Name: Trichuris Muris Infezione: un modello di tipo 2 Immunità e infiammazione nellintestino (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-05-24T12:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 5 s
Description: Impara a stabilire un modello di infezione intestinale con Trichuris muris nei topi per studiare le risposte immunitarie Th2 e Th1. Questo metodo permette di analizzare marcatori immunitari e carichi parassitari.

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Questo lavoro è stato sostenuto dal Canadian Institutes of Health Research (MSH-95368, 89773 e-MOP MOP-106623 a CZ) e la Fondazione canadese per l&#39;innovazione. SCM è il destinatario di un CIHR / Canadian Association of Gastroenterology borsa post-dottorato. CZ è un investigatore CIHR Nuovo.

1. Moltiplicazione Trichuris uova Muris <ol><li> Per generare nuovi lotti di uova di Trichuris Muris, infettare 20-30 topi immunodeficienti (es. NOD.Cg-Prkdc scid Il2rg tm1Wjl / SzJ (NSG) o 129S6/SvEvTac-Rag2 tm1Fwa (RAG2 - / -)) o topi geneticamente suscettibili ( ad es. AKR / J), che sono 6-8 settimane di età con circa 300 uova di Trichuris Muris mediante sonda gastrica. </li><li> Dopo 32-35 giorni sacrificare i topi da CO 2 asfissia. </li><li> Esporre la parte ventrale del mouse e bagnato l'addome con il 70% di etanolo. </li><li> Utilizzando pinze afferrare la cute addominale e fare una piccola incisione con le forbici. Tagliare la pelle per esporre il contenuto addominale. </li><li> Identificare il cieco e l'intestino prossimale di grandi dimensioni, e rimuoverli. </li><li> Posizionare il cieco e colon prossimale in un piatto da 10 cm petri contenenti Dulbecco modificato (DMEM) con 500 U / ml penicillina e 500 mg / ml di streptomicina (P / S). Tagliare il cieco aperto per esporre il lume e il worm. Utilizzando posto forcipe cieco in un bicchiere di tampone fosfato (PBS) e agitare delicatamente per rimuovere le feci. </li><li> Ritorna cieco a capsula di Petri e con pinze curve lisce (Roboz RS-5047) delicatamente estrarre vermi e metterli in un pozzetto di una piastra ben 6 contenente 5 ml di DMEM + P / S. </li><li> Ripetere questo processo per tutti i topi. </li><li> Mettere 6 pozzetti in un contenitore Tupperware con un tovagliolo di carta umido per mantenere l'umidità e incubare a 37 ° C per 4 ore. </li><li> Dopo 4 ore rimuovere worm utilizza pinze curve lisce e dividerli in 2 nuovi pozzi della piastra 6 pozzetti contenenti 5 ml DMEM + P / S. Raccolto il contenuto del pozzo originario e porlo in una provetta da 15 ml falco. In provetta a 3000 giri e rimuovere e prenotare surnatante come antigene 4 ore (può essere utilizzato per restimolazione cellulare dopo PBS dialisi, dove i rendimenti delle proteine ​​tipiche sono 10-20 mg per 20 topi) e risospendere uova contenenti pellet in acqua di rubinetto in autoclave. </li><li> Mettete i 6 piastra ben indietro a 37 ° C durante la notte. Rimuovere e smaltire i vermi. Raccolto il contenuto dei pozzetti in un tubo falco e far girare a 3000 rpm per 5 min. Rimuovere il surnatante e riserva come antigene durante la notte (può essere utilizzato per Trichuris ELISA specifico anticorpo isotipo Ag dopo PBS dialisi, dove i rendimenti delle proteine ​​tipiche sono 10-20 mg per 20 topi) e di uova contenenti risospendere pellet in acqua di rubinetto in autoclave. </li><li> Combina 4 ore e uova notte e filtrare le uova attraverso il filtro 70μm di togliere qualunque vermi rimasto poi trasferire in un centimetro 75 2 pallone. Tenere pallone in un luogo buio coperto in lamina per 6 settimane a temperatura ambiente (RT). </li><li> Lavare le uova in acqua di rubinetto in autoclave e