Name: Mediata da Agrobacterium Virus-Induced tacere Assay Gene In Cotone (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-08-20T12:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 18 s
Description: Impara il silenziamento genico indotto da virus mediato da Agrobacterium nel cotone utilizzando vettori TRV per studiare la funzione del gene GrCLA1. Questo metodo rapido permette di osservare il fenotipo albino nelle piantine.

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Siamo grati a Drs. SP-Dinesh Kumar e Yule Liu per TRV-VIGS vettori, e Drs. Chuck Kenerley, Terry Wheeler, Jim Starr e Bayer CropScience per la fornitura di semi di cotone. Questo lavoro è stato finanziato dalla NSF per LS e NIH di PH

1. Crescere piantine di cotone <ol><li> Gettare i semi del cotone di montagna (Gossypium hirsutum) varietà Fibermax 832, Phytogen 425RF, Phytogen 480WR e Deltapine 90 in vasi (7 cm di diametro) contenente Mix Metro 700 (SunGR, Beavile, WA). </li><li> Conservare i vasi in un vassoio coperto con una cupola di plastica a 23 ° C, 120 μE m -2 s -1 luce, con un fotoperiodo di 12 ore light/12 buia in una stanza di crescita. </li><li> Rimuovere la cupola quando due cotiledoni sono emerse. </li><li> Circa due settimane dopo, l'uso delle piante con due cotiledoni completamente sviluppati per il dosaggio VIGS. In questa fase, le foglie vere non sono ancora emerse (Figura 1). </li></ol> 2. Costruire VIGS vettore portando GrCLA1 ​​gene <ol><li> Amplificare il Cloroplastos alterados 1 gene di cotone (GrCLA1) mediante PCR con primer GrCLA1-F, 5'-GCCCTTTGTGCATCTTC-3 'e GrCLA1-R, 5'-CTCTAGGGGCATTGAAG-3' da una libreria di cDNA di G. raimondii foglia tessuti. </li><li> Digerire i prodotti PCR di GrCLA1 ​​con EcoRI e KpnI e inserire in pYL156 (pTRV-RNA2) vettore di legatura. </li><li> Schermo i cloni su piastre di agar LB contenente 50 mg / ml di kanamicina. Verificare i costrutti da enzimi di restrizione e sequenziamento. </li><li> Trasformare il plasmide in Agrobacterium tumefaciens GV3101 mediante elettroporazione e recuperare nel medio LB liquido a 28 ° C. Selezionare la trasformanti su piastre con LB + kanamicina (50 mg / ml) + gentamicina (25 mg / mL). I batteri possono essere memorizzati in 25% glicerolo a -80 ° C per utilizzo a lungo termine. </li></ol> 3. Eseguire VIGS inoculazione <ol><li> Tre giorni prima dell'inoculo, le scorte glicerolo striscia congelati di Agrobacterium tumefaciens portare pYL192 (TRV): RNA1, pYL156 (TRV): RNA2 (vettore da sola) e pYL156 (TRV): RNA2-GrCLA1 ​​su piastre di agar LB contenente 50 mg / ml di kanamicina e 25 mg / mL di gentamicina. Incubare le piastre a 28 ° C per 24 ore. </li><li> Due giorni prima di infiltrazione VIGS, scegliere una singola colonia per ogni costrutto dai piatti sopra e inoculare in 5 ml di LB medium integrata con 50 mg / ml di kanamicina e 25 mg / mL di gentamicina; Far crescere la coltura batterica a 28 ° C per la notte in un tamburo a rulli ad una velocità di 50 giri al minuto. </li><li> Trasferire la cultura di sopra di un pallone con 50 ml di LB medium integrata con 50 mg / ml di kanamicina e 25 mg / ml di gentamicina, più 10 mM MES (2 - (4 morfolino)-etano solfonico) e 20 acetosyringone micron. Far crescere la coltura a 28 ° C per una notte in uno shaker con una velocità di 50 giri al minuto. </li><li> Il giorno seguente, rallenta il settore agro-cellule batteriche a 4000 rpm per 5 minuti; risospendere la cultura nel buffer di infiltrazione contenente 10 mM MgCl 2, 10 mM MES acetosyringone e 200 micron. Regolare il diametro esterno 600 della cultura a 1,5. </li><li> Lascia la cultura in panchina a