Name: Infarto acuto del miocardio in topi (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-02-16T17:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 45 s
Description: Impara a modellare l'infarto acuto del miocardio nei ratti per studiare i meccanismi di ischemia e riperfusione cardiaca. Questo metodo consente di valutare dimensione dell'infarto, area a rischio e morte cellulare.

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BKM è supportato da una National Institute of Health (NIH) / National Heart Lung and Blood Institute (NHLBI) di assegnazione (R01-HL085487). MH è sostenuto dalla American Heart Association Nazionale (AHA) Scientist Development Grant (SDG) e la Società di Cardiologia Geriatrica.

1. Preparazione dell'area operativa <ol><li> La superficie di funzionamento è il primo preparato da disinfettare la zona con etanolo al 70%. </li><li> Tutti gli strumenti chirurgici devono essere sterilizzati con uno sterilizzatore a caldo tallone prima dell'intervento chirurgico (e tra i singoli ambulatori ratto). Questi strumenti sono: forbici chirurgiche (2), pinze (1), pinze curve (1), porta aghi (2), e un rectractor petto. </li><li> Garza di cotone e applicatori devono essere disponibili per gestire sanguinamento. </li><li> Regolare la temperatura di un sistema di coperta homeothermic (pad riscaldamento), da utilizzare per mantenere la temperatura del corpo dell'animale a 37 ± 1 ° C, al fine di evitare una drammatica caduta della temperatura corporea, la dimensione di un infarto dipende la durata di occlusione come temperatura corporea bene (Tarnavski et al.). </li><li> Prima dell'anestesia, ogni animale riceveranno un dosaggio di buprenorfina (0,1-2,5 mg / kg SQ) e compresse carprofene orale (Rimadyl, Bioserv compressa, 1 compressa) il giorno prima della chirurgia. Al momento immediatamente precedente l'intervento, ogni animale sarà nuovamente ricevere un dosaggio di buprenorfina (0,1-2,5 mg / kg SQ). </li><li> Nota: Per gli studi che coinvolgono la valutazione della funzione cardiaca e del rimodellamento cardiaco in un periodo di tempo (7 - a 28-giorni e oltre), un dosaggio di buprenorfina (0,1-2,5 mg / kg SQ) sarà somministrato ogni 6 ore dopo l'intervento chirurgico per 24-48 ore dopo l'intervento e il carprofen compresse orali verranno forniti una volta al giorno (vedi "recupero post-operatorio"). </li></ol> 2. Preparazione e intubazione di Ratti <ol><li> Prima l'induzione di anestesia, gli animali saranno esaminati per individuare eventuali patologie preesistenti che potrebbero complicare risultato chirurgico, esame fisico comprende l'ispezione visiva e la misurazione della frequenza cardiaca, frequenza respiratoria e la temperatura corporea e il peso corporeo. </li><li> Se gli animali sono determinati ad essere sani, 250-300 grammi ratti maschi (per esempio Sprague Dawley) saranno pesati e caratteristiche di identificazione verrà registrato. </li><li> I ratti sono poi anestetizzati con 80 mg / kg di pentobarbital, il corretto livello di anestesia è verificato attraverso la risposta ritiro arto applicando pressione del letto ungueale ratto (toe-pinch reflex) e periodicamente durante tutta la procedura. </li><li> Buprenorfina (0,1-2,5 mg / kg; SQ) sarà somministrato al momento della chirurgia. </li><li> Un rasoio elettrico viene poi utilizzato per radersi la forma di pelliccia delle aree collo e al torace. Nota: