Colorazione con rosso di alizarina: una tecnica per visualizzare la mineralizzazione da parte di osteoblasti in coltura

0 visualizzazioni3:37 min • July 8th, 2025

Gli osteoblasti sono cellule che formano le ossa e secernono piccole vescicole nella loro matrice extracellulare, la MEC. Queste vescicole, chiamate vescicole della matrice, sono dotate di trasportatori di membrana ed enzimi che consentono l'ingresso di ioni calcio e fosfato, formando cristalli minerali all'interno. Man mano che i cristalli si accumulano, sfondano la membrana della vescicola per formare noduli mineralizzati nella MEC, che costituiscono la densità minerale ossea.

Per visualizzare la mineralizzazione, iniziare con le cellule degli osteoblasti su un'impalcatura biocompatibile in un mezzo di crescita adatto. Gli osteoblasti si attaccano all'impalcatura e utilizzano i fattori di crescita del mezzo per secernere vescicole della matrice che successivamente formano noduli mineralizzati nella MEC.

Aspirare il terreno di coltura e sciacquare le cellule per rimuovere eventuali tracce. Trattare le cellule con una soluzione di formalina, che induce la reticolazione, il fissaggio e la conservazione della struttura tissutale da parte della MEC. Lavare le cellule per rimuovere eventuali residui di formalina.

Quindi, aggiungi la soluzione colorante di Alizarin Red e incuba la coltura. Le molecole di colorante si legano al nodulo mineralizzato e si associano al calcio, un minerale osseo chiave, formando grandi complessi colorati.

Aspirare la soluzione colorante e lavare accuratamente per rimuovere il colorante non legato. Se osservati al microscopio, i depositi minerali ricchi di calcio appaiono come noduli rosso vivo nella MEC, indicando la mineralizzazione da parte degli osteoblasti.

Aspirare il terreno di coltura dagli osteoblasti primari, 14 giorni dopo l'aggiunta del terreno di mineralizzazione osteogenica. Risciacquare due volte con 0,5 millilitri di 1X PBS. Quindi, fissare le cellule aggiungendo 0,5 millilitri di soluzione di formalina tamponata al 10% e incubando a temperatura ambiente per 10 minuti. Dopo 10 minuti, aspirare la formalina tamponata al 10% con una pipetta monouso e lavare due volte con 0,5 millilitri di acqua ultrapura. Quindi, aggiungere 250 microlitri di soluzione colorante Alizarina Red S da 40 millimolari agli osteoblasti fissi e incubare la piastra a temperatura ambiente per 10 minuti su uno shaker a 100 agitazioni al minuto.

Dopo l'incubazione con la soluzione colorante, aspirare la soluzione colorante con una pipetta monouso e risciacquare con 1 millilitro di acqua ultrapura. Ripetere questo passaggio da 5 a 10 volte fino a quando la soluzione di risciacquo non si stacca limpida per rimuovere le macchie non specifiche. Dopo aver aspirato il lavaggio finale, aggiungere 1 millilitro di PBS freddo e incubare la piastra a temperatura ambiente per 10 minuti su uno shaker come prima. Quindi, trasferire il disco di fosfato beta-tricalcico colorato in un nuovo pozzetto e scansionare le piastre con uno scanner piano per registrare la mineralizzazione.

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Ultimo aggiornamento: 22 agosto 2026