temperatura ambiente per 3 ore. </li><li> Prima di infiltrazione Agrobacterial, pugno la parte inferiore dei cotiledoni delle piante di cotone con un ago da 25 G senza penetrante attraverso i cotiledoni. Uno o due fori (dipende dalla morbidezza del tessuto) sono stati perforati su ogni sezione del cotiledone (Figura 2). </li><li> Mix sospensione Agrobacterial cultura della pYL192 (TRV): RNA1 e pYL156 (TRV): RNA2 o pYL156 (TRV): RNA2-GrCLA1 ​​in un rapporto 1:1; mano infiltrare il composto dalla parte inferiore del cotiledoni attraverso i siti ferendo con un 1 mL siringa senza ago (Figura 3). </li><li> Coprire le piante con una cupola di plastica e lasciare le piante infiltrati a temperatura ambiente in condizioni di luce debole per il pernottamento. </li><li> Trasferimento piante in una stanza di crescita con la temperatura di 23 ° C, 120 μE m -2 S luce -1 con 12 ore di luce / buio ciclo di 12 ore. </li></ol> Nota: VIGS funziona quando le piante sono in regime 23 ° C o in serra (25-28 ° C). Quando la temperatura è relativamente bassa (23 a 25 ° C), è più facile per l'inoculazione e fenotipo è più uniforme rispetto alle superiori (28-30 ° C) o la temperatura ha oscillato. Copertura delle piante con una cupola VIGS rende anche più efficiente. <ol start="10"><li> Esaminare il fenotipo tacere a 7 ~ 8 dopo infiltrazione giorni. Le foglie delle piante vere tacere pYL156 (TRV): RNA2-GrCLA1 ​​iniziato a mostrare il fenotipo albino (Figura 4). Le piante infiltrati con l'esecuzione Agrobacteria pYL156 (TRV): RNA2 servire come controllo. </li><li> Verificare l'efficienza silenziamento genico esaminando il livello di espressione di geni endogeni mediante trascrizione inversa reazione a catena della polimerasi (RT-PCR) con l'RNA isolato da piante di cotone di controllo e messa a tacere. </li></ol> Nota: Il VIGS-ed impianti devono essere tenuti sotto contenuta condizioni di quarantena e le piante devono essere adeguatamente sterilizzati in autoclave e smaltiti, dopo i saggi come TRV dispone di un'ampia gamma ospite e patogeno è un obbligo di notifica. 4.Rappresentante dei risultati: Circa due settimane dopo a mano infiltrazioni con miscela Agrobacterial, il fenotipo albino causati da GrCLA1 ​​silenziamento è stata chiaramente osservata sulle foglie vere. L'efficienza di silenziamento raggiunge quasi il 100% in esperimenti multipli con più di 50 piante. Le piante tacere visualizzare un fenotipo uniformemente distribuito e molto forte albino sul nuovo sviluppo con foglie di un mosaico sulle foglie più anziano (Figura 4). <img src="/files/ftp_upload/2938/2938fig1.jpg" alt="Figura 1" data-altupdatedat="1788238805000" data-alt="Figura 1"> Figura 1. Una piantina di cotone a circa due settimane stadio vecchio, con due cotiledoni completamente sviluppati utilizzato per l'infiltrazione Agrobacterial. <img src="/files/ftp_upload/2938/2938fig2.jpg" alt="Figura 2" data-altupdatedat="1788238805000" data-alt="Figura 2"> Figura 2. Punzonatura piccoli fori sulla parte inferiore dei cotiledoni di piante di cotone con un ago 25 G per facilitare l'infiltrazione Agrobacterial. <img src="/files/ftp_upload/2938/2938fig3.jpg" alt="Figura 3" data-altupdatedat="1788238805000" data-alt="Figura 3"> Figura 3. Infiltrazione mano di miscela Agrobacterial nei cotiledoni di cotone attraverso i siti ferito con una siringa senza ago <img src="/files/ftp_upload/2938/2938fig4.jpg" alt="Figura 4" data-altupdatedat="1788238805000" data-alt="Figura 4"> Figura 4. Fenotipo Albino apparso su VIGS tacere piante di cotone. Quattro cultivar sono mostrati. A) Fibermax 832; B) Phytogen 480WR; C) Phytogen 425RF, D) Deltapine 90.