Per gli studi che coinvolgono la valutazione della funzione cardiaca e del rimodellamento cardiaco in un periodo di tempo (7 - a 28-giorni e oltre), la pelliccia deve essere completamente rasata lontano dalla zona chirurgica per mantenere la sterilità. </li><li> Le aree devono essere rasati rimosso e disinfettati con una soluzione di Betadine seguita da pulire l'area con alcool al 70%: questo betadine e macchia alcool e procedura di disinfezione deve essere ripetuta tre volte. </li><li> Anestetizzato l'animale viene posto in posizione supina su un sistema coperta homeothermic (piastra elettrica), al fine di mantenere la temperatura corporea. </li><li> Intubazione endotracheale viene poi eseguita da prima attentamente esponendo la trachea, per migliorare la visualizzazione di intubazione, facendo di 5 mm a metà collo incisione e la retrazione del tessuto muscolare, appena sopra la trachea. </li><li> Questo permette una migliore visualizzazione per l'inserimento del tubo endotracheale (polietilene Taglia 90, PE 90), dove è smussato il tubo sul bordo per facilitare l'ingresso attraverso la laringe. </li><li> Il tubo endotracheale viene inserita nella trachea, con visualizzazione aiutato utilizzando un microscopio operatorio stereo, manipolando con attenzione la lingua durante la visualizzazione della trachea e l'ingresso del tubo endotracheale. </li><li> Ventilazione meccanica è poi ottenuto collegando il tubo endotracheale a Kent scientifico ventilatore (modalità TOPO Dual) ciclismo a 80 respiri al minuto e un volume corrente di 1,2 ml per 100 grammi di peso corporeo. </li><li> Un telo sterile viene posto sopra il topo, lasciando solo l'area chirurgica esposta, in modo da minimizzare la contaminazione potenziale durante l'operazione. </li><li> Il chirurgo animali e gli assistenti devono indossare una maschera, camice e guanti, con i guanti di essere cambiato tra ambulatori ratto individuali. </li></ol> 3. Transitorio discendente anteriore sinistra (LAD) Arteria Ligation <ol><li> Una volta che respiro costante è stabilito, il petto è aperto a sinistra quarto spazio intercostale, utilizzando hemostats o forbici fine turno per aprire lo spazio, ma senza tagliare il tessuto in modo che il rischio di sanguinamento può essere ridotto. </li><li> Un retrattore petto è quindi posizionato all'interno del quarto spazio intercostale, al fine di diffondere le costole in modo che il ventricolo sinistro (LV) è esposto, tenendo massima cura a non danneggiare i polmoni. </li><li> Il pericardio è quindi aperto, ma lasciato al suo posto, se possibile. </li><li> Prossimale sinistra discendente anteriore (LAD) arteria sarà identificato (Figura-1), con l'utilizzo di quantostereomicroscopio urgical, e il ragazzo viene transitoriamente legatura (o può essere legato con un nodo scorsoio) con un 6-0 prolene sutura per un periodo di 30 minuti ischemico (Figura-1), ma senza esteriorizzazione del cuore. </li><li> Per consentire la riperfusione cardiaca, forbici microchirurgico sono usati per tagliare il nodo della legatura (o rilasciando il slipknot), con il prolene 6-0 sutura, 30 minuti dopo la legatura del LAD. </li><li> Nella finzione ratti di controllo, la procedura è identica, ad eccezione del LAD non è transitoriamente legato. </li><li> Il deflusso è poi brevemente (1-2 secondi) fuori pizzicato sul respiratore per consentire nuovamente l'inflazione dei