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Tecniche Biologiche
0 visualizzazioni • 4:34 min • July 8th, 2025
La PCR digitale con goccioline rileva le mutazioni indel, ovvero l'inserimento o la delezione casuale di nucleotidi nel DNA. Ciò si ottiene suddividendo il campione in minuscole goccioline e amplificando in modo indipendente il DNA in ciascuna gocciolina.
Per eseguire la ddPCR, prelevare un campione di DNA contenente variazioni wild-type e mutanti del gene bersaglio. Caricare la miscela di campioni e l'olio in compartimenti distinti della camera del generatore di gocce contenente il canale microfluidico.
Il campione e l'olio scorrono rapidamente attraverso gli stretti canali, si emulsionano alla giunzione e vengono suddivisi in diverse goccioline, ciascuna contenente alcune molecole di DNA.
Ora, prendi una piastra PCR con il tampone contenente primer diretti e inversi, dNTP, DNA polimerasi termostabile e due sonde etichettate con diversi fluorofori e molecole di quencher. Ogni sonda è specifica per un particolare tipo di allele, wild-type o mutante.
Trasferire le goccioline sulla piastra PCR. Posizionare la piastra in un termociclatore ed eseguire la reazione. Durante la denaturazione, i filamenti di DNA si separano. Alla temperatura di ricottura, i primer e le sonde si ricuociono al DNA stampo.
La sonda con fluorofori verdi e arancioni si lega rispettivamente alla sequenza di DNA wild-type e mutante. Successivamente, la DNA polimerasi estende i primer, scindendo il fluoroforo e le molecole di quencher dalla sonda, generando un segnale di fluorescenza.
Analizza il prodotto amplificato. Le goccioline che mostrano fluorescenza verde contengono la sequenza di DNA wild-type, mentre la fluorescenza arancione indica la mutazione indel.
Per cominciare, preparare 25 microlitri della miscela di campioni digitale droplet PCR o ddPCR aggiungendo ddPCR super mix, primer diretti e inversi, sonde HEX o FAM, DNA e acqua nelle proporzioni descritte nel testo. Quindi, mescolare accuratamente la reazione mediante vortex.
Utilizzando una pipetta multicanale da 50 microlitri, caricare 20 microlitri della miscela di campioni ddPCR nella fila centrale della cartuccia. Quindi, utilizzare una pipetta multicanale da 200 microlitri per caricare 70 microlitri di olio nella fila inferiore senza generare bolle durante il pipettaggio.
Posizionare la guarnizione, toccando solo i bordi, evitando l'area concava centrale, quindi posizionare saldamente la piastra nel generatore di gocce e chiudere il coperchio per iniziare la corsa.
Per trasferire la miscela a immersione dalla fila superiore della cartuccia alla piastra a 96 pozzetti, utilizzare una pipetta multicanale e prelevare 40 microlitri di campione liquido per 3-5 secondi con un angolo compreso tra 30 e 45 gradi. Quindi, espellere lentamente la miscela nel pozzetto per oltre 3 secondi con un angolo di 45 gradi, lasciandola cadere lateralmente, quindi andare al secondo arresto della pipetta per espellere completamente il liquido. Utilizzando termosaldature di alluminio, sigillare le piastre per 5 secondi a 180 gradi Celsius.
Posizionare la piastra sigillata nel termociclatore e impostare le condizioni PCR per le linee guida NHEJ Drop-Off impostando la denaturazione iniziale a 95 gradi Celsius per 10 minuti. Quindi, impostare 40 cicli di 94 gradi Celsius per 30 secondi per denaturare, 55 gradi Celsius per 1 minuto per ricottura e 60 gradi Celsius per 2 minuti per estendere.
Dopo 40 cicli, impostare la tenuta a 98 gradi Celsius per 10 minuti e la tenuta finale a 4 gradi Celsius. Utilizzare una velocità di rampa di 2 gradi Celsius al secondo per tutti i passaggi. La temperatura di ricottura varierà a seconda delle sonde o del primer utilizzato. Posizionare saldamente la piastra nel lettore di gocce con l'A1 etichettato bene in alto a sinistra.
Aprire il programma e impostare la piastra designando FAM come canale di riferimento noto e HEX come canale sconosciuto per ogni pozzetto. Quindi, modificare il nome di ogni campione. Eseguire l'esperimento di lettura delle goccioline come quantificazione diretta durante il salvataggio del modello.
In questo articolo si discute l'uso della PCR a goccioline digitali (ddPCR) per rilevare mutazioni di inserzione-delezione (indel) nel DNA. Il metodo suddivide un campione in goccioline microscopiche per l'amplificazione indipendente, consentendo un'analisi precisa delle mutazioni.
La PCR a goccioline digitali consente una rilevazione e quantificazione precisa di mutazioni di inserzione-delezione (indel), supportando la validazione dell'obiettivo nella fase iniziale della scoperta grazie a letture ad alta sensibilità per varianti genetiche rare. Questa capacità aumenta la sicurezza predittiva nei modelli preclinici permettendo una valutazione accurata degli esiti della mutagenesi nei flussi di lavoro di editing genico. Il metodo supporta decisioni basate sui dati riguardo all'avanzamento o meno di candidati e alla selezione del portafoglio attraverso l'analisi quantitativa delle mutazioni.
La PCR a goccioline digitali si integra nel percorso di scoperta, dagli esperimenti iniziali di editing genico fino all'identificazione dei candidati, fornendo dati quantitativi sulle mutazioni che guidano la successiva valutazione preclinica.
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Ultimo aggiornamento: 29 agosto 2026