Estrazione basata su SDS-PAGE di proteine associate alle vescicole extracellulari: una procedura per estrarre proteine dalle vescicole extracellulari e prepararle per la digestione in gel

0 visualizzazioni3:22 min • April 30th, 2023

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Per iniziare, prendi una provetta contenente vescicole extracellulari o EV intatte.

Sospendere le EV nel volume desiderato di tampone di lisi e sonicare il campione. Questo trattamento lisa la membrana EV e trancia il materiale genetico, rilasciando le proteine nel tampone.

Centrifuga per pellettizzare i detriti cellulari e il materiale genetico tranciato. Raccogli il surnatante contenente varie proteine.

Aggiungere un colorante di caricamento all'estratto proteico e passarlo su un gel SDS-PAGE.

Immergere il gel in una soluzione colorante per consentire alle molecole del colorante di legare le proteine. Individuare la banda colorata contenente la proteina desiderata e asportarla.

Tagliare la banda colorata in piccoli pezzi per migliorare l'accessibilità delle proteine agli enzimi nei passaggi successivi. Trasferire questi pezzi in una provetta da microcentrifuga.

Aggiungere una soluzione decolorante che rimuova il colorante colorante. Rimuovere la soluzione decolorante esaurita.

Aggiungere una soluzione di riduzione. Incubare per consentire all'agente riducente di scindere i legami disolfuro nella proteina, esponendo i gruppi sulfidrilici liberi.

Trattare le proteine ridotte con una soluzione alchilante. I gruppi alchilici si legano ai gruppi sulfidrilici liberi, mantenendo la proteina dispiegata.

Scartare la soluzione in eccesso e lavare i pezzi con una soluzione disidratante per rimuovere il reagente alchilante. Asciugare completamente il gel.

I pezzi di gel sono ora pronti per ulteriori analisi proteomiche.

Per l'estrazione delle proteine, mescolare 50 microlitri di tampone RIPA con il campione EV per 5 minuti con ghiaccio. Sonicare il campione tre volte a 500 watt e 20 kilohertz per 5 secondi. Quindi, rimuovere i detriti vescicolari centrifugando a 20.000 x g per 10 minuti a 4 gradi Celsius.

Dopo aver isolato le proteine, eseguire la migrazione delle proteine nel gel di impilamento di un gel di poliacrilammide al 12%. Fissare le proteine nel gel con Coomassie blue per 20 minuti a temperatura ambiente. Quindi, asportare ogni pezzo di gel colorato e tagliarlo a pezzetti.

Metti i pezzi di gel attraverso una serie di lavaggi successivi come descritto nel manoscritto. Quindi, asciugarli completamente con un concentratore sottovuoto. Dopo l'essiccazione, eseguire la riduzione delle proteine con 100 microlitri di bicarbonato di ammonio da 100 millimolari contenente ditiotreitolo da 10 millimolari per 1 ora a 56 gradi Celsius.

Successivamente, eseguire l'alchilazione delle proteine con 100 microlitri di bicarbonato di ammonio da 100 millimolari contenente iodoacetammide da 50 millimolari per 45 minuti al buio. Lavare i pezzi di gel secondo le indicazioni del manoscritto e asciugarli completamente sul concentratore sottovuoto.

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Ultimo aggiornamento: 1 agosto 2026