<ol><li>Chen, Z. J., Scheffler, B. E., Dennis, E., Triplett, B. A., Zhang, T., Guo, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Toward+sequencing+cotton+%28Gossypium%29+genomes%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Physiol%22%5BJournal%5D)">Toward sequencing cotton (Gossypium) genomes.</a> Plant Physiol. 145, 1303-1310 (2007).</li>
<li>Dinesh-Kumar, S. P., Anandalakshmi, R., Marathe, R., Schiff, M., Liu, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Virus-induced+gene+silencing%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol+Biol%22%5BJournal%5D)">Virus-induced gene silencing.</a> Methods Mol Biol. 236, 287-294 (2003).</li>
<li>Hamilton, A. J., Baulcombe, D. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+species+of+small+antisense+RNA+in+posttranscriptional+gene+silencing+in+plants%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">A species of small antisense RNA in posttranscriptional gene silencing in plants.</a> Science. 286, 950-952 (1999).</li>
<li>Burch-Smith, T. M., Anderson, J. C., Martin, G. B., Dinesh-Kumar, S. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Applications+and+advantages+of+virus-induced+gene+silencing+for+gene+function+studies+in+plants%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+J%22%5BJournal%5D)">Applications and advantages of virus-induced gene silencing for gene function studies in plants.</a> Plant J. 39, 734-746 (2004).</li>
<li>Liu, Y., Schiff, M., Dinesh-Kumar, S. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Virus-induced+gene+silencing+in+tomato%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+J%22%5BJournal%5D)">Virus-induced gene silencing in tomato.</a> Plant J. 31, 777-786 (2002).</li>
<li>Estevez, J. M., Cantero, A., Romero, C., Kawaide, H., Jimenez, L. F., Kuzuyama, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Analysis+of+the+expression+of+CLA1%2C+a+gene+that+encodes+the+1-deoxyxylulose+5-phosphate+synthase+of+the+2-C-methyl-D-erythritol-4-phosphate+pathway+in+Arabidopsis%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Physiol%22%5BJournal%5D)">Analysis of the expression of CLA1, a gene that encodes the 1-deoxyxylulose 5-phosphate synthase of the 2-C-methyl-D-erythritol-4-phosphate pathway in Arabidopsis.</a> Plant Physiol. 124, 95-104 (2000).</li>
<li>Mandel, M. A., Feldmann, K. A., Herrera-Estrella, L., Rocha-Sosa, M., Leon, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((CLA1%2C+a+novel+gene+required+for+chloroplast+development%2C+is+highly+conserved+in+evolution%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+J%22%5BJournal%5D)">CLA1, a novel gene required for chloroplast development, is highly conserved in evolution.</a> Plant J. 9, 649-658 (1996).</li>
<li>Gao, X., Wheeler, T., Li, Z., Kenerley, C., He, P., Shan, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Silencing+GhNDR1+and+GhMKK2+compromised+cotton+resistance+to+Verticillium+wilt%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+J%22%5BJournal%5D)">Silencing GhNDR1 and GhMKK2 compromised cotton resistance to Verticillium wilt.</a> Plant J. 66, 293-305 (2011).</li>
</ol>

Nessun conflitto di interessi dichiarati.

VIGS ha dimostrato di essere un potente strumento di analisi genomica funzionale da transitoriamente abbattendo l&#39;espressione di geni endogeni. In questo studio, abbiamo sviluppato un mediata da Agrobacterium VIGS utilizzando un TRV-vettoriale binario. Il cotone CLA1 (GrCLA1) gene è stato sviluppato come marcatore visivo per monitorare l&#39;efficienza tacere. Abbiamo sempre ottenuto il 100% di efficienza silenziamento genico, dimostrato dal fenotipo albino che appaiono sulle foglie vere in tutte le varietà...

