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Biologia
0 visualizzazioni • 3:17 min • July 8th, 2025
La parte anteriore dell'occhio è coperta dalla cornea, uno strato trasparente che consente la trasmissione dei raggi luminosi. La cornea si estende nella sclera, un tessuto protettivo bianco intorno all'occhio. La parte dell'occhio che consiste nella cornea circondata da un sottile anello della sclera è il bottone corneosclerale.
Per asportare il bottone corneosclerale, posizionare un occhio di maiale intatto su una capsula di Petri. Rimuovere la congiuntiva - un rivestimento mucillaginoso attorno alla sclera - insieme ai muscoli extraoculari circostanti per accedere alla copertura sclerale. Trattare l'occhio con una soluzione disinfettante adatta per rimuovere eventuali microrganismi contaminanti dalla superficie dell'occhio.
Lavare via il disinfettante con una soluzione tampone. Trasferire l'occhio disinfettato in un piatto di coltura fresco. Praticare un'incisione sulla sclera vicino al confine corneale. Usando questa apertura, fai un taglio circonferenziale completo per dividere l'occhio in due frammenti.
Visualizza il lato interno del segmento frontale per individuare il rivestimento uveale attaccato alla sclera. Questo tessuto è costituito da un'iride pigmentata, un corpo ciliare a forma di anello e una porzione dello strato coroideo vascolare. Staccare l'uvea per visualizzare lo strato corneosclerale. Conservare il bottone in una soluzione tampone sterile per ulteriori saggi.
Utilizzare una pinza sterile per trasferire il bulbo oculare in una capsula di Petri. Rimuovere la congiuntiva e il tessuto muscolare intorno al bulbo oculare utilizzando una lama di bisturi # 15 e una pinza. Quindi, tenendo premuto il nervo ottico con la pinza, sollevare delicatamente il bulbo oculare e trasferirlo in un barattolo da mezzo litro riempito di PBS sterile.
Una volta che tutti i bulbi oculari sono stati ripuliti dal tessuto circostante, usa una pinza sterile per spostarli in un altro barattolo da mezzo litro riempito con il 3% di iodio povidone in PBS. Dopo che i bulbi oculari sono stati nel barattolo per un minuto, trasferiscili in un terzo barattolo contenente PBS sterile.
Posiziona un bulbo oculare su una capsula di Petri pulita e usa la pinza per tenerla ferma. Con una lama di bisturi # 10A, fai un taglio vicino alla cornea. Usa le forbici per asportare la cornea, lasciando circa 3 millimetri di sclera che la circondano. Assicurati che l'estremità affilata delle forbici si trovi nello spazio sopracoroideale e non fori l'iride.
Tieni premuto il pulsante corneosclerale con una pinza e usa un altro paio di pinze appuntite per separare delicatamente il tessuto uveale. Quindi, sollevare il pulsante corneosclerale per separarlo dal resto del bulbo oculare. Sciacquare brevemente il bottone in una soluzione all'1,5% di iodio povidone in PBS. Quindi, posizionare il bottone in PBS sterile in una piastra a 12 pozzetti.
In questo articolo viene descritta la procedura per l'escissione del bottone corneosclerale da un occhio di suino. Vengono illustrati i passaggi necessari per garantire un'adeguata preparazione dell'occhio e l'isolamento del bottone corneosclerale per ulteriori saggi.
Questa tecnica chirurgica di isolamento consente la generazione di un modello di cornea suina ex vivo che riproduce da vicino l'anatomia oculare umana, supportando la valutazione preclinica di terapie antibatteriche. Fornendo un metodo riproducibile per ottenere tessuto corneosclerale integro, la procedura facilita la riduzione del rischio meccanicistico nello sviluppo farmaceutico precoce della cheratite batterica. Il modello migliora la continuità traslazionale permettendo valutazioni farmacologiche e istopatologiche in un sistema rilevante per la malattia prima degli studi in vivo.
Il metodo si inserisce nel percorso di scoperta che va dalla validazione del bersaglio alla valutazione preclinica, consentendo test iterativi di agenti antibatterici in un modello tissutale che preserva l'architettura corneo-sclerale.
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Ultimo aggiornamento: 29 agosto 2026