Screening degli inibitori della pirofosfatasi legata alla membrana batterica mediante un test colorimetrico

0 visualizzazioni3:47 min • October 30th, 2025

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La pirofosfatasi batterica legata alla membrana, o mPPasi, idrolizza il pirofosfato in ortofosfato mentre pompa ioni sodio attraverso la membrana.

Per valutare gli effetti degli inibitori contro le mPPasi, aggiungere concentrazioni crescenti di standard di fosfato alle strisce di provette.

Introdurre i composti di prova, che possono inibire la mPPasi, nelle provette, lasciandone una con l'acqua come controllo.

Aggiungere mPPasi incluse in liposomi derivate dal batterio termofilo Thermotoga maritima a tutte le provette ad eccezione degli standard.

Sigillare e incubare alla temperatura ottimale per attivare l'enzima.

Aggiungere pirofosfato di sodio per avviare la reazione e rilasciare l'ortofosfato.

Trasferire le provette su una piattaforma di raffreddamento per arrestare la reazione e centrifugare per rimuovere la condensa.

Aggiungere il reagente molibdato-ascorbato per reagire con l'ortofosfato e formare acido fosfomolibdico.

Aggiungere la soluzione di arsenito-citrato per ridurre l'acido, formando un complesso blu stabile.

Trasferire il contenuto in una piastra multipozzetto e misurare l'assorbanza.

Un'assorbanza inferiore rispetto al controllo indica l'inibizione della mPPasi, mentre gli standard fungono da riferimento per la quantificazione del fosfato.

Aggiungere un millilitro di soluzione B a 10 millilitri di soluzione A, mescolare a mano e conservare la soluzione in ghiaccio.

Utilizzando una pipetta multicanale, aggiungere 40 microlitri di fosfato 0, 62,5, 250 e 500 micromolare standard agli script delle provette in triplicato.

Quindi, aggiungere 25 microlitri di soluzione composta e 15 microlitri di miscela di soluzione mPPasi a ciascuna provetta, ad eccezione delle provette contenenti fosfato standard. Sigillare le strisce di tubo con un foglio sigillante adesivo. Tagliare il foglio sigillante per separare ogni striscia di tubo.

Quindi, pre-incubare il campione per cinque minuti a 71 gradi Celsius. Posizionare il campione sul blocco riscaldante con intervalli di 20 secondi tra ogni striscia.

Per ogni striscia, aprire la guarnizione adesiva. Utilizzando una pipetta multicanale, aggiungere 10 microlitri di pirofosfato di sodio bibasico millimolare e mescolare pipettando su e giù per cinque volte.

Sigillare nuovamente la striscia di tubo utilizzando la stessa guarnizione.

Incubare nuovamente a 71 gradi Celsius per cinque minuti. Successivamente, posizionare i campioni sull'apparato di raffreddamento con un intervallo di 20 secondi tra ciascuna striscia.

Lasciatele raffreddare per cinque minuti e poi centrifugate brevemente ogni striscia per decantare le gocce d'acqua sotto il foglio sigillante. Rimetti la striscia nell'apparecchio di raffreddamento, rimuovi la guarnizione e lasciali raffreddare per altri cinque minuti. Quindi, aggiungere 60 microlitri di soluzione A e B, mescolare pipettando su e giù per cinque volte e mantenere le strisce di provette sull'apparecchio di raffreddamento per altri 10 minuti.

In una cappa aspirante, aggiungere 90 microlitri della soluzione di arsenito citrato e mantenere a temperatura ambiente per almeno 30 minuti per produrre un colore blu stabile. Erogare 180 microlitri di ciascuna miscela di reazione in una micropiastra di polistirene trasparente a 96 pozzetti. Utilizzare uno spettrofotometro per micropiastre per misurare l'assorbanza di ciascun pozzetto a 860 nanometri.

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Ultimo aggiornamento: 15 agosto 2026