<table border="1"><tbody><tr><th> Nome dei reagenti e attrezzature </th><th> Azienda </th><th> Catalogo / Numero di serie </th><th> Commenti </th></tr><tr><td> Rullo di tamburo </td><td> Glas-Col, LLC. </td><td> 099A TC108 </td><td> Agro-batterio della cultura </td></tr><tr><td> Incubatrice </td><td> Sheldon Manufacturing, Inc. </td><td> 01046209 </td><td> Agro-batterio della cultura </td></tr><tr><td> UV / Vis spettrofotometro </td><td> Beckman Coulter </td><td> Modello: DU530 </td><td> Delle DO </td></tr><tr><td> Gene Pulser </td><td> BioRad </td><td> Modello: 1652076; di serie: 154BR3880 </td><td> Elettroporazione </td></tr><tr><td> Pulser controller </td><td> BioRad </td><td> Modello: 1652098; di serie: 232BR4833 </td><td> Elettroporazione </td></tr><tr><td> Micropulser Elettroporazione cuvetta </td><td> BioRad </td><td> 165-2081 </td><td> Elettroporazione </td></tr><tr><td> 1 ml siringa </td><td> BD Biosciences </td><td> 30962 </td><td> Inoculazione di agro-batterio </td></tr><tr><td> Metro Mix 700 </td><td> SUNGR </td><td> SKU # 553001 </td><td> Piantina in crescita </td></tr><tr><td> Terra Cotta pentola </td><td> TOPlastics </td><td> GPS 3001B2 </td><td> Piantina in crescita </td></tr><tr><td> MES monoidrato </td><td> USB </td><td> 18886 </td><td> Infiltrazione tampone </td></tr><tr><td> Acetosyringone </td><td> Sigma </td><td> D134406 </td><td> Infiltrazione tampone </td></tr></tbody></table>

mediata da agrobacterium virus-induced tacere assay gene in cotone

Agrobacterium-Mediated Virus-Induced Gene Silencing Assay In Cotton

Cotone (Gossypium hirsutum) è una delle colture più importanti del mondo. Notevoli sforzi sono stati fatti sulla riproduzione molecolare di nuove varietà. La grande analisi del gene funzionale in cotone è stato ritardato dietro la maggior parte delle specie vegetali moderna, probabilmente dovuto alle sue grandi dimensioni del genoma, duplicazione genica e poliploidia, ciclo di crescita a lungo e recalcitrante alla trasformazione genetica 1. Per facilitare un elevato throughput studio funzionale genetica / genomica in cotone, cerchiamo di sviluppare analisi transienti rapidi ed efficaci per valutare le funzioni del gene cotone. Virus-Induced silenziamento genico (VIGS) è una tecnica potente che è stato sviluppato in base all&#39;host post-trascrizionale silenziamento genico (PTGS) per reprimere la proliferazione virale 2,3. Mediata da Agrobacterium VIGS è stato applicato con successo in una vasta gamma di specie dicotiledoni come Solanacee, specie Arabidopsis e legumi, e specie tra monocotiledoni orzo, frumento e mais, per vari studi di genomica funzionale 3,4. Dato che questo approccio rapido ed efficiente evita la trasformazione delle piante e supera ridondanza funzionale, è particolarmente interessante e adatto per lo studio genomica funzionale in specie vegetali come il cotone non suscettibili di trasformazione. In questo studio, riportiamo il protocollo dettagliato di Agrobacterium mediata dal sistema VIGS in cotone. Tra i diversi vettori virali VIGS, il virus sonaglio tabacco (TRV) invade una vasta gamma di ospiti ed è in grado di diffondere con forza in tutto l&#39;intero impianto ancora produrre sintomi lievi sul hosts5. Per monitorare l&#39;efficienza di silenziamento, GrCLA1, un gene omologo di Cloroplastos Arabidopsis alterados 1 gene (AtCLA1) in cotone, è stato clonato e inserito nel binario VIGS vettore pYL156. CLA1 gene è coinvolto nello sviluppo cloroplasti 6, e studi precedenti hanno dimostrato che perdita di funzione di AtCLA1 portato ad un fenotipo albino sulle foglie vere 7, fornendo un eccellente marcatore visivo per far tacere l&#39;efficienza. A circa due settimane dopo l&#39;infiltrazione Agrobacterium, il fenotipo albino iniziato a comparire sulle foglie vere, con un&#39;efficienza di silenziamento del 100% in tutti gli esperimenti replicati. Il silenziamento dei geni endogeni è stato confermato anche da analisi RT-PCR. Significativamente, mettendo a tacere potentemente potrebbe verificarsi in tutte le cultivar che abbiamo provato, tra cui diverse varietà coltivate commercialmente in Texas. Questo rapido ed efficiente mediata da Agrobacterium test VIGS fornisce uno strumento molto potente per una rapida analisi su larga scala delle funzioni dei geni a livello di genoma in cotone.

