Iniezione di cellule progenitrici neurali fluorescenti in organoidi cerebrali umani per la modellazione dei trapianti

0 visualizzazioni3:40 min • August 29th, 2025

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Inizia con cellule progenitrici neurali derivate da cellule staminali pluripotenti indotte o NPC marcate in fluorescenza.

Risospendere le cellule in un idrogel di matrice extracellulare per creare una miscela uniforme cellula-matrice.

Incubare la miscela con ghiaccio.

Quindi, trasferisci un organoide cerebrale umano in un piatto.

Rimuovere il terreno in eccesso e posizionare la piastra al microscopio per la procedura di iniezione.

Erogare la miscela di matrice cellulare su un vetrino sterile pre-raffreddato e aspirarla utilizzando una siringa pre-raffreddata.

Iniettare lentamente la miscela sulla superficie dell'organoide per ridurre al minimo la rottura dei tessuti.

Lasciare riposare brevemente l'organoide, quindi aggiungere il terreno, trasferire l'organoide in una piastra a più pozzetti e incubare.

L'idrogel si solidifica, ancorando gli NPC nel sito di iniezione. Traccia gli NPC usando la microscopia a fluorescenza.

Nel corso del tempo, le NPC proliferano e migrano in regioni distanti dell'organoide, dove si differenziano in neuroni immaturi e maturi.

Ciò consente un trapianto di cellule affidabile con una minima interruzione degli organoidi, adatto per la terapia con cellule neurali.

Inizia rimuovendo dal ghiaccio la sospensione di singole cellule staminali pluripotenti indotte o cellule progenitrici neurali derivate da iPSC, o NPC, e centrifugandole a 300 g per cinque minuti a 4 gradi Celsius.

Rimuovere il surnatante e risospendere il pellet cellulare in 3 milligrammi per millilitro di matrice di membrana basale solubilizzata per ottenere un volume finale di due microlitri per iniezione. Riposizionare immediatamente la sospensione sul ghiaccio fino all'uso. Trasferisci la siringa pre-raffreddata dal congelatore a 20 gradi Celsius in un secchiello per il ghiaccio per un ulteriore utilizzo.

Quindi, rimuovere la piastra dell'organoide cerebrale dall'incubatore e trasferire l'organoide in un piatto da 35 millimetri utilizzando una punta a foro largo. Per stabilizzare gli organoidi e facilitare l'iniezione, rimuovere il più possibile il terreno senza danneggiare l'organoide. Posizionare la piastra da 35 millimetri contenente l'organoide sotto un microscopio da dissezione per facilitare l'iniezione.

Una volta che gli organoidi sono pronti per l'iniezione, risospendere delicatamente le cellule NPC marcate con EGFP utilizzando un puntale per pipetta P20 raffreddato e spostare due microlitri di queste cellule su un vetrino di vetro sterile pre-raffreddato. Prelevare una siringa da insulina preriempita dal ghiaccio e aspirare lentamente i 2 microlitri di sospensione cellulare con lo smusso dell'ago rivolto verso il basso. Aprire il coperchio del piatto contenente l'organoide prima di mettere a fuoco il microscopio su di esso.

Tenere il piatto con una mano, posizionare lo smusso dell'ago verso l'alto. E con l'altra mano, iniettare lentamente la cellula nella superficie dell'organoide. Dopo aver iniettato le cellule, rimettere il coperchio nel piatto e incubare l'organoide iniettato per uno o due minuti.

Quindi, aggiungere delicatamente 500 microlitri di terreno organoide alla piastra prima di trasferire l'organoide in una piastra a 24 pozzetti con una punta a foro largo. Incubare l'organoide a 37 gradi Celsius e al 5% di anidride carbonica con un cambio completo del terreno ogni due giorni.

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Ultimo aggiornamento: 22 agosto 2026