Generazione di cellule tumorali prostatiche chemioresistenti: una procedura per ottenere cellule tumorali resistenti ai farmaci in vitro

0 visualizzazioni4:33 min • April 30th, 2023

Per generare cellule chemioresistenti, iniziare prendendo la sospensione di cellule tumorali della prostata umana in un pallone di coltura. Incubare il pallone per facilitare l'adesione delle cellule e la loro divisione a formare un monostrato.

Integrare le cellule con una soluzione farmacologica antitumorale a una concentrazione ottimale e incubare. Le molecole del farmaco entrano nelle cellule e inducono l'apoptosi nelle cellule sensibili.

Alcune cellule esprimono speciali trasportatori di efflusso di farmaci o pompe che rimuovono periodicamente i farmaci. Questo meccanismo impedisce l'accumulo di farmaci, consentendo a queste cellule di resistere all'effetto dei farmaci antitumorali e diventare chemioresistenti.

Aspirare i terreni contenenti farmaci e detriti dalla coltura. Integrare con terreni di crescita freschi e privi di farmaci per sostenere la crescita delle cellule chemioresistenti. Scartare il terreno esaurito. Tripsinizzare le cellule per staccarle dal pallone di coltura e trasferirle in una provetta.

Centrifugare il tubo per pellettizzare le cellule. Rimuovere il surnatante contenente tripsina. Risospendere le cellule in un terreno di crescita fresco. Far crescere le cellule in un nuovo pallone di coltura.

Successivamente, ripetere le fasi del trattamento farmacologico e della coltura cellulare per esporre le cellule chemioresistenti a dosi crescenti dello stesso farmaco antitumorale. Questa tecnica esegue lo screening della coltura eliminando tutte le cellule sensibili per generare un pool di cellule sopravvissute altamente chemioresistenti.

Per iniziare questa procedura, impiattare le cellule DU145 o 22Rv1 in palloni quadrati da 150 centimetri contenenti 20 millilitri di terreno. Dopo 24 ore, quando le cellule sono a circa il 70-80% di confluenza, aggiungere docetaxel a 5 nanomolari.

Dopo 72 ore, aspirare il terreno contenente il farmaco e aggiungere terreno fresco privo di docetaxel. Cambiare il supporto ogni 3 o 4 giorni e attendere da 1 a 2 settimane fino a quando i cloni non compaiono nel pallone. Aspirare i supporti. Lavare accuratamente le cellule con 15 millilitri di PBS e incubarle con 4 millilitri di tripsina-EDTA allo 0,05% per 3-5 minuti a 37 gradi Celsius per staccare le cellule dalla superficie del pallone. Quindi, risospendere le cellule tripsinizzate dal pallone utilizzando 8 millilitri di terreno fresco.

Raggruppare le celle di tutti i palloni trattati e pellettare mediante centrifugazione. Successivamente, rimuovere il surnatante. Risospendere il pellet di cella in 20 millilitri di terreno fresco e placcare le cellule in palloni quadrati da 150 centimetri.

Dopo 24 ore, quando le cellule sono a circa il 70-80% di confluenza, aggiungere nuovamente 5 nanomolari di docetaxel. Ripetere le procedure come mostrato in precedenza fino a quando i cloni non compaiono nel pallone. Quindi, piastrate nuovamente le cellule in fiasche quadrate da 150 centimetri.

Dopo 24 ore, quando le cellule sono a circa il 70-80% di confluenza, trattarle con 10 nanomolari di docetaxel. Ripetere gli stessi passaggi in modo crescente per aumentare la dose di docetaxel e continuare a raggruppare i cloni sopravvissuti dopo ogni trattamento di concentrazione. Alla fine del processo, si otterrà un pool di celle resistenti pronte per l'uso sperimentale.

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Ultimo aggiornamento: 29 agosto 2026