risospendere a 50 uova vitali in 50 microlitri. Per fare questo, uova centrifuga a 3000 rpm per 5 minuti e risospendere in ~ 50ml acqua sterile. Togliere 50 microlitri uova e posto su un vetrino. Utilizzando l'ingrandimento 40x contare il numero di valide uova embrionate in microlitri 50. Diluire le uova per dare 50 uova vitali in 50 microlitri. Per le immagini di uova vitali si veda lo studio di Kopper e Mansfield 16. </li></ol> 2. Infezione acuta dei topi sperimentali con Trichuris Muris uova (200 uova / mouse) <ol><li> Risospendere completamente le uova e rimuovere il volume sufficiente per trattare il numero di topi X 2 (es. per 10 topi prendere 200 x 10 microlitri topi x 2 = 4 ml di uova) e metterli in un tubo 14 ml tappo a scatto. </li><li> Invertire il tubo a scatto 14 ml tappo a mescolare. Portate fino a 200 ml di uova in siringa da 1 ml su un ago appropriato alimentazione dimensioni (per i mouse peso di 25 grammi abbiamo utilizzato 18 gauge 1 1 / 2 "aghi). Collottola In una mano il mouse e utilizzando invece amministrare uova mediante sonda gastrica . </li><li> Aspettare 21 giorni. </li></ol> 3. Vendemmia sperimentale <ol><li> Il giorno 21 sacrificare i topi utilizzando CO 2. </li><li> Raccogliere il sangue dai topi da puntura cardiaca, in modo non eparinizzata siringa, e conservare a 4 ° C. Il giorno seguente isolare siero e congelare a -20 ° C. Siero può essere utilizzato per il rilevamento di Trichuris-IgG e IgE specifiche con il metodo ELISA. </li><li> Esporre la parte ventrale del mouse e bagnato l'addome con il 70% di etanolo. </li><li> Utilizzando pinze afferrare la cute addominale e fare una piccola incisione con le forbici. Tagliare la pelle e membrana sottostante per esporre il contenuto addominale. </li><li> Identificare il piccolo intestino, cieco e del colon. Afferra il cieco con una pinza e tirare fuori della cavità addominale. Con un altro paio di pinze spingere tenue verso destra esporre i linfonodi mesenterici (mln). Rimuovere la mln facendo attenzione a non tagliare negli intestini e posto in un falcon da 15 ml contenente 2 ml di media. Se lo si desidera possono essere elaborati e restimolati in vitro (4x10 6 / ml a 1 ml in 24 piastre con 1 mg / ml o con αCD3/CD28 50μg/ml 4h Trichuris Ag) per 72 ore per l'analisi di citochine da parte ELISA ed f intracellularecitometria basso. </li><li> Tagliare il cieco e del colon. </li><li> Utilizzando pinze, spingere fuori pellet fecali da colon distale e posto in un tubo da 2 ml Axygen. Congelare a -20 ° C. Pellet fecali possono essere analizzati mediante western blot per l'espressione di resistina-come molecola-β (RELM-β). </li><li> Rimuovere la punta del cieco (~ 0.5 cm). Per rimuovere le feci tenere punta cieco con una pinza e filo con PBS usando una siringa da 3 ml e 22-gauge in una capsula di Petri. Mettere in fresco paraformaldeide 4% in una provetta da 5 ml tappo a scatto Falcon. Conservare a 4 ° C. Questi possono essere inclusi in paraffina, sezionati e montati su vetrini per l'analisi istologica. </li><li> Rimuovere un pezzo di colon prossimale (~ 1 cm) per RNA. Mettere campione in 2 ml di tubo Axygen RNAlater con 500 microlitri. Conservare a 4 ° C. Questi campioni possono essere analizzati per l'espressione di mRNA da qPCR. </li><li> Mettere il resto del cieco in una capsula di Petri etichettati e congelare a -20 ° C. </li></ol> 4. Enumerazione di Trichuris vermi Muris nel cieco <ol><li> Rimuovere cieco dal freezer e metterlo in una capsula di Petri contenente ~ 5 ml di acqua. </li><li> Utilizzando le forbici, tagliare aperto cieco per esporre il lume. </li><li> Tenere il cieco con una pinza e scuotere vigorosamente