Name: Preparazione del modello di sottosquadro epilettogenesi Post-Traumatico in roditori (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-09-15T12:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 58 s
Description: Impara a preparare un modello di sottosquadro per l'epilettogenesi post-traumatica nei ratti utilizzando un dispositivo chirurgico personalizzato. Questo metodo consente di creare lesioni precise e coerenti per studiare i meccanismi dell'epilessia.

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Questo lavoro è stato sostenuto da NIH / NINDS concedere 4R00 NS 057940, e concedere SCBI 200-12 dal midollo spinale e lesioni fondo di Ricerca sul Cervello da parte dello Stato dell&#39;Indiana Department of Health.

1. Fare un semplice dispositivo per la chirurgia sottosquadro <ol><li> Il dispositivo sottosquadro abbiamo creato si compone di tre parti (Fig. 1): (1) una piastra di supporto in acciaio inox o in plastica che consente l'attaccamento di un tubo di guida e un ago, e si siede sulla finestra cranico durante l'intervento chirurgico, (2) un tubo di guida che contiene un ago in posizione e permette la rotazione dell'ago, e (3) un ago che viene piegato a 90 gradi ~ 3 mm dalla punta, ed è mobile con rotazione e di inserimento. </li><li> Tagliare un pezzo di 1-1,5 mm di spessore, 7 ~ 10 x 30 mm in acciaio inox o rettangolare di plastica trasparente (1) di fare la piastra di sostegno. Preparare un 1,5 pollici da 22 gauge (BD società, # 305156) e un 1,5 pollici da 25 gauge (BD società, # 305127) ago della siringa. Per fare un tubo di guida, tagliare l'estremità in plastica e la punta dell'ago inferiore del 22-ago da siringa in modo che la sua lunghezza totale è di circa 31-32 mm (2). Sabbia fine di metallo per renderla piatta e liscia. La lunghezza finale di questo tubo guida dovrebbe essere di circa 5-6 mm più corto del 25-gauge siringa. </li><li> Utilizzare colla cianoacrilato per fissare il tubo guiding sulla piastra di supporto, facendo in modo che l'ago sia perpendicolare al bordo del metallo. </li><li> Inserire l'ago calibro 25 siringa nel tubo di guida, e piegare l'ago a 90 gradi a 2,5-3 mm dalla punta (Fig. 1). </li><li> Regolare la portata verticale movimento dell'ago incollando un tubo di plastica piccolo sul finire dell'ago (fig. 1, fermata ago). La gamma di finale in movimento dell'ago determina la profondità l'ago può essere inserito nella corteccia, e dovrebbe essere 1,6-1,8 mm per P21 ratti e 1,3-1,5 mm per P21 topi. Questa lunghezza deve essere adattata per le varie specie ed età degli animali. </li><li> Collegare un filo sottile di rame o un piccolo pezzo di nastro sulla parte superiore dell'ago nella stessa direzione, come la punta piegata (Fig.1 indicatore ad ago). Il filo o nastro indica l'angolo di rotazione dell'ago durante l'intervento chirurgico sottosquadri (fig. 1). </li></ol> 2. Preparazione degli animali <ol><li> Tutti gli strumenti chirurgici devono essere sterilizzati in autoclave, sterilizzati con una perlina di vetro sterilizzatore, o disinfettata con etanolo al 70%. </li><li> Noi usiamo Sprague / Dawley all'età postnatale 20-22 giorni (P20-22) o topi CD1 alla stessa età. Diversi ceppi di topi o ratti possono essere utilizzati per progetti specifici. </li><li> Anestetizzare il mouse con una iniezione ip di ketamina 80 mg / kg e xilazina 8 mg / kg. La procedura chirurgica inizia dopo che l'animale non risponde alla pizzico coda. Durante l'intervento, se necessario, una dose di richiamo di un terzo la dose originale del cocktail anestetico può essere somministrato a ripristinare lo stato originale anestetico. </li><li> Tagliare i capelli sul cuoio capelluto dell'animale con un trimmer capelli elettrici. Applicare una piccola quantità di pomata oftalmica sul occhi dell'animale per la protezione da secchezza durante l'anestesia. Disinfettare il cuoio capelluto con un 10% di povidone-iodio soluzione, seguita dal 70% di etanolo. </li><li> Montare l'animale su un apparato stereotassico per mantenere la testa in una posizione stabile fisso. In tutto l'intervento, teniamo l'animale su una piastra elettrica per prevenire l'ipotermia. </li><li> Effettuare una linea mediana anteriore-posteriore incisione sul cuoio capelluto con un bisturi, che si estende da lambda per mezzo agli occhi. Usa hemostats per tirare la pelle da parte ed esporre il cranio sinistra a sufficienza. </li><li> Fare un taglio rettangolare sul cranio a sinistra, e usare il bisturi per togliere periostio. Questo passo sarà ridurre il sanguinamento e facilitare la foratura sul cranio. </li></ol> 3. Fare sottosquadri <ol><li> Aggiungere una piccola quantità di soluzione salina sterile al cranio zona esposta, quindi utilizzare alcuni dei cotton fioc per pulire il sangue e asciugare la zona. </li><li> Sotto un microscopio operatorio, cominciare ad esercitarsi una scanalatura rettangolare (~ 5 x 7 mm in ratti, 4 x 5 mm nei topi) sul centro del cranio a sinistra (circa al di sopra della sinistra