Colorazione hFTAA dei depositi di amiloide: una tecnica per visualizzare le fibrille amiloidi utilizzando un colorante a base di oligotiofene per l'imaging a fluorescenza in sezioni di tessuto

0 visualizzazioni3:38 min • July 8th, 2025

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La deposizione di aggregati proteici mal ripiegati - gli amiloidi nello spazio del tessuto extracellulare sono segni distintivi di varie malattie proteopatiche. Queste amiloidi sono composte da fogli beta che si allineano perpendicolarmente all'asse fibrillare, formando ripetizioni incrociate di fogli beta.

Per rilevare i depositi di amiloide con l'acido acetico eptamero-formil tiofene, o hFTAA, colorare, prendere una sezione di tessuto fissata in formalina e inclusa in paraffina contenente depositi di amiloide.

Trattare le sezioni con xilene per deparaffinare il tessuto per migliorare l'accessibilità alla colorazione nei passaggi successivi. Aggiungere alcune gocce della soluzione colorante hFTAA sulla sezione di tessuto e incubare per consentire al colorante di penetrare nel tessuto.

L'hFTAA contiene sette unità di tiofene coniugate contenenti zolfo e gruppi carbossilici terminali attaccati alla spina dorsale del tiofene. Queste caratteristiche forniscono flessibilità al colorante non legato. Durante l'incubazione, i gruppi carbossilici terminali del colorante si legano con i residui di amminoacidi caricati positivamente che rivestono il solco idrofobico del foglietto beta tramite interazioni elettrostatiche.

Di conseguenza, si verifica un cambiamento conformazionale che riduce la flessibilità strutturale del colorante hFTAA legato. Ciò migliora la resa quantica di fluorescenza del colorante legato, il rapporto relativo tra fotoni assorbiti ed emessi. Questo processo aiuta a migliorare la visualizzazione delle amiloidi.

Osservare il vetrino al microscopio a fluorescenza. La presenza di macchie di fluorescenza giallo-rosse indica la presenza di amiloidi nelle sezioni di tessuto.

Preparare la soluzione luminescente di oligotiofene coniugato risospendendo l'hFTAA liofilizzato in due millimolari di idrossido di sodio per preparare una soluzione madre da 1 mg/mL. Trasferire la soluzione madre in un flaconcino di vetro e conservare a quattro gradi Celsius.

Se si utilizzano sezioni fissate in formalina e incluse in paraffina, deparaffinare in xilene durante la notte. Il giorno della colorazione, immergere le sezioni in bagni consecutivi di etanolo al 99%, etanolo al 70%, dH2O e PBS, per 10 minuti, ogni volta. Quindi, lasciare asciugare le sezioni di tessuto in condizioni ambientali.

Mentre il tessuto si asciuga, preparare una soluzione di lavoro di hFTAA diluendo il brodo 1:10.000 in PBS. Quando il tessuto è asciutto, aggiungere goccioline della soluzione di lavoro hFTAA a ciascuna sezione di tessuto per coprirla. Incubare per 30 minuti a temperatura ambiente.

Risciacquare la soluzione colorante con 500 microlitri di PBS, quindi immergere il vetrino nel bagno PBS per 10 minuti.

Dopo aver lasciato asciugare la sezione in condizioni ambientali, montare utilizzando un mezzo di montaggio a fluorescenza. Lasciare che il supporto di montaggio si stabilizzi durante la notte.

Il rilevamento dell'amiloide può essere eseguito direttamente dopo il montaggio o anche senza montaggio. Tuttavia, se l'obiettivo dell'esperimento è raccogliere informazioni spettrali di alta qualità, è preferibile l'incubazione notturna.

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Ultimo aggiornamento: 22 agosto 2026