$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Iniziare con una configurazione del test contenente le fiale posizionate all'interno di una camera anaerobica.
Ogni fiala contiene terreni integrati con nitrato di sodio, ioni mercurio e concentrazioni variabili di solfato di magnesio.
Ruotare la configurazione per mescolare i componenti, quindi incubare.
Durante l'incubazione, il solfato di magnesio favorisce la formazione di complessi di mercurio non biodisponibili, riducendo gli ioni mercurio liberi e biodisponibili in modo dipendente dalla concentrazione.
Quindi, aggiungi biosensori indotti, batteri geneticamente modificati che trasportano un plasmide e mescola.
Il plasmide contiene un regolatore trascrizionale sensibile al mercurio e un promotore collegato a un gene reporter fluorescente.
In condizioni anaerobiche, i batteri utilizzano il nitrato per la respirazione.
Gli ioni mercurio liberi entrano nelle cellule, legano il regolatore trascrizionale e attivano il gene fluorescente, producendo proteine fluorescenti.
Trasferire le aliquote da ogni fiala in una piastra a più pozzetti.
Utilizzando un lettore di piastre, misurare l'intensità della fluorescenza.
Una diminuzione della fluorescenza con l'aumentare delle concentrazioni di solfato di magnesio conferma la capacità del biosensore di rilevare i cambiamenti nel mercurio biodisponibile.
Prima di iniziare l'esperimento, controllare il monitor anaerobico per assicurarsi che non ci sia ossigeno nella camera anaerobica. Progetta il layout della piastra secondo un modello a 96 pozzetti. Per eseguire esperimenti in repliche tecniche di tre, ciò consentirà 32 diversi trattamenti, che è meglio rappresentato con una griglia quattro per otto per impostare le fiale.
Impostare la griglia quattro per otto in base al layout della piastra del saggio. Quindi, posizionare le fiale standard di PTFE da 7 millilitri nel vassoio. I flaconcini devono essere maneggiati solo manipolando l'esterno del flaconcino.
Aggiungere il volume del mezzo di esposizione in ogni flaconcino corrispondente a ciascun trattamento. A ciascun flaconcino, aggiungere il volume corrispondente della variabile chimica da testare in base al layout della piastra. Ora aggiungi nitrato a ogni fiala in modo che la concentrazione finale sia 200 micromolare.
Escludere questo passaggio per i bianchi di trattamento del biosensore costitutivo.
Per aggiungere mercurio alle fiale, prendere prima il ceppo da quattro a otto micromolari e agitare bene. Diluire la soluzione e il mezzo di esposizione in una fiala di PTFE da 7 millilitri a una concentrazione compresa tra 100 e 250 nanomolari per ottenere una soluzione di mercurio funzionante.
Da questa soluzione di lavoro, aggiungere mercurio alle fiale richieste in base al layout della piastra. Dopo aver aggiunto il mercurio o il cadmio, agitare manualmente la piastra con un movimento orbitale. L'esperimento può essere messo in pausa ora a seconda del tempo necessario al mercurio o al cadmio per speciare in soluzione.
Quando l'esperimento viene ripreso, pipettare delicatamente il biosensore avanti e indietro per garantire l'omogeneità. Quindi aggiungere 100 microlitri di brodo del biosensore a ciascuna fiala e agitare manualmente la piastra come prima. Riscalda il lettore di piastre a 37 gradi Celsius e imposta una corsa cinetica per dieci ore con letture ogni due virgola da cinque a cinque minuti.
Uno scuotimento orbitale tra le letture, ha impostato la corsa per effettuare misurazioni della fluorescenza con un'eccitazione della fluorescenza di 440 nanometri e un'emissione di 500 nanometri. Pipettare ora 200 microlitri da ciascuna fiala di PTFE nella griglia quattro per otto nei pozzetti corrispondenti della piastra a 96 pozzetti.
Pipettare avanti e indietro cinque volte prima di trasferire ogni 200 microlitri. Posizionare la piastra a 96 pozzetti nel vassoio del lettore di piastre. Quindi posizionare il coperchio sulla piastra a 96 pozzetti e iniziare il saggio.