polmoni. </li><li> Il retrattore del torace viene quindi rimosso e le costole sono riunite con un 2-0 sutura prolene con un modello di sutura interrotta. </li><li> Una volta che le costole sono chiuse, il deflusso del ventilatore è di nuovo brevemente (1-2 secondi) pizzicato fuori per assicurare una corretta respirazione. </li><li> La pelle è chiuso con sutura prolene 6-0 con un modello di sutura continua. </li></ol> 4. Conferma della legatura con successo l'arteria discendente anteriore <ol><li> Legatura corretta della LAD sarà confermata osservando sbiancamento del tessuto del miocardio distale alla sutura così come disfunzione della parete anteriore, come osservato durante la legatura LAD transitorio. </li><li> Riperfusione sarà verificata dal ritorno di colore rosso al tessuto miocardico e la dimostrazione di una certa ripresa del movimento della parete anteriore; come osservato subito dopo la legatura LAD transitorio. </li><li> Nota: Per gli studi che coinvolgono la valutazione della funzione cardiaca e del rimodellamento cardiaco in un periodo di tempo (7 - a 28-giorni e oltre), un ecocardiogramma sarà eseguita 24 ore dopo la legatura LAD, al fine di determinare l'entità del indotta infarto del miocardio. Tutti gli animali con un accorciamento frazionale del ventricolo sinistro (LV FS) &lt;20%, come stabilito da un ecocardiogramma, così come la disfunzione movimento della parete anteriore coerente con l'infarto, saranno individuate e utilizzate per il follow-up funzione cardiaca e gli studi di rimodellamento. Sham ratti di controllo sono tenuti ad avere una normale LV FS tra il 40-45% (del Monte et al). </li></ol> 5. Recupero post-operatorio <ol><li> Una volta che l'operazione è completa, il telino sterile sopra l'animale verrà rimosso. La temperatura corporea (da un termometro rettale), frequenza respiratoria (con un esame visivo), la frequenza cardiaca (da palpitazioni), anomalo e segni del dolore sono da monitorare finché l'animale diventa ambulatoriale. </li><li> Il ratto verrà rimosso dal ventilatore e poi essere inserito in una gabbia di animali e ha permesso di recuperare da anestesia. In questa gabbia, una delle estremità della gabbia sarà riscaldata da una piastra elettrica per consentire il ratto a cercare calore. Inoltre, l'acqua sarà disponibile per il topo durante questo periodo di osservazione. </li><li> Se i segni di disidratazione sono osservati dopo l'intervento chirurgico, 0,5 ml di soluzione fisiologica sterile verrà iniettato per via intraperitoneale (IP). </li><li> Buprenorfina (0,1-2,5 mg / kg; SQ) sarà somministrata immediatamente dopo l'intervento chirurgico, e durante il recupero post-operatorio. </li><li> Nota: Per gli studi che coinvolgono la valutazione della funzione cardiaca e del rimodellamento cardiaco in un periodo di tempo (7 - a 28-giorni e oltre), un dosaggio di buprenorfina (0,1-2,5 mg / kg SQ) sarà somministrato ogni 6 ore dopo l'intervento chirurgico per 24-48 ore dopo la chirurgia. Carprofene compresse orali (Rimadyl, Bioserv compressa) saranno fornite anche (1-compressa al giorno) per almeno 48 ore dopo l'intervento chirurgico. </li></ol> 6. La valutazione istologica della ischemia riperfusione <ol><li> A seguito del completamento del periodo di 4 ore di riperfusione, i ratti sono anestetizzati di nuovo con 80 mg / kg di pentobarbital e il ragazzo è legatura ancora una volta (o il cappio