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I neutrofili a bassa densità, o LDN, sono una sottopopolazione distinta di neutrofili che si trova in numero elevato durante condizioni patologiche come il cancro gastrointestinale. Gli LDN possono essere isolati dai lavaggi della cavità peritoneale o dal liquido di lavaggio dei pazienti.
Innanzitutto, filtrare il liquido di lavaggio per rimuovere i detriti di tessuto. Centrifugare il filtrato per ottenere un pellet contenente cellule del sangue, comprese le LDN. Risospenderlo in un tampone adatto. Sovrapporre questa sospensione su un mezzo di gradiente di densità adatto e ottimale per l'isolamento LDN.
Centrifuga per separare i diversi componenti del sangue in base alla loro densità relativa. I globuli rossi più densi formano lo strato inferiore, mentre la frazione plasmatica meno densa forma lo strato più alto. Le LDN meno dense occupano lo strato intermedio insieme ad altre celle mononucleate.
Trasferire lo strato intermedio in una provetta nuova contenente un reagente bloccante. I componenti del reagente bloccano i siti di legame non specifici su tutte le superfici delle cellule non bersaglio e aumentano la specificità per LDN durante la successiva marcatura.
Aggiungere microsfere coniugate con anticorpi che hanno come bersaglio una specifica molecola di superficie cellulare sovraespressa sulle LDN. Incubare per far sì che i complessi anticorpo-perlina si leghino alle loro molecole bersaglio sulle LDN.
Far passare la sospensione incubata attraverso una colonna posta in un campo magnetico. Sotto l'influenza magnetica, tutti i complessi LDN-microsfere aderiscono alla parete della colonna mentre le cellule non marcate vi passano attraverso.
Rimuovere la colonna. Lavare il contenuto utilizzando un tampone adatto per eluire e raccogliere la frazione contenente LDN.
Per acquisire i neutrofili, innanzitutto, infondere 1 litro di soluzione fisiologica sterile normale immediatamente prima della chiusura della ferita direttamente nella cavità addominale di un paziente che ha appena subito un intervento chirurgico addominale a causa di neoplasie gastrointestinali e lavare ampiamente la cavità addominale per almeno 1 minuto. Quindi, mescolare la soluzione salina all'interno della cavità e recuperare 200 millilitri di liquido di lavaggio con quattro siringhe da 50 millilitri.
In laboratorio, trasferire il liquido di lavaggio peritoneale attraverso un filtro di nylon da 100 micrometri in singole provette da 50 millilitri per la centrifugazione. Risospendere i pellet in 5 millilitri di PBS integrati con EDTA allo 0,02% e sovrapporre accuratamente ciascuna sospensione cellulare su 3 millilitri di soluzione a gradiente di densità. Dopo la separazione in gradiente di densità, prelevare da 2 a 3 millilitri dello strato intermedio da ciascuna provetta e lavare i campioni di fluido peritoneale in 10 millilitri di PBS fresco più EDTA per provetta. Versare i pellet in 10 millilitri di PBS fresco più EDTA per un ulteriore lavaggio e diluire le cellule a una concentrazione di tampone da 1 x 10 a una settima cella per 60 micrometri di selezione cellulare attivata magneticamente, o MACS.
Bloccare qualsiasi legame non specifico con 20 microlitri di blocco Fc per 10 minuti a 4 gradi Celsius, seguito dall'aggiunta di 20 microlitri di perline magnetiche anti-CD66b. Dopo 10 minuti a 4 gradi Celsius, lavare e risospendere le cellule in 500 microlitri di tampone MACS e aggiungere le cellule a una colonna magnetica di dimensioni adeguate all'interno del campo magnetico di un separatore magnetico adatto. Quando tutte le cellule CD66b negative hanno attraversato la colonna, aggiungere 15 millilitri di tampone MACS fresco al serbatoio della colonna e trasferire la colonna dal separatore magnetico in un nuovo tubo conico. Quindi, immergere immediatamente la colonna per far scorrere il positivo CD66b marcato magneticamente nel tubo.
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