JoVE Encyclopedia of Experiments
Microbiologia
0 visualizzazioni • 3:20 min • September 26th, 2025
Posizionare un vetrino a canale rivestito di gelatina, collegato a una pompa microfluidica, su un tavolino da microscopio.
Il vetrino contiene cellule endoteliali umane primarie coltivate in terreni di flusso, con stringhe del fattore di von Willebrand o VWF, una glicoproteina, sulla superficie cellulare.
Queste stringhe sono generate stimolando le cellule con istamina.
Il flusso controllato del fluido, applicato attraverso la pompa microfluidica, favorisce la secrezione e lo srotolamento del VWF. In questo modo vengono esposti domini di binding specifici sulle stringhe VWF.
Arrestare il flusso del fluido, aggiungere un anticorpo verde specifico per VWF coniugato con fluoroforo e riprendere il flusso per etichettare le stringhe con l'anticorpo.
Mettere in pausa il flusso del terreno e introdurre batteri pneumococchi fluorescenti rossi che esprimono proteine.
Riavviare il flusso per distribuire i batteri, consentendo l'adesione ai domini esposti attraverso adesine superficiali.
Utilizzando la microscopia a fluorescenza, visualizza in tempo reale il legame batterico alle corde.
Arrestare il flusso del terreno e acquisire immagini Z-stack per quantificare l'adesione batterica alle cellule endoteliali.
Per la visualizzazione microscopica, posizionare l'unità fluidica nella camera di riscaldamento a 37 gradi Celsius. Posizionare il vetrino del canale sul tavolino di un microscopio preriscaldato.
Controllare la morfologia cellulare e l'integrità dello strato HUVEC prima dell'iniezione di istamina e batteri nella circolazione a flusso. Mantenere l'impostazione del flusso. Indurre il rilascio di VWF dai corpi di Palade vitali endoteliali iniettando 136 microlitri di una soluzione madre di istamina da 100 millimolari attraverso una porta di iniezione nel terreno ECGMS che circola nel tubo di perfusione.
Per la rilevazione in immunofluorescenza di stringhe VWF multimerizzate, iniettare 20 microgrammi di un anticorpo coniugato FITC specifico per VWF in un volume di 200 microlitri di PBS nei 13,6 millilitri circolanti di terreno ECGMS. Per quantificare l'attaccamento dello pneumococco alle stringhe VWF generate sulle superfici cellulari HUVEC, iniettare 1,35 volte 10 all'ottava CFU per millilitro RFP che esprime Pneumococchi in un volume massimo di un millilitro nel terreno ECGMS utilizzando la porta di iniezione. Selezionare un obiettivo a immersione in olio 63x per l'ingrandimento del microscopio e regolare le impostazioni del filtro a fluorescenza nel software del microscopio sul canale RFP con un filtro di rilevamento a 540 nanometri per il rilevamento di pneumococchi che esprimono RFP.
Per quantificare l'attaccamento batterico alle stringhe VWF, creare istantanee di pile Z di almeno 30 viste di campo rappresentative, ciascuna contenente circa 10 HUVEC morfologicamente intatti, e contare la quantità di Pneumococchi.
In questo articolo viene descritto un metodo per visualizzare il legame batterico ai filamenti del fattore di von Willebrand (VWF) presenti su cellule endoteliali umane mediante microscopia a fluorescenza. La tecnica prevede la stimolazione delle cellule con istamina per favorire la secrezione del VWF, seguita dall'introduzione di anticorpi marcati con fluorescenza e batteri per studiarne le interazioni.
Questo metodo consente la visualizzazione in tempo reale e la quantificazione dell'adesione del pneumococco ai filamenti del fattore di von Willebrand su cellule endoteliali umane primarie in condizioni fisiologiche di flusso. Fornisce un modello fisiologicamente rilevante per lo studio dei meccanismi di adesione batterica nelle fasi iniziali delle infezioni vascolari. L'approccio supporta la validazione degli bersagli e la riduzione del rischio meccanicistico nella scoperta di agenti antimicrobici, collegando le adesine batteriche alle interazioni con l'endotelio ospite in condizioni di flusso.
Il metodo si inserisce nella fase di scoperta iniziale fino alla transizione preclinica, supportando la verifica delle ipotesi nella validazione del bersaglio e nello sviluppo di saggi per candidati anti-infettivi.
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Ultimo aggiornamento: 29 agosto 2026