può essere retied) (Huang et al e Kaiser et al). </li><li> 1 ml di 5% di blu di Evan (in PBS) viene poi iniettato nella camera ventricolare destra e ha permesso di perfusione per 2 minuti. </li><li> Dopo 2 minuti, 1 ml di soluzione satura di cloruro di potassio viene iniettato nella camera ventricolare destra in modo da fermare il cuore di battere. </li><li> Il cuore viene rapidamente asportato, incorporato nel 2% agarosio PBS, e poi sezionato in 1-2 fette di mm. </li><li> Il miocardio vitale è poi macchiata con il 2% di cloruro di trifeniltetrazolo (TTC) per 20 minuti e le immagini di ogni fetta viene catturato. Le immagini sono poi quantificati al fine di individuare la quantità di area del miocardio: (1) che non a rischio è (sezioni blu), (2) area a rischio (AAR, rosso e bianco sezioni), e (3 ), zona che è infartuata (bianca "senza macchia" sezioni) (Figura-2). </li></ol> 7. Rappresentante Risultati Per gli studi che coinvolgono la valutazione delle dimensioni dell'infarto e la zona a rischio (AAR), con colorante blu di Evan e cloruro di trifeniltetrazolo (TTC), dopo 4 ore di riperfusione, legatura corretto del LAD può essere confermataosservando sbiancamento del tessuto del miocardio distale alla sutura così come disfunzione della parete anteriore, come osservato durante la legatura LAD transitorio. Riperfusione può essere verificata dal ritorno di colore rosso al tessuto miocardico e la dimostrazione di una certa ripresa del movimento della parete anteriore; osservato subito dopo la legatura LAD transitorio. Per studi che comprendano la valutazione della funzione cardiaca e del rimodellamento cardiaco in un periodo di tempo (7 - a 28 - giorni ed oltre), la legatura corretto ischemia seguita da riperfusione può anche essere confermata dal pallore della disfunzione del tessuto, della parete anteriore e il ritorno di colore rosso con una certa ripresa del movimento della parete dopo riperfusione. Inoltre, disturbi della funzione cardiaca può essere determinato da un ecocardiogramma in corso di 24 ore legatura LAD post, al fine di determinare l'entità della infarto miocardico indotto. Tutti gli animali con un accorciamento frazionale del ventricolo sinistro (LV FS) &lt;20%, come stabilito da un ecocardiogramma, così come la disfunzione movimento della parete anteriore coerente con l'infarto, saranno individuate e utilizzate per il follow-up funzione cardiaca e gli studi di rimodellamento. Sham ratti di controllo sono tenuti ad avere una normale LV FS tra il 40-45% (del Monte). <img src="/files/ftp_upload/2464/2464fig1.jpg" alt="Figura 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 1"> Figura 1. Rappresentazione schematica di un infarto del miocardio e Ligation LAD. Schema di (1) infarto del miocardio e (2) legatura del ventricolo sinistro discendente anteriore (LAD) arteria con una sutura, utilizzato per simulare l'infarto miocardico causato dalla formazione di peste. <img src="/files/ftp_upload/2464/2464fig2.jpg" alt="Figura 2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 2"> Figura 2. Un'immagine rappresentativa di un Cuore Rat seguito AMI. Immagine rappresentativa del cuore di ratto che mostra l'area in blu (non occluso zona perfusione coronarica), area in rosso (area di perfusione coronarica occlusa che indica la zona a rischio (AAR) per l'infarto, e la zona in bianco / giallo (zona infartuata all'interno del AAR).