sensomotorio corteccia). Applicando una goccia di soluzione salina sul cranio facilita la foratura e dissipa il calore. Dopo circa 2 / 3 di profondità l'osso si è esercitato, rimuovere salina in eccesso e pulire la zona di foratura con un Q-tip. Lentamente e con attenzione foratura profonda fino a quando il pezzo centrale di osso è mobile su tocco gentile di una pinza. </li><li> Rimuovere con attenzione il pezzo centrale di osso inserendo una punta acuminata di una pinza sul bordo dell'osso e lentamente sollevando il forcipe per esporre l'emisfero sinistro. </li><li> Sotto il microscopio operatorio, tenere il dispositivo sottosquadro, e orientare l'ago in senso perpendicolare parasagittale e la piastra di supporto alla linea mediana, inclinando il dispositivo leggermente caudalmente in modo da mantenere la visualizzazione della punta dell'ago e della regione bersaglio corticale. Puntare la punta dell'ago ad una zona 1-2 millimetri laterale alla sutura sagittale superiore, al centro della finestra del cranio, ed evitare la penetrazione diretta dei grossi vasi. </li><li> Inserire l'ago in senso orizzontale attraverso la dura e sotto la pia in modo da risparmiare i vasi sanguigni. Sedersi nella parte inferiore del dispositivo sottosquadrosu entrambi i bordi della finestra del cranio in modo che l'ago è in posizione normale alla superficie corticale (Fig. 1). A riposo il dispositivo su entrambi i bordi della finestra del cranio a mano in modo significativo ridurre o eliminare stretta di mano durante la seguente procedura. Sollevare l'ago al di sotto della pia, quindi abbassare lentamente per creare un taglio transcorticale che l'ago non può andare più in profondità. Ruotare ~ 135 ° di distanza dalla linea mediana per creare un semicerchio della sostanza bianca / strato profondo VI sottosquadro. Poi sollevare l'ago di nuovo per sotto la pia. Inclinare il dispositivo indietro e ritirare l'ago. </li><li> Opzionalmente, si può ripetere la procedura (passo 2,5), ma senza girare l'ago in modo da creare un taglio ulteriore transcorticale ai bordi laterali della finestra. Questo creerà un isolamento più completo corticale. </li><li> Posizionare un pezzo di pellicola di plastica (6 x 6 mm) sulla finestra del cranio per la protezione e sutura al cuoio capelluto. Mettere l'animale su un blocco riscaldato fino alla completa guarigione dall'anestesia. </li></ol> 4. Rappresentante dei risultati: Coronale fette corticale può essere pronti a confermare il successo della chirurgia sottosquadro. A fette preparato&gt; 2 settimane dopo l'intervento, tagli transcorticale e minano sono discernibili nell'ambito dell'obiettivo di bassa potenza di un microscopio (Fig. 2). La corteccia parzialmente isolata di solito diventa leggermente più sottile, e l'attività epilettiformi possono essere rilevati nella maggior parte dei fettine corticali con registrazione campo potenziale (Fig. 3). Al contrario, la formazione di grandi buchi nella materia bianca o in profondità strati corticali, drammatico assottigliamento della corteccia lesione, o un taglio errante essere al di sopra o al di sotto della sostanza bianca del cervello renderà inutilizzabile per ulteriori esperimenti. <img src="/files/ftp_upload/2840/2840fig1.jpg" alt="Figura 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 1"> Figura 1. Struttura e applicazione di un dispositivo di sottosquadro. Un tubo di guida (2) è incollato su una piastra di supporto (1) che è in acciaio inox o in plastica trasparente. Un ago della siringa (3) viene inserito attraverso il tubo di guida e piegate a ~ 3 mm a punta. Un ago sosta in tubo di plastica è incollato sulla parte superiore dell'ago in modo che l'intervallo verticale movimento dell'ago è limitata a ~ ~ 1,2 mm e 1,5 mm per l'utilizzo in P21 topi e ratti, rispettivamente. Un segmento di filo di rame è fissato sotto l'impugnatura, come l'ago indicatore per l'orientamento dell'ago piegato. Si noti che il dispositivo è inclinato e in contatto con entrambi i bordi della finestra del cranio in modo che un taglio può essere fatto in parallelo alla superficie piale. <img src="/files/ftp_upload/2840/2840fig2.jpg" alt="Figura 2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 2"> Figura 2. Un'immagine rappresentante della fetta sottosquadro. A. immagine fluorescente di una fetta che è stato preparato due settimane dopo la lesione sottosquadro in un topo P48. La ferita da taglio è stato etichettato da DII colorante fluorescente. Le frecce bianche sulla destra indicano taglio transcorticale, e le frecce in basso indicano sottosquadro che passava anche se il confine tra strato IV e della sostanza bianca. <img src="/files/ftp_upload/2840/2840fig3.jpg" alt="Figura 3" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 3"> Figura 3. Registrazione di un campo potenziale fetta sottosquadro. Campo di registrazione da una fetta di potenziali cerebrali sottosquadro esposti attività epilettiformi, suggerendo ipereccitabilità del tessuto danneggiato corticale.

