di nematodi entomopatogeni

Scopri come i peptidi litici coniugati a ligandi uccidono i protozoi del tratto intestinale delle termiti in vitro e in vivo. Questo metodo offre nuove strategie per il controllo delle termiti sotterranee.

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