il cieco per rimuovere la maggior parte delle feci. </li><li> Trasferimento ad un altro cieco capsula di Petri contenente acqua e usando liscia pinze curve dolcemente raschiare il IXC il tessuto sottostante. </li><li> Trasferimento cieco per un nuovo piatto di Petri contenente acqua e vigorosamente raschiare restante tessuto con una pinza, strappa il tessuto in piccoli pezzi. </li><li> Utilizzare un microscopio da dissezione per contare tutti i vermi in tutti e 3 i piatti di Petri. Come si trova un verme rimuoverlo dal piatto per assicurare il worm stesso non viene contato due volte. Se vermi sono danneggiato (rotto a metà) contare solo finisce spesso o sottile per ottenere un conteggio accurato. </li></ol> 5. Rappresentante Risultati L'infezione Trichuris Muris modello permette ai ricercatori di quantificare carico parassita e risposta immunitaria sistemica, come pure per esaminare istologicamente la risposta infiammatoria all'interno del cieco distale. Quando il lume del cieco raccolto è esposto, worm Trichuris possono essere enumerati utilizzando un microscopio da dissezione (Figura 1A-B). Parametri di immunità ai Trichuris anche isotipo anticorpale passaggio a IgG1 (associata con l'immunità di tipo Th2) negli animali resistenti e IgG2a (associata a immunità di tipo Th1) di animali sensibili (Figura 1C). Espressione del calice cellule specifiche proteine-resistina come molecola-β (RELM-β) è associato con una clearance di Trichuris ed è rilevabile dall'analisi Western blot (Figura 2). La porzione distale del cieco possono essere colorati con acido periodico di Schiff (PAS) per valutare le risposte delle cellule caliciformi e il grado di infiammazione intestinale in risposta alle infezioni (Figura 3). <img src="/files/ftp_upload/2774/2774fig1.jpg" alt="Figura 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 1"> Figura 1. Quantificazione di immunità ai Trichuris Muris. (A) Resistente (B6) topi espellere Muris Trichuris dopo 21 giorni post-infezione. Al contrario, suscettibile (AKR / J) i topi diventano con infezione cronica da Trichuris, con conseguente istituzione parassita. Ogni barra rappresenta la media ± SEM di 4-8 animali per ciascun gruppo. (B) Worms vengono conteggiati utilizzando un microscopio da dissezione. Pannello superiore mostra i vermi in isolamento, pannello inferiore mostra i vermi in presenza di IXC e le feci. (C) Trichuris specifici titoli IgG2a sono determinati da ELISA di siero diluito (1:2 di diluizione, a partire dalla diluizione 1:20 e termina a 1:2560) su piastre rivestite di antigene escretorio Trichuris (O / N Ag, 5 mg / ml). Suscettibili AKR / J topi hanno livelli notevolmente superiori di Trichuris specifici IgG2a siero di topi resistenti B6. <img src="/files/ftp_upload/2774/2774fig2.jpg" alt="Figura 2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 2"> Figura 2. Liquidazione di Trichuris Muris è associata con l'espressione del calice cellule specifiche proteine ​​RELM β-7. RELM-β di produzione possono essere rilevati da pellet fecali da Trichuris infetti resistenti (B6), ma non sensibili (AKR / J) nei topi mediante analisi Western Blot. Ogni corsia è rappresentativo di un animale unico, (N) = Naive, (Tm) = 21 giorni Trichuris topi infettati. <img src="/files/ftp_upload/2774/2774fig3.jpg" alt="Figura 3" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 3"> Figura 3. L'esame istologico della distale infezione Trichuris cieco segue. Micron sezioni 5-7 della distale cieco macchiato di PAS. Iperplasia delle cellule caliciformi e la produzione di muco sono evidenti in resistente (B6), ma non sensibili (AKR / J) nei topi dopo l'infezione Trichuris.