<ol><li>Hoffman, S. N., Salin, P. A., Prince, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chronic+neocortical+epileptogenesis+in+vitro%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurophysiol%22%5BJournal%5D)">Chronic neocortical epileptogenesis in vitro.</a> J Neurophysiol. 71, 1762-1773 (1994).</li>
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<li>Avramescu, S., Nita, D. A., Timofeev, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neocortical+post-traumatic+epileptogenesis+is+associated+with+loss+of+GABAergic+neurons%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurotrauma%22%5BJournal%5D)">Neocortical post-traumatic epileptogenesis is associated with loss of GABAergic neurons.</a> J Neurotrauma. 26, 799-812 (2009).</li>
<li>Avramescu, S., Timofeev, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Synaptic+strength+modulation+after+cortical+trauma%3A+a+role+in+epileptogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Synaptic strength modulation after cortical trauma: a role in epileptogenesis.</a> J Neurosci. 28, 6760-6772 (2008).</li>
</ol>

Nessun conflitto di interessi dichiarati.

Il modello sottosquadro è un sistema altamente efficiente per lo studio dell&#39;epilessia post-traumatico. Un intervento chirurgico tipica richiede solo circa 20-30 minuti per finire, ed evocato o attività epilettiformi spontanee possono essere registrati in fette dalla maggior parte dei animali due settimane dopo l&#39;intervento 1-2. Ancora più importante, questo modello imita aspetti delle seguenti modifiche lesioni cerebrali traumatiche come sanguinamento, infiammazione, edema, assotomia e la morte neuro...

<table border="1"><tbody><tr><td> Nome del materiale </td><td> Tipo </td><td> Azienda </td><td> Numero di catalogo </td></tr><tr><td> Foredom micromotore kit </td><td> attrezzatura </td><td> Foredom </td><td> K.1070 </td></tr><tr><td> 1,5 pollici 22-gauge siringa </td><td> materiale </td><td> BD società </td><td> 305156 </td></tr><tr><td> 1,5 pollici da 25 gauge siringa </td><td> materiale </td><td> BD società </td><td> 305127 </td></tr><tr><td> Collante cianoacrilato </td><td> materiale </td><td> Ted Pella </td><td> 14450 </td></tr></tbody></table>

preparazione del modello di sottosquadro epilettogenesi post-traumatico in roditori