Vi presentiamo il protocollo dettagliato per Agrobacterium mediata indotta da virus silenziamento genico (VIGS), saggio in cotone. Il virus crepitio del tabacco (TRV)-vettori derivati ​​VIGS sono stati schierati per indurre il silenziamento dell&#39;RNA di cotone GrCLA1, Cloroplastos alterados 1 gene. Il fenotipo albino causati da tacere GrCLA1 ​​è stata osservata nella fase piantina entro 2 settimane dopo l&#39;inoculazione.

Mediata da Agrobacterium Virus-Induced tacere Assay Gene In Cotone

Il cotone (Gossypium hirsutum) è una delle colture più importanti a livello mondiale. Sono stati compiuti sforzi considerevoli nel breeding molecolare di nuove varietà. Il ...

L'obiettivo generale di questa procedura è sviluppare un saggio di silenziamento genico indotto da virus mediato da agrobatteri nel cotone, al fine di studiare la funzione genica. Questo viene realizzato innanzitutto coltivando le piantine di cotone fino allo stadio di 10 giorni a due settimane di età. Successivamente, il gene rados dei cloroplasti del cotone viene clonato in un vettore basato sul virus del mosaico del tabacco (tobacco rattle virus) per il silenziamento genico.Il terzo passaggio consiste nel preparare colture di agrobatteri contenenti P-T-R-V-R-N-A uno e P-T-R-V-G-R-C-A uno. L'ultimo passaggio prevede l'inoculazione manuale delle colture di agrobatteri nei cotiledoni del cotone. Infine, i risultati del silenziamento genico possono essere osservati analizzando il fenotipo albino sulle foglie vere delle piante di cotone circa due settimane dopo.Il principale vantaggio di questa tecnica rispetto ai metodi esistenti, come la trasformazione, è che i VIGS forniscono una piattaforma rapida ed efficiente per lo studio della funzione genica nel cotone. Sebbene questo metodo possa rivelarsi uno strumento potente per l'analisi rapida su larga scala della funzione genica a livello genomica nel cotone, può essere applicato anche ad altre specie colturali importanti. In generale, le persone alle prime armi con questo metodo incontreranno difficoltà poiché è complesso inoculare manualmente le colture di agrobatterio e il cotone.Questo metodo può contribuire a rispondere a domande fondamentali nel campo della genetica e genomica del cotone, come l'esplorazione delle funzioni geniche, per coltivare piantine di cotone destinate alla silenziamento genico indotto da virus. Aggiungere il terriccio Metro Mix 700 in diversi vasi di sette centimetri e posizionare i vasi riempiti in un contenitore. Successivamente, piantare i semi di diverse varietà di cotone americano, come Fiber Max 832 Phyto, Gen 4,25, RF Phyto, Gen Four 80 WR e Delta Pine 90.Nelle pentole preparate, coprire il vassoio contenente il vaso con una cupola di plastica e posizionare il vassoio in una stanza di crescita a 23 gradi Celsius, con una luce di 120 micro Einstein per metro quadrato al secondo e un fotoperiodo di 12 ore di luce e 12 ore di buio. Dopo tre o quattro giorni, una volta emersi due olean, rimuovere la cupola di plastica. Far crescere le piante di cotone per circa 10 giorni, fino a quando raggiungono lo stadio in cui si sono sviluppati due cotiledoni completamente espansi, ma prima che siano emerse le foglie vere. A questo punto, le piante sono pronte per essere utilizzate nel saggio di silenziamento genico indotto da virus.Queste procedure di clonaggio devono essere eseguite durante il periodo di due settimane in cui le piante di cotone raggiungono la fase di espansione completa. Innanzitutto, amplificare un gene dei cloroplasti del cotone da una libreria CD NA di tessuti fogliari di CACI remondi utilizzando i primer forniti nel protocollo scritto, seguendo le procedure PCR standard. Successivamente, digerire il prodotto PCR di GCA uno con Eco R uno e K PN uno seguendo i protocolli del produttore degli enzimi.Visualizzare il prodotto PCR di 500 paia di basi su un gel all'atene bromuro. Rimuovere la banda ed estrarre il ligato di DNA, il prodotto PCR purificato, nel vettore PYL 1 56. Utilizzando la DNA ligasi T4, trasformare cellule di e. coli competenti con il vettore ligato e quindi distribuire da 10 a 50 microlitri delle cellule trasformate su piastre di agar LBA contenenti 50 microgrammi per millilitro di canamicina.Incubare la piastra durante la notte a 37 gradi Celsius il giorno successivo. Selezionare colonie dalla piastra e coltivarle durante la notte in due millilitri di brodo LB contenente 50 microgrammi per millilitro di canamicina. Raccogliere i batteri mediante centrifugazione ed eseguire le preparazioni di DNA seguendo procedure standard. Per purificare il DNA plasmidico, verificare le costruzioni mediante digestione con enzimi di restrizione e sequenziamento.Dopo aver confermato la presenza e l'orientamento dell'inserto nel vettore PYL 1 56, trasferire elettrocomicamente il