Monitoraggio delle dinamiche dell'infezione batterica in un topo utilizzando la bioluminescenza

0 visualizzazioni4:35 min • September 26th, 2025

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Iniziare con una sospensione di un ceppo attenuato di un batterio patogeno.

Il ceppo attenuato mostra una ridotta patogenicità a causa di delezioni mirate nei geni di virulenza.

I batteri sono marcati cromosomicamente con un operone bioluminescente che consente la produzione autonoma di luce.

I batteri esprimono l'operone bioluminescente, producendo un enzima luciferasi e un complesso enzimatico che sintetizza il substrato della luciferasi.

La luciferasi ossida il substrato per produrre luce visibile.

Centrifugare la sospensione ed eliminare il surnatante.

Lavare le cellule con un tampone, centrifugare nuovamente e scartare il surnatante per rimuovere i componenti non cellulari residui.

Risospendere le cellule nel tampone per ottenere una concentrazione batterica ottimale e aspirare la sospensione in una siringa.

Iniettare la sospensione per via intraperitoneale in un topo, quindi trasferirla in una gabbia.

Visualizzare il segnale bioluminescente a intervalli regolari.

Il ceppo attenuato rimane localizzato e la bioluminescenza diminuisce gradualmente, indicando la guarigione dell'infezione.

La mattina delle iniezioni, scongelare i crioviali delle cellule batteriche a quattro gradi Celsius per tre o quattro ore. Tenere le fiale sul ghiaccio dopo lo scongelamento e iniettare i topi entro due ore. Trasferire il contenuto di ogni crioviale in una nuova provetta da due millilitri e centrifugarla a 4.500 volte G per 10 minuti.

Scartare il surnatante e risospendere il pellet di cella in un millilitro di PBS. Ripetere la centrifugazione e risospendere le cellule in PBS fino a una concentrazione finale di 2,5 volte 10 per la nona unità formante colonia per millilitro. Prelevare tre campioni dalla sospensione finale di ciascun ceppo per convalidare la concentrazione, il genotipo e il fenotipo.

Per ogni ceppo, aliquotare 1,5 millilitri di sospensione cellulare in una provetta da due millilitri e preparare il PBS per le iniezioni di controllo. Raccogli i topi e i materiali necessari per le iniezioni in una sala chirurgica sterile per animali e pulisci tutte le superfici con salviette igienizzanti prima di iniziare. Indossare due paia di guanti in lattice per limitare il rischio di foratura, se morsi, oltre a un camice da laboratorio, occhiali di sicurezza e maschera facciale.

Rimuovi il mouse dalla gabbia e pesalo, segnando la coda con un pennarello indelebile per il monitoraggio post-iniezione. Aprire una nuova siringa da un millilitro con un ago calibro 27 e aspirare 200 microlitri di PBS sterile. Afferra il topo dietro le orecchie, usando il pollice e l'indice, e pizzica per creare una piega della pelle sulla nuca.

Quindi, fissa la coda nel palmo usando il mignolo per tenere il mouse piatto e immobile. Inserire l'ago con un angolo di 30 gradi nella cavità peritoneale a sinistra o a destra della linea mediana. Sollevare leggermente l'ago per assicurarsi che non sia stato inserito negli organi.

Quindi, iniettare lentamente il PBS e ritirare l'ago. Un bolo nel sito di iniezione è tipico. Posizionare l'ago nell'apposito contenitore per lo smaltimento di oggetti taglienti e spostare il mouse in una gabbia separata.

Ripeti la procedura con il topo successivo e dopo che tutti i topi da una gabbia sono stati iniettati, riportali nella loro gabbia originale. Dopo aver iniettato il gruppo di controllo, iniettare i gruppi di test utilizzando la stessa procedura. Una volta completate tutte le iniezioni, riporta i topi nella stanza dell'alloggio e pulisci l'area di lavoro con salviette igienizzanti.

Impostare il flusso di ossigeno a 1,5 litri al minuto e l'isoflurano al 3,5% e spostare il mouse nella camera di anestesia, quindi nella fase di stabilizzazione della temperatura, dopo l'anestesia. Posizionare il mouse sulla schiena con le braccia tese e inserire un cono per la somministrazione di isoflurano al 2,5% durante l'imaging.

Chiudi la porta e scatta immagini bioluminescenti e radiografie del topo. Al termine dell'imaging, rimettere il mouse nella sua gabbia e monitorarlo. Dovrebbe riprendere conoscenza entro tre o cinque minuti.

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Ultimo aggiornamento: 15 agosto 2026