<ol><li>Hunt, S. A., Baker, D. W., Chin, M. H., Cinquegrani, M. P., Feldmanmd, A. M., Francis, G. S., Ganiats, T. G., Goldstein, S., Gregoratos, G., Jessup, M. L., Noble, R. J., Packer, M., Silver, M. A., Stevenson, L. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((SC.ACC%2FAHA+Guidelines+for+the+Evaluation+and+Management+of+Chronic+Heart+Failure+in+the+Adult%3A+Executive+Summary+A+Report+of+the+American+College+of+Cardiology%2FAmerican+Heart+Association+Task+Force+on+Practice+Guidelines+%28Committee+to+Revise+the+1995+Guidelines+for+the+Evaluation+and+Management+of+Heart+Failure%29%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">SC.ACC/AHA Guidelines for the Evaluation and Management of Chronic Heart Failure in the Adult: Executive Summary A Report of the American College of Cardiology/American Heart Association Task Force on Practice Guidelines (Committee to Revise the 1995 Guidelines for the Evaluation and Management of Heart Failure).</a> Circulation. 104, 2996-3007 (2001).</li>
<li>Goldman, S., Raya, T. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rat+infarct+model+of+myocardial+infarction+and+heart+failure%5BTitle%5D)+AND+%22J+Card+Fail%22%5BJournal%5D)">Rat infarct model of myocardial infarction and heart failure.</a> J Card Fail. 1, 169-177 (1995).</li>
<li>Tarnavski, O., McMullen, J. R., Schinke, M., Nie, Q., Kong, S., &amp, I. zumo, S, <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mouse+cardiac+surgery%3A+comprehensive+techniques+for+the+generation+of+mouse+models+of+human+diseases+and+their+application+for+genomic+studies%5BTitle%5D)+AND+%22Physiol+Genomics%22%5BJournal%5D)">Mouse cardiac surgery: comprehensive techniques for the generation of mouse models of human diseases and their application for genomic studies.</a> Physiol Genomics. 16, 349-360 (2004).</li>
<li>Thygesen, K., Alpert, J. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Universal+Definition+of+Myocardial+Infarction%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Universal Definition of Myocardial Infarction.</a> Circulation. 116, 2634-2653 (2007).</li>
<li>Vasilyev, N., Williams, T., Brennan, M. L., Unzek, S., Zhou, X., Heinecke, J. W., Spitz, D. R., Topol, E. J., Hazen, S. L., Penn, M. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Myeloperoxidase-generated+oxidants+modulate+left+ventricular+remodeling+but+not+infarct+size+after+myocardial+infarction%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Myeloperoxidase-generated oxidants modulate left ventricular remodeling but not infarct size after myocardial infarction.</a> Circulation. 112, 2812-2820 (2005).</li>
<li>McConnell, B. K., Popovic, Z., Mal, N., Lee, K., Bautista, J., Forudi, F., Schwartzman, R., Jin, J. P., Penn, M., Bond, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Disruption+of+protein+kinase+A+interaction+with+A-kinase-anchoring+proteins+in+the+heart+in+vivo%3A+effects+on+cardiac+contractility%2C+protein+kinase+A+phosphorylation%2C+and+troponin+I+proteolysis%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biol+Chem%22%5BJournal%5D)">Disruption of protein kinase A interaction with A-kinase-anchoring proteins in the heart in vivo: effects on cardiac contractility, protein kinase A phosphorylation, and troponin I proteolysis.</a> J Biol Chem. 284, 1583-1592 (2009).</li>
<li>Monte, D. el, Butler, F., Boecker, K., Gwathmey, W., K, J., Hajjar, R. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Novel+technique+of+aortic+banding+followed+by+gene+transfer+during+hypertrophy+and+heart+failure%5BTitle%5D)+AND+%22Physiol.+Genomics%22%5BJournal%5D)">Novel technique of aortic banding followed by gene transfer during hypertrophy and heart failure.</a> Physiol. Genomics. 9, 49-56 (2002).</li>
<li>Huang, M. H., Nguyen, V., Wu, Y., Rastogi, S., McConnell, B. K., Wijaya, C., Uretsky, B. F., Poh, K. K., Tan, H. C., Cheng, J., Perin, E., Fujise, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Synergistic+Infarct+Size+Reduction+by+Combination+Therapy+with+Milrinone+and+Esmolol+at+Early+Reperfusion+during+Acute+Myocardial+Infarction%5BTitle%5D)+AND+%22American+Journal+of+Physiology%22%5BJournal%5D)">Synergistic Infarct Size Reduction by Combination Therapy with Milrinone and Esmolol at Early Reperfusion during Acute Myocardial Infarction.</a> American Journal of Physiology. , Forthcoming Forthcoming.</li>
<li>Kaiser, R. A., Bueno, O. F., Lips, D. J., Doevendans, P. A., Jones, F., Kimball, T. F., Molkentin, J. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Targeted+inhibition+of+p38+mitogen-activated+protein+kinase+antagonizes+cardiac+injury+and+cell+death+following+ischemia-reperfusion+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biol+Chem%22%5BJournal%5D)">Targeted inhibition of p38 mitogen-activated protein kinase antagonizes cardiac injury and cell death following ischemia-reperfusion in vivo.</a> J Biol Chem. 279, 15524-15530 (2004).</li>
</ol>

