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Il rivestimento intestinale è ricoperto da sporgenze o villi e invaginazioni o cripte. Le cripte sono le ghiandole intestinali che secernono principalmente enzimi digestivi.
Per isolare le cripte intestinali tenue, iniziare posizionando un topo anestetizzato in posizione supina su una tavola di dissezione. Usando le forbici, sezionare longitudinalmente il peritoneo per esporre l'apparato digerente.
Individua l'intestino tenue e tiralo delicatamente verso l'alto dal corpo del topo. Taglia l'intestino alla base. Trasferire l'intestino raccolto in una pirofila contenente un tampone adatto. Tagliare longitudinalmente l'intestino, esponendo il lume.
Posiziona l'intestino, con il lato luminale rivolto verso l'alto, su un tagliere per esporre i villi. Sposta uno scivolo di vetro angolato sulla superficie intestinale per raschiare via i villi, esponendo l'intera cripta.
Taglia l'intestino in piccoli pezzi e trasferisci i pezzi in un tubo contenente un tampone ghiacciato per garantire il minimo danno alle cripte.
Successivamente, trattare con EDTA e incubare. L'EDTA provoca l'allentamento dell'intera cripta dal rivestimento intestinale. Rimuovere la soluzione esaurita contenente EDTA. Aggiungere tampone fresco e triturare utilizzando una pipetta per staccare le cripte dal rivestimento intestinale.
Raccogli il surnatante contenente le cripte in un tubo nuovo. Integrare la provetta con un terreno di coltura adatto e centrifugare per pellettare le cripte.
Sezionare longitudinalmente il peritoneo con un paio di forbici. Tenete lo stomaco con la pinza e tagliatelo trasversalmente a metà usando le forbici intestinali da questo punto in poi. Estrarre l'intestino e metterlo in una capsula di Petri contenente PBS. Inizia posizionando la punta smussata nello stomaco e spingila delicatamente attraverso il piloro.
Procedete tagliando con le forbici e tirando con le pinze. Una volta che tutto l'intestino tenue è aperto longitudinalmente, lavarlo in PBS freddo tenendolo con la pinza e sciacquandolo delicatamente nella soluzione di PBS con movimenti a forma di U. Una volta eliminati tutti i resti di feci, procedere ad appiattire l'intestino su un tagliere con il lato luminale rivolto verso l'alto.
Il lato luminale è facilmente riconoscibile per l'assenza di vasi sanguigni e per il suo aspetto pallido rispetto alla parte esterna. Con un vetrino, rimuovere delicatamente la villa raschiando l'intestino appiattito. Eseguire questo passaggio due volte lungo l'intera lunghezza del tessuto. Quindi, tagliare l'intestino tenue con una lama chirurgica sterile in pezzi da 2 a 5 millimetri.
Mettere i frammenti dell'intestino tenue in una provetta da 50 millilitri contenente 10 millilitri di PBS ghiacciato. Pulire i frammenti di tessuto rimuovendo eventuali impurità rimanenti pipettandoli su e giù nel PBS. Scartare il surnatante e ripetere questo passaggio fino a quando il PBS non è completamente chiaro. Successivamente, aggiungere 15 millilitri di PBS freddo per portare il volume finale totale di PBS a 25 millilitri. Aggiungere 2 millimolari di EDTA e incubare per 45 minuti su un rullo a 4 gradi Celsius.
Dopo aver scartato il PBS/EDTA, aggiungere 10 millilitri di PBS e staccare le cripte pipettando energicamente i frammenti di tessuto su e giù. Quindi, raccogli il surnatante. Ripeti il passaggio quattro volte. Aggiungere il terreno di coltura per raggiungere un volume finale di 50 millilitri. Pellettare le celle mediante centrifugazione. Infine, risospendere il pellet in 10 millilitri di terreno di coltura prima di pellettare le cripte mediante centrifugazione.