Preparing Undercut Model of Posttraumatic Epileptogenesis in Rodents

Parzialmente isolato corteccia (&quot;sottosquadro&quot;) è un modello animale di epilettogenesi post-traumatico. La procedura chirurgica coinvolge tagliare attraverso la corteccia sensomotoria e sotto la materia bianca (sottosquadro) in modo che una specifica regione della corteccia cerebrale è in gran parte isolato dalla corteccia e le regioni confinanti subcorticali 1-3. Dopo una latenza di due o più settimane dopo l&#39;intervento, scariche epilettiformi possono essere registrate in fettine di cervello di roditori 1; e convulsioni elettriche o comportamento si può osservare in vivo da altre specie come il gatto e la scimmia 4-6. Questo modello animale ben consolidata è efficiente per generare e imita molte caratteristiche importanti traumi cerebrali. Tuttavia, è tecnicamente difficile tentativo di rendere precise lesioni corticali del cervello piccolo roditore con una mano libera. Sulla base della procedura stabilita inizialmente nel laboratorio del Dr. David Principe presso l&#39;Università di Stanford 1, qui vi presentiamo una tecnica migliore per eseguire un intervento chirurgico per la preparazione di questo modello in topi e ratti. Dimostriamo come fare un semplice dispositivo chirurgico e usarla per ottenere un miglior controllo della profondità di taglio e l&#39;angolo per generare risultati più precisi e coerenti. Il dispositivo è facile da fare, e la procedura è veloce da imparare. La generazione di questo modello animale fornisce un efficiente sistema per lo studio sui meccanismi di epilettogenesi post-traumatico.

Parzialmente isolato corteccia (&quot;sottosquadro&quot;) è un modello animale efficiente epilettogenesi post-traumatico. Qui mostriamo come fare un nuovo dispositivo chirurgico e usarlo per fare le lesioni più precisi e concordanti per generare questo modello.

Preparazione del modello di sottosquadro epilettogenesi Post-Traumatico in roditori

La corteccia parzialmente isolata ("undercut") è un modello animale di epileptogenesi post-traumatica. La procedura chirurgica prevede l'incisione attraverso...

Questa procedura illustrerà come preparare un modello di epilettogenesi post-traumatica con undercut nei ratti. Il primo passo consiste nel realizzare un dispositivo semplice che migliori la precisione e la riproducibilità dell'intervento chirurgico di undercut. Successivamente, l'animale viene preparato per l'intervento e viene praticata una finestra cranica sulla superficie del cranio per accedere al cervello.Infine, l'ago del dispositivo di sottotaglio viene inserito nella sostanza bianca della corteccia cerebrale e ruotato per produrre un sottotaglio a forma di ventaglio nella regione bersaglio. In definitiva, è possibile ottenere risultati che mostrano attività di tipo epilettico in fette cerebrali mediante la registrazione del potenziale di campo. Il vantaggio principale di questa tecnica è che si possono ottenere collisioni del cordoncino più precise e riproducibili utilizzando un semplice dispositivo chirurgico realizzato su misura.E questo modello animale può essere utilizzato per rispondere a domande fondamentali relative all'epilettogenesi dopo una lesione cerebrale traumatica. Sebbene questo topo venga spesso utilizzato nel riso, può essere applicato anche ai topi. In g

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Questo video mostra la registrazione elettroencefalografica (EEG) delle crisi epilettiche nei ratti indotti dall'epilessia. Un ratto con elettrodi impiantati nell'ippocampo ventrale viene collegato al sistema di registrazione EEG e posto in una camera di plexiglass. Il ratto è autorizzato a muoversi liberamente mentre l'attività cerebrale viene registrata per monitorare l'insorgenza di convulsioni.

Registrazione elettroencefalografica delle crisi epilettiche nei ratti indotti da epilessia

Fonte: Jang, S., et al, Convulsioni elettroconvulsive nei ratti e frazionamento dei loro ippocampi per esaminare i cambiamenti indotti dalle convulsioni nelle proteine della densità postsinaptica. J. Vis. Exp. (2017)Questo video mostra l'induzione di una crisi elettroconvulsivante acuta (SEC) in un modello di ratto per studiare la neuroplasticità indotta dalle crisi. I ricercatori applicano la stimolazione elettrica tramite elettrodi a clip per l'orecchio, innescando l'ipereccitabilità...

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