Nessun conflitto di interessi dichiarati.

Un infarto miocardico acuto (IMA) nei ratti, anche come ischemia-riperfusione (IR), è comunemente usato per mimare il rimodellamento ventricolare umano che porta a insufficienza cardiaca. La progressione della disfunzione ventricolare sinistra e scompenso cardiaco in modelli animali (ratti e topi) è simile a quello osservato negli esseri umani che sostengono un IM, sopravvivere e poi si sviluppa successivamente insufficienza cardiaca (Goldman). Questa procedura delineata una versione di questa tecnica e conteneva anche ...

<table><tbody><tr><td>Ventilatore</td><td>Kent Scientific</td><td>TOPO</td><td>TOPO Dual Mode</td></tr><tr><td>Circulatore Termostatico E103</td><td>Harvard Apparatus</td><td>732802</td><td></td></tr><tr><td>Sistema di Coperta Omeotermica</td><td>Harvard Apparatus</td><td>55-7222F</td><td></td></tr><tr><td>Microscopio Stereo</td><td>Nikon Instruments</td><td>MMA36300</td><td>SMZ-645 Zoom Stereo Microscope</td></tr><tr><td>Sterilizzatore a Perle Calde</td><td>Harvard Apparatus</td><td>610183</td><td></td></tr><tr><td>Rasoio Elettrico</td><td>GE Healthcare</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Lame e Manici</td><td>Welch Allyn</td><td>690047-1</td><td>Standard (Lamp) Laryngoscope Blades</td></tr><tr><td>Forbici Chirurgiche</td><td>Fine Science Tools</td><td>14014-17</td><td></td></tr><tr><td>Forbici Chirurgiche</td><td>Fine Science Tools</td><td>14072-10</td><td></td></tr><tr><td>Pinze</td><td>Fine Science Tools</td><td>11028-15</td><td></td></tr><tr><td>Pinze Curve</td><td>Fine Science Tools</td><td>11001-12</td><td></td></tr><tr><td>Portaaghi</td><td>Fine Science Tools</td><td>12004-18</td><td></td></tr><tr><td>Portaaghi</td><td>Fine Science Tools</td><td>91201-13</td><td></td></tr><tr><td>Retrattore Toracico</td><td>Fine Science Tools</td><td>17008-07</td><td></td></tr><tr><td>Maschere</td><td>VWR international</td><td>47730-640</td><td></td></tr><tr><td>Spugne di Garza</td><td>Dermacea</td><td>441205</td><td></td></tr><tr><td>Guanti Sterili</td><td>Cardinal Health</td><td>2D7203I</td><td></td></tr><tr><td>Tubing PE 90</td><td>BD Biosciences</td><td>427420</td><td></td></tr><tr><td>Siringa da 20 ml</td><td>BD Biosciences</td><td>301625</td><td></td></tr><tr><td>Sutura Prolene 6-0</td><td>Ethicon Inc.</td><td>8706H</td><td></td></tr><tr><td>Sutura di Seta 2-0</td><td>Ethicon Inc.</td><td>K873H</td><td></td></tr><tr><td>Iniezione di Pentobarbital Sodico</td><td>OVATION Pharmaceuticals</td><td>NDC 67386-501-55</td><td></td></tr><tr><td>Povidone-Iodio</td><td>NOVAPLUS</td><td>V10-8204</td><td></td></tr><tr><td>Buprenorfina</td><td>Pharmaceuticals Inc.</td><td>NDC 12496-0757-1</td><td></td></tr></tbody></table>