plasmide in agrobacterium tumefaciens GV 3 1 0 1 e coltivare in mezzo liquido LB a 28 gradi Celsius. Selezionare i trasformanti su piastre di agar LBI contenenti 50 microgrammi per millilitro di canamicina e 25 microgrammi per millilitro di gentamicina. Se necessario, i batteri possono essere conservati in glicerolo al 25% a meno 80 gradi Celsius.Tre giorni prima dell'inoculo, effettuare un'incisione a zig-zag su piastre di agar LB contenente antibiotici partendo da stock glicerolati di agrobatterio tumefaciens contenenti PYL 1 9 2 RNA uno PY, 1 56 RNA due e PY 1 56 RNA due GLA uno; incubare le piastre a 28 gradi Celsius per 24 ore. Il giorno successivo, selezionare una singola colonia per ogni costrutto e inoculare ciascuna colonia in cinque millilitri di terreno LB, integrato con 50 microgrammi per millilitro di canamicina e 25 microgrammi per millilitro di gentamicina.Coltivare la coltura batterica a 28 gradi Celsius per tutta la notte in un agitatore impostato alla velocità di 50 rotazioni al minuto. Trasferire la coltura PYL 1 56 RNA due GLA uno e le colture di controllo in flaconi separati contenenti 50 millilitri di mezzo LB integrato con 50 microgrammi per millilitro di canamicina e 25 microgrammi per millilitro di Gentamicina più 10 millimolari di MES e 20 micromolari di aceto. Cy Ringy Coltivare la coltura a 28 gradi Celsius per tutta la notte in un agitatore impostato alla velocità di 50 rotazioni al minuto.Il giorno seguente, trasferire le colture in provette da centrifuga e centrifugare le cellule agrobatteriche a 4.000 giri al minuto per cinque minuti; ri-sospendere la coltura nel buffer di infiltrazione contenente cloruro di magnesio 10 millimolare, MES 10 millimolare e acetosirone 200 micromolare. Misurare l'OD 600 della coltura e aggiustare il valore a 1,5 con il buffer di infiltrazione. Incubare la coltura in banco a temperatura ambiente per tre ore prima dell'infiltrazione fogliare mediante agrobatteri.Bucare la parte inferiore del bocciolo floreale delle piante di cotone con un ago da 25 gauge senza perforare completamente il bocciolo floreale. Vengono praticati uno o due fori su ciascuna sezione del bocciolo floreale. Successivamente, mescolare la coltura batterica agrobatterica PYL 1 92 RNA uno con PYL 1 56 RNA due o PY 1 56 RNA due GRCA uno in rapporto uno a uno.Quindi, utilizzando una siringa o un ago da un millilitro, introdurre la miscela nella parte inferiore delle piante di cotone attraverso i fori praticati. Coprire le piante con una cupola di plastica e lasciare le piante infiltrate a temperatura ambiente, al buio, per tutta la notte.Trasferire le piante in una stanza di crescita con una temperatura di 23 gradi Celsius, una luce di 120 micro Einstein per metro quadrato al secondo e un ciclo di 12 ore di luce e 12 ore di buio. Esaminare il fenotipo di silenziamento da sette a otto giorni dopo l'infiltrazione. A questo punto, le foglie vere delle piante silenziate mediante PY 1 56 RNA due GLA uno iniziano a mostrare il fenotipo albino.Le piante infiltrate con batteri agro che trasportano PYL 1 56 RNA due. Servono come controllo. Verificare l'efficienza del silenziamento genico esaminando il livello di espressione dei geni endogeni mediante PCR di trascrizione inversa con RNA, isolato da piante di cotone di controllo e silenziate secondo procedure standard.Questa immagine mostra una pianta del cultivar Fiber Max 8 3 2 dopo la silenziamento genico indotto da virus del gene GLA one. Si notino le foglie di colore bianco in corrispondenza delle quali è avvenuto il silenziamento genico. Anche un cultivar PHYTO four 80 WR mostra il fenotipo albino dopo il silenziamento genico indotto da virus.Analogamente, questo cultivar phyto 4 2 5 RF mostra foglie bianche dove si è verificata la silenziamento genico indotto da virus. Infine, questa immagine mostra un altro esperimento di silenziamento genico indotto da virus riuscito, questa volta nei cultivar Delta PINE 90. Durante l'esecuzione di questa procedura, è importante ricordare di aggiungere acetone alle colture di agrobatteri prima di lasciarle in banco per le tre ore successive a questa procedura.Altri metodi come vig, clonaggio di librerie CD NA possono quindi essere eseguiti per rispondere ad ulteriori domande, ad esempio esplorando nuove funzioni geniche dopo il loro sviluppo. Questa tecnica ha aperto la strada ai ricercatori nel campo della genetica vegetale per studiare la funzione genica e la risposta difensiva a stress antibiotici e biotici in piante colturali economicamente importanti. Una volta ottenuti i dati della mascheratura, questa tecnica può essere completata in due o tre giorni se eseguita correttamente.Dopo aver visto questo video, dovresti avere una buona comprensione di come eseguire il silenziamento genico indotto da virus nel cotone.

