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Gli organoidi intestinali ricapitolano l'organizzazione cripto-villo-intestinale con un lume centrale che comprende cellule morte e detriti. Il lume è rivestito da cellule simili a villi e sporgenze in gemmazione, simili a cripte, che ospitano cellule staminali.
Diverse cellule organoidi producono livelli variabili di specie reattive dell'ossigeno, ROS - sottoprodotti delle attività metaboliche, il cui accumulo porta allo stress ossidativo.
Per visualizzare lo stress ossidativo in varie cellule, iniziare prendendo una piastra multipozzetto contenente organoidi 3D coltivati in una matrice basamentale. Le cellule staminali dell'organoide esprimono una proteina a fluorescenza verde o proteina marcata GFP che aiuta a distinguerle durante l'imaging.
Integrare i pozzetti con terz-butile idroperossido - un induttore dei ROS - e incubare. L'induttore attiva la NADPH ossidasi legata alla membrana e stimola la produzione di ROS all'interno delle cellule. Le cellule staminali, essendo metabolicamente attive, producono più ROS rispetto alle cellule differenziate.
Aggiungere sonde fluorogeniche sensibili ai ROS. Queste sonde lipofile entrano rapidamente nelle cellule e reagiscono con i ROS per produrre fluorescenza rossa. Trattare gli organoidi con il colorante Hoechst che colora selettivamente i nuclei delle cellule vive. Visualizzare gli organoidi utilizzando un microscopio confocale.
Le cellule organoidi nella periferia con nuclei colorati mostrano vari gradi di fluorescenza rossa, che è alta nelle cellule staminali che esprimono GFP e bassa nelle cellule differenziate. Le cellule morte con livelli di ROS intrinsecamente elevati mostrano una fluorescenza rossa nel lume.
L'intensità della fluorescenza rossa è correlata a livelli variabili di stress ossidativo nei diversi tipi di cellule.
Per visualizzare lo stress ossidativo mediante microscopia confocale, aggiungere 1 microlitro di soluzione madre di N-acetilcisteina nei pozzetti corrispondenti della camera a otto pozzetti del microvetrino placcata con organoidi.
Dopo un'incubazione di 1 ora, aggiungere 1 microlitro di soluzione madre di terz-butile idroperossido nei pozzetti corrispondenti e incubare per altri 30 minuti. Successivamente, aggiungere 1 microlitro della diluizione di 1,25 millimolari della sonda fluorogenica per pozzetto, seguito da 1 microlitro di soluzione di Hoechst da 1,25 milligrammi per millilitro.
Dopo un'altra incubazione di 30 minuti, rimuovere il terreno senza disturbare il BMM e aggiungere delicatamente 250 microlitri di DMEM caldo senza rosso fenolo.
Imaging degli organoidi utilizzando un microscopio confocale, dotato di una camera termica e di un'alimentazione di gas che rileva la sonda fluorogenica.
Utilizzando il controllo positivo, impostare l'intensità del laser e il tempo di esposizione per il segnale ROS e verificare che questo segnale sia inferiore nel controllo negativo. Successivamente, utilizzando un oculare, esaminare il vetrino per identificare gli organoidi che esprimono GFP e regolare l'intensità del laser.
Imposta uno z-stack di 25 micrometri e definisci le posizioni per ottenere un'immagine cucita dell'intero organoide per ottenere una sezione degli organoidi che mostra uno strato di cellule.