infarto acuto del miocardio in topi

Acute Myocardial Infarction in Rats

Con insufficienza cardiaca la causa principale di morte negli Stati Uniti (Hunt), la ricerca biomedica è fondamentale per far avanzare trattamenti medici per le malattie cardiovascolari. Modelli animali che mimano umano malattie cardiache, come infarto del miocardio (MI) e ischemia-riperfusione (IR) che induce insufficienza cardiaca e pressione sovraccarico (restringimento aortico trasversale) che induce l&#39;ipertrofia cardiaca e scompenso cardiaco (Goldman e Tarnavski), sono modelli utili per studiare le malattie cardiovascolari. In particolare, l&#39;ischemia del miocardio (MI) è una delle principali cause di morbilità e mortalità cardiovascolare, nonostante il controllo dei fattori di rischio determinati come l&#39;arteriosclerosi e trattamenti tramite intervento chirurgico (Thygesen). Inoltre, una perdita acuta del miocardio a seguito di ischemia del miocardio (MI) si traduce in un aumento condizioni di carico che induce rimodellamento ventricolare della zona di confine infartuata e il telecomando non miocardio infartuato. Miociti apoptosi, necrosi e la conseguente aumento del carico emodinamico più attiva di segnalazione intracellulare biochimici che avvia dilatazione LV, ipertrofia, forma di distorsione del ventricolo, e la cicatrice formazione di collagene. Questo rimodellamento patologico e l&#39;incapacità di normalizzare la parete maggiore stress si traduce in una dilatazione progressiva, l&#39;assunzione del miocardio zona di confine nella cicatrice, e alla fine deterioramento della funzione contrattile del miocardio (cioè insufficienza cardiaca). La progressione della disfunzione ventricolare sinistra ed insufficienza cardiaca nei ratti è simile a quello osservato in pazienti che subiscono un infarto miocardico grande, sopravvivere e di sviluppare successivamente scompenso cardiaco (Goldman). L&#39;infarto miocardico acuto (IMA) nei ratti modello è stato usato per mimare umano malattie cardiovascolari; utilizzate in modo specifico per studiare meccanismi di signaling cardiaco associato a scompenso cardiaco e per valutare il contributo delle strategie terapeutiche per il trattamento dello scompenso cardiaco. Il metodo descritto in questa relazione è il modello di ratto di infarto miocardico acuto (IMA). Questo modello è indicato anche come cardiomiopatia ischemica acuta o ischemia seguita da riperfusione (IR), che è indotto da un acuto di 30 minuti di ischemia mediante legatura della discendente anteriore sinistra (LAD), seguita da riperfusione del tessuto da rilasciando la legatura LAD (Vasilyev e McConnell). Questo protocollo si concentrerà sulla valutazione della dimensione dell&#39;infarto e la zona a rischio (AAR) di colorante blu di Evan e cloruro di trifeniltetrazolo (TTC) dopo 4 ore di riperfusione, commenti aggiuntivi verso la valutazione della funzione cardiaca e del rimodellamento modificando la durata della riperfusione, è anche presentato. Nel complesso, questo modello di ratto AMI animale è utile per studiare la conseguenza di un infarto del miocardio in funzione cardiaca fisiopatologici e fisiologici.

Il modello di topo di infarto miocardico acuto (AMI) è utile per studiare la conseguenza di un infarto miocardico sulla funzione cardiaca fisiopatologici e fisiologici.

Infarto acuto del miocardio in topi

Poiché lo scompenso cardiaco rappresenta la principale causa di morte negli USA (Hunt), la ricerca biomedica è fondamentale per far progredire i trattamenti medici per le patologie cardiovascolari...

L'obiettivo generale di questa procedura è modellare l'infarto miocardico acuto nei ratti per lo studio dei meccanismi di segnalazione cardiaca associati alla risposta immediata del miocardio all'ischemia cardiaca, seguita dal danno da riperfusione. Queste risposte includono la dimensione dell'infarto, l'area a rischio e la morte cellulare. Il primo passaggio consiste nell'esporre il ventricolo sinistro praticando una piccola incisione nello spazio intercostale quarto del lato sinistro del torace e allargando le costole una volta isolate.L'arteria discendente anteriore sinistra, o LAD, viene legata in modo transitorio per 30 minuti al termine del periodo ischemico. La legatura della LAD viene successivamente rilasciata, consentendo la riperfusione cardiaca dopo un periodo di riperfusione di quattro ore. La LAD viene legata nuovamente prima che il cuore venga escisso ed esaminato per determinare l'estensione del miocardio infartuato, distinguendo tra area a rischio e area non a rischio.In definitiva, i risultati della valutazione istologica del miocardio infartuato possono essere utilizzati per esplorare strategie terapeutiche per il trattamento dell'insufficienza cardiaca. Questa t

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Viene descritto un modello altamente riproducibile per l'infarto del miocardio nei topi con manipolazioni minimamente invasive. Il modello può essere facilmente eseguito, con conseguente elevata riproducibilità e tasso di sopravvivenza. Pertanto, il modello descritto ridurrà il numero di animali necessari come richiesto dal principio delle 3R (Sostituzione, Perfezionamento e Riduzione).

Minimal procedura chirurgica invasiva di indurre infarto miocardico nei topi

'infarto del miocardio (MI) non è solo seguito da una compromissione della funzione cardiaca, ma anche da apoptosi nell'amigdala, una regione del cervello coinvolta nelle conseguenze comportamentali dell'infarto miocardico. Questo protocollo descrive come indurre l'infarto miocardico, raccogliere il tessuto dell'amigdala e misurare l'attività della caspasi-3, un marcatore di apoptosi.