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Descrizione di un virus-indotto silenziamento genico (VIGS) metodo per knock-down di espressione genica...

Virale silenziamento genico (VIGS) in Nicotiana benthamiana E Pomodoro

Fonte: Shi, J., et al. Screening e identificazione dei soppressori silenzianti dell'RNA da effettori secreti di patogeni vegetali. J. Vis. Esp. (2020)Questo video mostra un saggio di coinfiltrazione per identificare proteine effettrici patogene che sopprimono il silenziamento dell'RNA in Nicotiana benthamiana 16c. Un reporter fluorescente e un gene candidato effettore vengono introdotti nelle foglie delle piante tramite Agrobacterium. Normalmente, il silenziamento dell'RNA degrada i...

Test di coinfiltrazione per lo screening degli effettori patogeni che sopprimono il silenziamento dell'RNA vegetale

Fonte: Shi, J., et al., Screening e identificazione dei soppressori silenzianti dell'RNA da effettori secreti di patogeni vegetali. J. Vis. Esp. (2020)Questo video mostra la procedura per preparare una coltura di Agrobacterium tumefaciens inducendo l'espressione genica della virulenza con acetosirone, seguita dalla rimozione degli antibiotici tramite lavaggio e risospensione, per generare una sospensione pronta per la trasformazione destinata alla trasmissione genica nei tessuti vegetali.