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<li>Kopper, J. J., Mansfield, L. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+of+improved+methods+for+delivery+of+Trichuris+muris+to+the+laboratory+mouse%5BTitle%5D)+AND+%22Parasitol.+Res%22%5BJournal%5D)">Development of improved methods for delivery of Trichuris muris to the laboratory mouse.</a> Parasitol. Res. 107, 1103-1113 (2010).</li>
<li>Bancroft, A. J., Else, K. J., Grencis, R. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Low-level+infection+with+Trichuris+muris+significantly+affects+the+polarization+of+the+CD4+response%5BTitle%5D)+AND+%22Eur.+J.+Immunol%22%5BJournal%5D)">Low-level infection with Trichuris muris significantly affects the polarization of the CD4 response.</a> Eur. J. Immunol. 24, 3113-3118 (1994).</li>
</ol>

Gli esperimenti sugli animali sono stati eseguiti secondo le linee guida e regolamenti stabiliti da The University of British Columbia.

Questo protocollo dettagli di un elevato standard dose acuta di infezione Trichuris Muris, che può essere modificato come richiesto dallo sperimentatore. Per esempio, i topi possono essere sacrificati e tessuti raccolti in giorni diversi. Per determinare che i topi hanno stabilito con successo pieno carico vermi possono essere sacrificati al giorno 14, momento in cui tutti i mouse dovrebbe portare un peso di circa 200 vermi. I topi possono anche essere infettati per 32 giorni in cui ogni verme rilevato avrà rag...

<table border="1"><tbody><tr><th> Nome del reagente </th><th> Azienda </th><th> Numero di catalogo </th><th> Commenti </th></tr><tr><td> Aghi di alimentazione animale (18 x 1 ½ &quot;) </td><td> Bottone automatico </td><td> 7912 </td><td></td></tr><tr><td> Liscio Pinza curva </td><td> Roboz </td><td> RS-5047 </td><td></td></tr><tr><td> DMEM </td><td> Gibco </td><td> 11965 </td><td></td></tr><tr><td> NOD.Cg-Prkdc scid IL2r gtm1Wjl / SzJ (NSG) </td><td> Jackson Laboratories </td><td> 005557 </td><td> Questi sono i topi che abbiamo usato, comunque, ogni topi immunodeficienti o ceppo suscettibile dovrebbe funzionare. </td></tr><tr><td> RNAlater </td><td> Qiagen </td><td> 76104 </td><td></td></tr><tr><td> 2 ml tubi </td><td> Axygen </td><td> MCT-200-C </td><td></td></tr><tr><td> Provette da 15 ml </td><td> Falco </td><td> 352096 </td><td></td></tr><tr><td> 6 piatti ben </td><td> Falco </td><td> 353046 </td><td></td></tr><tr><td> Paraformaldeide </td><td> Microscopia Elettronica Scienza </td><td> 15710 </td><td></td></tr><tr><td> α-RELMβ anticorpi </td><td> Peprotech Inc </td><td> 0694270Rb </td><td></td></tr></tbody></table>

trichuris muris infezione: un modello di tipo 2 immunità e infiammazione nell&#39;intestino

Trichuris muris Infection: A Model of Type 2 Immunity and Inflammation in the Gut