Caspasi-3 L&#39;attività nel ratto amigdala Misurato da Spettrofluorimetria dopo infarto miocardico

La valutazione post-mortem dell'infarto del miocardio (MI) nei roditori si basa sulla quantificazione dell'infarto su sezioni di cuore colorate. Descriviamo un metodo accurato per quantificare le dimensioni dell'infarto utilizzando il campionamento sistematico di cuori di ratto raccolti dalla base all'apice e l'analisi delle immagini di sezioni istologiche colorate con tricrombi.

Quantificazione istologica di cronica Myocardial Infarto in Rats

Forniamo un metodo affidabile per la legatura dell'arteria discendente anteriore sinistra (LAD) in un modello murino. Questo metodo è relativamente meno invasivo di altri metodi, che coinvolgono l'intubazione endotracheale, un approccio di toracotomia sul lato sinistro e la toracentesi. Questo metodo può essere utilizzato come modello per l'infarto miocardico acuto e cronico.

Murino discendente anteriore sinistra (LAD) Coronary legatura dell&#39;arteria: una migliore e semplificata del modello di infarto miocardico

Qui descriviamo una procedura chirurgica che mostra come ottenere una legatura permanente dell'arteria coronaria discendente sinistra-anteriore nei topi. Questo modello è di grande rilevanza per studiare la fisiofisiologia dell'infarto miocardico e i processi biologici concomitanti.

Modello di infarto miocardico Murine utilizzando la legatura permanente dell'arteria coronaria discendente anteriore sinistra

Questo articolo presenta un metodo efficiente per eseguire l'ischemia miocardiale e la successiva riperfusione cronica nei ratti utilizzando un approccio minimamente invasivo. Inoltre, la funzione emodinamica ventricolare sinistra dei ratti è valutata con ecocardiografia e metodi isolati del cuore di lavoro.

Metodo semi-minimo invasivo per indurre l'infarto miocardico nei ratti e la valutazione della funzione cardiaca da parte di un sistema cardiaco funzionante isolato

In anestesia adeguata, il cuore del topo è stato esternalizzato attraverso lo spazio intercostale e l'infarto del miocardio è stato indotto con successo legando l'arteria discendente anteriore sinistra (LAD) utilizzando materiali prontamente disponibili nella maggior parte dei laboratori.

Un metodo semplice modificato per l'induzione dell'infarto miocardico nei topi

Il modello di ischemia-riperfusione miocardica del cuore di ratto viene migliorato utilizzando un riavvolgitore autoprodotto, un tubo di cloruro di polivinile e un metodo di annodatura unico. L'elettrocardiogramma, il cloruro di trifeniltetrazolio e la colorazione istologica e i risultati dell'analisi percentuale di sopravvivenza hanno mostrato che il gruppo modello migliorato ha tassi di successo e sopravvivenza più elevati rispetto al gruppo modello già esistente.

Modello di roditore migliorato di ischemia miocardica e danno da riperfusione

Zebrafish rappresenta un modello importante per studiare i meccanismi di rigenerazione cardiaca nei vertebrati. Qui vi presentiamo un protocollo per l'induzione di un infarto cardiaco in zebrafish adulti usando cryoinjury. Questo metodo comporta la morte cellulare massiccio entro il 20% della parete ventricolare, simile a quella osservata in infarti mammiferi.

L&#39;induzione di infarto miocardico in Zebrafish adulti usando Cryoinjury

Descriviamo come eseguire l'imaging MRI e PET del cuore del topo. Il protocollo è studiato su misura per valutare l'efficacia del trattamento in modelli di infarto del miocardio e insufficienza cardiaca.

Risonanza magnetica e PET in modelli murini di infarto miocardico

Impara a modellare l'infarto acuto del miocardio nei ratti per studiare i meccanismi di ischemia e riperfusione cardiaca. Questo metodo consente di valutare dimensione dell'infarto, area a rischio e morte cellulare.

Infarto acuto del miocardio in topi

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