Preparazione di colture di agrobatteri per la somministrazione di geni nelle cellule vegetali

Fonte: Beernink, B. M. et al. Agroinoculazione diretta di piantine di mais tramite iniezione con cloni infettivi del virus del mosaico della coda di volpe e del virus del mosaico della canna da zucchero. J. Vis. Esp. (2021)Questo video dimostra la somministrazione mediata da Agrobacterium di cloni virali ricombinanti nelle piantine di mais per il silenziamento genico. Descrive il processo di infezione da Agrobacterium , la diffusione sistemica del virus e i cambiamenti fenotipici guidati...

Somministrazione mediata da agrobatterio di cloni virali ricombinanti nelle piantine di mais per silenziamento genico

Indotta da virus silenziamento genico è uno strumento utile per identificare geni coinvolti nella resistenza nonhost delle piante. Dimostriamo l'uso di agenti patogeni batterici che esprimono GFPuv nell'identificazione di geni silenziati piante suscettibili ai patogeni nonhost. Questo approccio è semplice, veloce e facilita lo screening su larga scala e di protocollo simili possono essere applicati a studiare varie altre interazioni pianta-microbo.

VIGS-Mediated Forward Genetica screening per la identificazione di geni coinvolti nella resistenza Nonhost

Produzione di proteine ​​transitoria nelle piante di Nicotiana sulla base di infiltrazione sottovuoto con Agrobacteria trasportando i vettori di lancio (Tobacco Mosaic Virus-based) è un approccio rapido ed economico per la produzione di antigeni e proteine ​​terapeutiche. Abbiamo semplificato la procedura e migliorato l'accumulo di destinazione ottimizzando le condizioni di coltivazione batteri, selezionando specie ospite e co-introduzione di silenziamento dell'RNA soppressori.

Ottimizzazione e utilizzo di<em&gt; Agrobacterium</em&gt;-Mediata transitoria produzione di proteine ​​in<em&gt; Nicotiana</em

Abbiamo sviluppato un protocollo semplice ed efficiente per la preparazione di grandi quantità di protoplasti di soia studiare i complessi meccanismi di regolamentazione e di segnalazione in cellule vive.

Un metodo semplice per l'isolamento di protoplasti di soia e l'applicazione di analisi di espressione genica transitoria

Qui, presentiamo un metodo di screening modificato che può essere ampiamente utilizzato per vagliare rapidamente i soppressori del silenziamento dell'RNA negli agenti patogeni delle piante.

Screening e identificazione dei soppressori del silenziamento dell'RNA da parte degli effetti segreti dei patogeni vegetali

Viene presentato un protocollo di iniezione (agroiniezione) a base di Agrobacterium per l'inoculazione del virus del mosaico a coda di volpe e dei virus del mosaico della canna da zucchero in piantine di mais. L'inoculazione in questo modo porta a infezioni virali, silenziamento genico indotto da virus di geni marcatori e sovraespressione virale di GFP.

Agroinoculazione diretta di piantine di mais per iniezione con cloni infettivi del virus del mosaico della coda di volpe ricombinante e virus del mosaico della canna da zucchero

Qui, presentiamo un protocollo per la produzione ad alta efficienza di radici pelose di soia transgeniche.

Trasformazione della radice pelosa di soia per l'analisi della funzione genica

Qui presentiamo il primo protocollo per l'infiltrazione sottovuoto localizzata per studi in vivo della trasformazione genetica di piante di grandi dimensioni. Utilizzando questa metodologia, abbiamo ottenuto per la prima volta la trasformazione transitoria del cacao mediata da Agrobacterium in planta .

Agroinfiltrazione forzata sottovuoto per la trasformazione in planta di piante recalcitranti: il cacao come caso di studio

Impara il silenziamento genico indotto da virus mediato da Agrobacterium nel cotone utilizzando vettori TRV per studiare la funzione del gene GrCLA1. Questo metodo rapido permette di osservare il fenotipo albino nelle piantine.

Mediata da Agrobacterium Virus-Induced tacere Assay Gene In Cotone

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