Trichuris Muris è un patogeno naturale di topi ed è biologicamente e antigenicamente simili alle specie di Trichuris che infettano gli esseri umani e animali 1. Uova infette sono dati mediante sonda gastrica, schiudono nel piccolo intestino distale, invadono le cellule epiteliali intestinali (IXC) che la linea di cripte del cieco e del colon prossimale e alla maturazione dei worm rilasciare le uova nell&#39;ambiente 1. Questo modello è uno strumento potente per esaminare i fattori che controllo CD4 + T helper (Th) l&#39;attivazione delle cellule così come i cambiamenti a livello dell&#39;epitelio intestinale. La risposta immunitaria che si verifica in ceppi inbred, come C57BL / 6 e BALB / c, è caratterizzato da citochine Th2 polarizzata (IL-4, IL-5 e IL-13) e l&#39;espulsione di vermi, mentre associata citochine Th1 (IL -12, IL-18, IFN-γ) promuovere le infezioni croniche in AKR geneticamente suscettibili / topi J 2-6. Citochine Th2 promuovere cambiamenti fisiologici nel microambiente intestinale compreso rapido turnover di IXC, la differenziazione delle cellule caliciformi, di reclutamento e cambiamenti della permeabilità epiteliale e la contrazione della muscolatura liscia, che sono stati implicati in espulsione verme 7-15. Qui dettaglio un protocollo per la propagazione Trichuris uova Muris, che possono essere utilizzati in esperimenti successivi. Forniamo anche un raccolto sperimentale campione con suggerimenti per l&#39;analisi post-infezione. Nel complesso, questo protocollo fornirà ai ricercatori gli strumenti di base per eseguire un mouse Trichuris Muris modello di infezione che può essere utilizzata per affrontare questioni relative alla propensione Th nel tratto gastrointestinale e immunitario funzioni effettrici delle IXC.

Trichuris infezione Muris è un modello di immunità intestinale Th2 dove topi resistenti generare una risposta protettiva Th2 e topi suscettibili generare una patologica risposta Th1.

Trichuris Muris Infezione: un modello di tipo 2 Immunità e infiammazione nell&#39;intestino

Trichuris muris è un patogeno naturale dei topi ed è biologicamente e antigenicamente simile alle specie di Trichuris che infettano l'uomo e il bestiame1. ...

L'obiettivo generale di questa procedura è stabilire e mantenere un modello naturale di infezione da hain. Inizialmente, i topi vengono infettati con uova di tra curus mirrors mediante gavaggio orale. Ventuno giorni dopo, gli animali infetti vengono sottoposti a eutanasia e vengono prelevati sangue, linfonodi mesenterici, pellet fecali, colon e seeker.Utilizzando questi campioni, è possibile analizzare la risposta immunitaria generata contro le trappole. Gli specchi possono essere analizzati. I campioni di siero possono essere analizzati mediante lisato per rilevare anticorpi specifici per TRA.La risimulazione in vitro di cellule dei linfonodi può essere eseguita per analizzare le risposte immunitarie cellulari. I pellet fecali possono essere utilizzati per la valutazione del contenuto proteico e l'analisi dell'espressione genica può essere effettuata mediante analisi QPCR del colon. Infine, l'apice del cieco può essere utilizzato per l'istologia, mentre la restante parte del cieco può essere impiegata per determinare il carico parassitario nei topi infetti.In definitiva, è possibile ottenere risultati che indicano se un topo è resistente o suscettibile all'infezione da trais MOUs e che permettono di caratterizzare la risposta immunitaria indotta contro il parassita. Questo metodo può contribuire a rispondere a domande fondamentali nel campo dell'immunologia, come quali fattori controllano l'attivazione delle cellule T helper e quali proteine sono necessarie per la differenziazione delle cellule TH2. Le uova di Trauss MOUs possono essere propagate in topi immunodeficienti o in ceppi geneticamente suscettibili, come KR, 35 giorni dopo l'infezione, al fine di raccogliere le uova da topi sottoposti a eutanasia.Esponi la superficie ventrale dell'animale e sciacqua l'addome del mouse con etanolo utilizzando pinze e forbici sterili. Afferra la pelle addominale ed esegui una piccola incisione. Esponi il contenuto addominale, identifica il ceco e il colon prossimale, quindi rimuovili.Trasferire gli organi in una piastra di Petri da 10 centimetri contenente DMEM integrato con penicillina e streptomicina. Quindi aprire il cieco e il colon prossimale con una pinzetta, esponendo la luz e i vermi. Posizionare gli organi aperti in un becher contenente PBS ed agitare delicatamente per rimuovere le feci.Dopo aver lavato il cieco, trasferirlo in una nuova piastra di Petri e utilizzare pinze curve lisce per estrarre delicatamente i vermi. Trasferire tutti i vermi di ciascun topo in un pozzetto di una piastra a sei pozzetti contenente cinque millilitri di DMEM integrato con antibiotici. Posizionare la piastra a sei pozzetti con un tovagliolo di carta inumidito all'interno di un contenitore ermetico e incubare a 37 gradi Celsius per quattro ore, in modo da permettere ai vermi di deporre le uova.Dopo questo periodo di incubazione, utilizzare pinzette per rimuovere i vermi dal pozzetto originale e suddividerli in due nuovi pozzetti contenenti DMEM. Suddividendo i vermi in questo modo si massimizzerà il recupero delle uova mediante pipetta. Raccogliere il mezzo rimanente contenente l'antigene secreto e le uova dal pozzetto originale e trasferirlo in un tubo Falcon da 15 millilitri.Centrifugare il tubo a 3000 RPM per cinque minuti. Quindi rimuovere e conservare il soprannatante contenente l'antigene di quattro ore e Reese's bend l'uovo contenente il pellet in acqua sterile. Posizionare la piastra a sei pozzetti contenente i vermi a 37 gradi Celsius ancora una volta e incubare durante la notte; il mattino seguente.Dopo aver scartato i vermi, raccogliere il contenuto dei pozzetti come mostrato in precedenza e centrifugare il sopranatante per isolare le uova. Conservare il sopranatante contenente l'antigene ottenuto durante l'incubazione notturna e risospendere le uova in acqua. Come in precedenza, combinare queste uova con quelle ottenute dall'incubazione di quattro ore.Filtrare le uova attraverso un setaccio da 70 micron per rimuovere eventuali vermi residui. Successivamente, trasferirle in un matraccio quadrato da 75 centimetri. Coprire il matraccio con pellicola di alluminio per proteggerlo dalla luce e conservare le uova per sei settimane a temperatura ambiente.Questo permetterà alle uova di maturare e sviluppare l'embrione dopo sei settimane. Lavare le uova, aggiungere acqua e contare le uova vitali. Come mostrato qui.Come esempio di un uovo embrionato vitale e di un uovo non vitale, Reese's bend la concentrazione di Exeter a 50 per 50 microlitri. A questo punto, gli uova possono essere conservati a quattro gradi Celsius prima di infettare i topi. Assicurarsi di risospendere accuratamente la soluzione contenente le uova.Trasferire la quantità desiderata di inocolo in un tubo da 14 millilitri con tappo a vite e capovolgere il tubo per mescolare. Aspirare 200 microlitri di uova in un ago alimentatore di dimensioni adeguate alla taglia dell'animale, collegato a una siringa da un millilitro. Afferrare il topo per la nuca e somministrare le uova mediante gavaggio orale.Rimettere il topo infetto nella sua gabbia e lasciare che l'infezione proceda per 21 giorni. Dopo 21 giorni, utilizzare una siringa non eparinizzata per prelevare il sangue dei topi infetti mediante puntura cardiaca. Dopo l'eutanasia con anidride carbonica, i campioni di sangue possono essere conservati a quattro gradi Celsius.Per l'isolamento del siero e l'analisi di IgG e IgE specifiche per tra mediante ELISA. Esporre la cavità addominale del topo come descritto in precedenza. Quindi utilizzare pinzette per estrarre il ceco con forbici o un altro paio di pinzette.Spostare l'intestino tenue verso destra, esponendo i linfonodi mesenterici. Rimuovere delicatamente i linfonodi avendo cura di non tagliare l'intestino e posizionarli in un tubo Falcon da 15 millilitri contenente due millilitri di mezzo di coltura. Le cellule dei linfonodi possono successivamente essere riattivate *in vitro* con il supernatante dell'antigene S di quattro ore proveniente dalle colture di vermi, al fine di analizzare la risposta immunitaria cellulare al parassita.Dopo aver prelevato i linfonodi, escindere il ceco e il colon come descritto in precedenza, utilizzando pinze, liberare i pellet fecali dal colon distale, ponendoli in un tubo da due millilitri; i pellet possono essere conservati a meno 20 gradi Celsius e analizzati per contenuto proteico mediante western blot utilizzando forbici. Tagliare circa un centimetro di colon prossimale e collocarlo in un tubo contenente RNA. Successivamente, conservare a quattro gradi Celsius.Recidere circa cinque millimetri dalla punta del cieco tenendo la punta del cieco con una pinzetta. Utilizzare una siringa da tre millilitri e un ago da 22 gauge per lavare il campione con PBS. Successivamente, trasferirlo in un tubo da cinque millilitri con tappo a vite contenente paraformaldeide al 4%.Il campione del cieco fissato con paraformaldeide può essere conservato a quattro gradi Celsius ed utilizzato per l'analisi istologica. Posizionare il resto del cieco in una piastra di Petri e congelarlo a meno 20 gradi Celsius per uccidere i vermi. Per un conteggio più semplice dei vermi, scongelare il cieco e collocarlo in una piastra di Petri contenente circa cinque millilitri di acqua, utilizzando delle forbici.Tagliare il cieco per esporne la cavità e agitare per raccogliere le feci in una capsula. Posizionare il cieco pulito in una nuova piastra di Petri contenente acqua ed utilizzare pinze curve lisce per raschiare via le cellule epiteliali intestinali. Trasferire il cieco in un'altra piastra di Petri contenente acqua e strappare il tessuto in piccoli pezzi.Si osservino le feci, le cellule epiteliali intestinali e il tessuto del cieco al microscopio stereoscopico ed si enumerino i vermi, rimuovendoli man mano che vengono contati e posizionandoli in una nuova piastra. Questo è l'aspetto che i vermi nel cieco devono avere prima e dopo l'isolamento, come mostrato qui. I topi tragus, in seguito all'infezione, mostrano una capacità di controllo dei parassiti paragonabile a quella dei topi black six, mentre i topi KR sviluppano carichi parassitari elevati.Analogamente, i topi A KR suscettibili sviluppano titoli di IgG specifica per TRA significativamente più elevati rispetto ai topi black six, come determinato mediante saggio ELISA su siero. In questo esperimento, l'analisi mediante Western blot ha rivelato che la quantità della proteina specifica delle cellule caliciformi, realm beta, era aumentata nelle feci dei topi black six, ma non nei topi A KR, a seguito dell'infezione. L'analisi istologica del ceco distale mostra un'iperplasia delle cellule caliciformi e una produzione di muco nei topi resistenti TRAs MOUs infettati di ceppo black six, ma non nei topi suscettibili A KR.Dopo aver visionato questo video, dovresti avere una buona comprensione di come propagare le uova di trismo, infettare topi sperimentali e raccogliere i tessuti intestinali, il meso, i linfonodi enterici e il sangue per l'analisi dell'infezione in topi suscettibili o resistenti.

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Immunology and Infection

Immunologia e Infezioni

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Qui è presentato un protocollo per simulare l'ingresso di composti derivati batterici dopo la violazione della barriera intestinale. Una bassa dose subletale di lipopolisaccaride è stata iniettata sistemica in topi, che sono stati monitorati per 24 h post-iniezione. L'espressione delle citochine pro-infiammatorie è stata determinata a parecchi punti di tempo nella milza, nel fegato e del colon.

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